RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/53485-v
Yoshinobu Koguchi1, Iliana L. Gonzalez1, Tanisha L. Meeuwsen1, William L. Miller1, Daniel P. Haley1,2, Alice N. Tanibata-Branham3, Keith S. Bahjat1,4
1Human Immune Monitoring Laboratory, Earle A. Chiles Research Institute,Providence Cancer Center, Providence Portland Medical Center, 2Sony Biotechnology, 3Beckman Coulter, Inc. Life Sciences, 4Bristol-Myers Squibb
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Immunofenotypowanie krwi pełnej jest niezbędne do monitorowania ludzkiego układu odpornościowego. Jednak liczba wymaganych odczynników i niestabilność określonych fluorochromów w wstępnie zmieszanych koktajlach wymaga codziennego przygotowywania odczynników. Tutaj pokazujemy, że półautomatyczne przygotowanie koktajlu przeciwciał barwiących pomaga ustalić wiarygodne immunofenotypowanie poprzez zminimalizowanie zmienności w dozowaniu odczynników.
Ogólnym celem tego półautomatycznego protokołu przygotowania koktajlu przeciwciał barwiących jest ustanowienie niezawodnej metody immunofenotypowania w celu zminimalizowania zmienności dozowania odczynników. Metoda ta może pomóc w rozwiązaniu kluczowych problemów w dziedzinie immunomonitoringu, takich jak: sposób kontrolowania zmienności wewnątrz- i międzyeksperymentalnej po dozowaniu odczynników. Główną zaletą tej techniki jest to, że automatyzacja przygotowywania koktajli zwiększa dokładność pipetowania, jednocześnie zmniejszając błędy związane z ręcznym przygotowywaniem koktajli. Procedurę zademonstruje Iliana Gonzalez, technik z mojego laboratorium. Przed rozpoczęciem procedury należy nakleić etykiety czytelne dla człowieka na probówkach z kodami kreskowymi 2D. Następnie przenieś całą zawartość każdej fiolki z przeciwciałem do odpowiednich probówek z kodami kreskowymi 2D, uważając, aby uniknąć pęcherzyków. Po przeniesieniu przeciwciał użyj czytnika kodów kreskowych 2D, aby odczytać probówki. Następnie utwórz arkusz kalkulacyjny zawierający nazwy przeciwciał i odczyty kodów kreskowych, a następnie zapisz arkusz kalkulacyjny jako plik z wartościami oddzielonymi przecinkami. Teraz uruchom czytnik kodów kreskowych 2D, a następnie automatyczną obsługę cieczy. Aby zalać strzykawki automatycznego urządzenia do obsługi cieczy, w obszarze Instrument wybierz opcję Home All Axes (Położenie początkowe wszystkich osi).Upewnij się, że żadna ze strzykawek nie zawiera widocznych pęcherzyków powietrza. Po zalaniu strzykawek otwórz metody przygotowania koktajlu bazowego i koktajlu aktywacyjnego w oprogramowaniu do automatycznego obchodzenia się z płynami. Następnie umieść probówki z mikrofugami w małych probówkach do mikrofugi na koktajl bazowy i koktajl aktywacyjny, w zależności od liczby koktajli bazowych i aktywacyjnych, które należy wykonać. Użyj schematu konfiguracji przyrządu jako odniesienia do umieszczania stojaków na probówki na pokładzie. Umieść zbiornik buforowy w odpowiedniej sekcji pokładu i użyj ośmiokanałowego odkręcacza z nakrętką, aby odkręcić probówki z kodami kreskowymi 2D zawierające przeciwciała. Aby uniknąć zanieczyszczenia krzyżowego, umieść każdą nakrętkę na tacce na nakrętki podczas wyjmowania, aby utrzymać nakrętki w odpowiedniej kolejności. Następnie umieść końcówki filtra P50 LLS, końcówki filtra P200 LLS, końcówki P1000 i stojak na probówki Matrix 1 ml na pokładzie w odpowiednich pozycjach. Kliknij ikonę start, aby uruchomić metodę. Gdy pojawi się wyskakujące okienko, upewnij się, że wszystkie elementy na pokładzie są zgodne ze schematem konfiguracji instrumentu dla tej metody. Jeśli wszystko jest na swoim miejscu, kliknij przycisk OK. Zautomatyzowana maszyna do obsługi cieczy przeniesie bufor ze zbiornika do probówek do mikrofuge. Stojak na probówki Matrix 1 ml zostanie przeniesiony do czytnika kodów kreskowych 2D, a kody kreskowe zostaną odczytane. Po odczytaniu wszystkich kodów kreskowych kliknij OK w wyskakującym okienku, aby rozpocząć transfer przeciwciał. Po zakończeniu transferu użyj ośmiokanałowego decappera z nakrętką, aby ponownie zamknąć probówki z kodami kreskowymi 2D i przywróć probówki do 4
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
04:45
Related Videos
751 Views
04:20
Related Videos
1.1K Views
04:57
Related Videos
1.4K Views
14:06
Related Videos
18.7K Views
08:26
Related Videos
15.9K Views
09:25
Related Videos
12.8K Views
13:14
Related Videos
11K Views
12:36
Related Videos
9.9K Views
09:34
Related Videos
7.1K Views
09:07
Related Videos
11.5K Views