27 grudnia 2015
Tutaj prezentujemy protokół neowaskularyzacji naczyniówki indukowanej laserem myszy (CNV), eksperymentalny model, który odtwarza naczyniowe cechy neowaskularnego zwyrodnienia plamki żółtej związanego z wiekiem (AMD). Po opanowaniu może niezawodnie i skutecznie indukować CNV jako system modelowy do testowania różnych środków eksperymentalnych.
Ogólnym celem tej procedury jest odtworzenie cech charakterystycznych neowaskularnego zwyrodnienia plamki żółtej związanego z wiekiem lub MD w łatwym do zbadania modelu zwierzęcym. Metoda ta może być stosowana do badania różnych aspektów badań nad neowaskularnym A MD, w tym tego, jak zmiany genetyczne lub leczenie farmakologiczne mogą wpływać na chorobę lub jak choroba może objawiać się przy różnych metodach obrazowania. Główną zaletą tej techniki jest to, że po opanowaniu jest łatwa do odtworzenia, co pozwala na szybkie i sprawne przeprowadzanie eksperymentów.
Ogólnie rzecz biorąc, osoby, które są nowe w tej metodzie, będą miały trudności, ponieważ brakuje im doskonałej zręczności i koordynacji, aby odnieść sukces, które poprawiają się wraz z praktyką. Aby przygotować pozycję stacji laserowej, lasera i lampy szczelinowej, do której można łatwo uzyskać dostęp, włącz laser i ustaw go na zadane parametry. Tutaj używane jest ustawienie 75 mikrometrów, rozmiar plamki, moc 100 miliwatów i czas trwania 100 milisekund.
Następnie umieść znieczulenie, chusteczki do podgrzewania tkanek dla zwierząt i krople do oczu w łatwym zasięgu operatora lasera. Po znieczuleniu pierwszej myszy umieść ją na podgrzewaczu dla zwierząt na około trzy do pięciu minut. Wykonaj uszczypnięcie palca u nogi, aby zapewnić całkowite znieczulenie.
Następnie za pomocą zwijanej chusteczki higienicznej, aby zapobiec aspiracji płynu do nosa. Umieść 30 mikrolitrową kroplę chlorowodorku tetrakainy w każdym oku. Poczekaj dwie minuty, aż roztwór zacznie działać.
Następnie nałóż jedną kroplę miejscowego środka tropikalnego na każde oko, aby rozszerzyć źrenice. I poczekaj dwie minuty, aż rozwiązanie zacznie działać. Teraz szybko umieść mysz na stoliku myszy, a następnie ustaw scenę na podbródku lampy szczelinowej.
Włącz lampę szczelinową i ustaw ją na najniższą jasność światła. Oceń rozszerzenie źrenic myszy. Jeśli źrenica nie osiągnęła 2,5 do trzech milimetrów rozwarcia.
Włóż mysz z powrotem do podgrzewacza dla zwierząt lub podaj dodatkową kroplę tropic aide po rozszerzeniu źrenicy. Ustaw mysz na platformie tak, aby leżała poziomo prostopadle do belki szczelinowej. Lekko obróć mysz tak, aby nie znajdowała się pod kątem około 170 stopni.
Trzymając głowę bliżej operatora laserowego, ustaw mysz jak najbliżej lampy szczelinowej, zachowując stabilność platformy i pozostawiając operatorowi wystarczająco dużo miejsca na wykonywanie precyzyjnych manipulacji motorycznych. Po prawidłowym ustawieniu myszy nałóż jedną kroplę roztworu sztucznego roztworu do łez na szklane szkiełko nakrywkowe o wymiarach 25 milimetrów na 25 milimetrów. Umieść również jedną kroplę tego roztworu na nieukierunkowanym oku myszy, aby zapobiec odwodnieniu.
Chwyć jeden róg szkiełka nakrywkowego między kciukiem a palcem wskazującym, a pozostałe trzy palce owiń wokół myszy, aby podeprzeć i ustabilizować zarówno zwierzę, jak i rękę operatora. Następnie ostrożnie dociśnij pokrywę. Wsuń na oko myszy, aby spłaszczyć rogówkę.
Umieść szkiełko nakrywkowe prostopadle do ścieżki wiązki laserowej, aby zapobiec rozproszeniu lub odbiciu wiązki. Patrząc przez lampę szczelinową, wolną ręką wyreguluj ostrość, aż siatkówka znajdzie się w polu widzenia. Siatkówka powinna być jasnożółta do czerwonej, z wyraźnymi czerwonymi naczyniami krwionośnymi, powoli i ostrożnie poruszaj głową myszy lub szkiełkiem nakrywkowym, aż zauważysz nerw wzrokowy.
