Name: Wysokoprzepustowy test do badania preferencji składania jaj u poszczególnych Drosophila melanogaster (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 58 s
Description: Poznaj wysokoprzepustowy test do badania preferencji składania jaj u Drosophila melanogaster. Ta metoda pozwala identyfikować geny i neurony kontrolujące proste zachowania decyzyjne.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dziękujemy Duke Physics Shop, szczególnie Philowi Lewisowi, za pomoc w budowie aparatu behawioralnego i załączników oraz za stworzenie rysunku. Praca ta jest finansowana przez National Institutes of Health w ramach nagrody numer R01GM100027.

1. Przygotowanie muchówek do badania
<ol>
	<li>Hodowla jest podawana na standardowych podłożach z melasy/mąki kukurydzianej w inkubatorze ustawionym na temperaturę 25 °C i wilgotność 65%. Należy uważać, aby nie przepełnić fiolek. Na przykład umieść 8 samic i 6 samców w wąskiej fiolce z jedzeniem. 
	Uwaga: Zastosowana tutaj "wąska fiolka z żywnością" ma średnicę wewnętrzną 2,3 cm. Zazwyczaj dozowaliśmy około 10 ml pokarmu na muchy do każdej fiolki. Przepis na pokarm na muchy, którego użyliśmy, jest opisany tutaj: http://flystocks.bio.indiana.edu/Fly_Work/media-recipes/molassesfood.