Nerw wzrokowy będzie żółty z wieloma naczyniami krwionośnymi promieniującymi z niego. Następnie włącz wiązkę laserową skupiającą i manewruj nią, aby skupić się na nabłonku barwnikowym siatkówki lub RPE dna oka. Jeśli wiązka ostrości wydaje się być owalna lub nieostra, wyreguluj szczelinę lamp ostrość lub szkiełko nakrywkowe.
Gdy wiązka skupiająca jest odpowiednio wyregulowana, użyj spustu nożnego, aby rozpocząć podawanie lasera. Natychmiast po podaniu lasera powinien powstać pęcherzyk Zmiany z zamglonymi obwódkami lub oczy ze zmianami krwotokowymi należy wykluczyć z analizy. Upewnij się, że obserwujesz tworzenie się pęcherzyków i wyraźny, ostro zarysowany okrągły obszar wskazujący na skupione oparzenie laserem.
Zmiany, które nie wytwarzają pęcherzyków, mogą nie indukować prawidłowo CNV. Twórz dodatkowe zmiany we wszystkich pożądanych pozycjach neowaskularyzacji naczyniówki lub CNV. Przełącz laser w tryb czuwania, gdy nie jest używany, zapisz w notatniku laboratoryjnym lokalizację i wynik każdego podania lasera.
Powtórz podawanie lasera dla drugiego oka myszy, używając świeżego szkiełka nakrywkowego i drugiej ręki, aby ustabilizować mysz. Po wykonaniu wszystkich czynności należy wyłączyć laser i lampę szczelinową, wyrzucić szkiełko nakrywkowe i przyłożyć mysz do zwierzęcia. Cieplej makroskopowo.
Sprawdź oko pod kątem powierzchni rogówki lub urazu zaćmy. Po odzyskaniu zdrowia włóż mysz z powrotem do klatki. CNV oznaczone ilościowo poprzez analizę płasko zamontowanych naczyniówek po barwieniu immunofluorescencyjnym tutaj.
Znakowanie dekstranu Fit c przeprowadzono za pomocą perfuzji bezpośrednio przed uśmierceniem zwierząt. Następnie przeprowadzono kwantyfikację obszaru za pomocą progowania w pośmiertnym barwieniu immunologicznym Image J.Here za pomocą markera komórek śródbłonka. Wykonano selekcjonkę ISO GS IB cztery, a następnie obrazowanie za pomocą mikroskopii konfokalnej.
Wygenerowano rekonstrukcje 3D zmiany CNV na FOSS i widoku z boku. Obrazowanie metodą optycznej koherentnej tomografii wykorzystano również do wizualizacji zmian CNV in vivo. Tutaj pokazano przekrój poprzeczny siatkówki ze zmianą CNV zakreśloną na żółto.
Pokazany jest również obraz zmiany en FOSS, zakreślony na żółto. Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w 10 minut, jeśli zostanie wykonana prawidłowo. Podczas wykonywania tej procedury ważne jest, aby upewnić się, że zwierzę jest odpowiednio znieczulone i ustawić ręce tak, aby było podparte i stabilne.
Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak zapewnić koncentrację. Laser pali się w celu wywołania CNV, które można następnie badać na różne sposoby.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia protokół indukcji neowaskularyzacji naczyniówkowej (CNV) u myszy, co pozwala na odwzorowanie cech naczyniowych neowaskularnej postaci zwyrodnienia plamki żółtej (AMD). Metoda ta została opracowana tak, aby była powtarzalna i efektywna w różnorodnych badaniach eksperymentalnych.
Model mysi z indukowaną laserem nowotworową neowaskularyzacją chrzestową (CNV) stanowi powtarzalny i kosztowo efektywny system do badania neowaskularnej postaci zwyrodnienia plamki żółtej związanego z wiekiem (AMD), umożliwiając szybką ocenę interwencji genetycznych i farmakologicznych. Jego użyteczność polega na modelowaniu szlaków angiogennych istotnych dla walidacji celów terapeutycznych i wstępnej oceny ryzyka w przedklinicznych badaniach nad nowymi lekami okulistycznymi. Model ten wspiera badania mechanistyczne oraz przesiewy terapeutyczne, zapewniając ciągłość translacyjną od etapu odkrycia do optymalizacji wiodących związków.
Model ten wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków – od identyfikacji celu po optymalizację wiodących związków – dostarczając odczytów fenotypowych, które pomagają w podejmowaniu decyzji dotyczących etapu przedklinicznego.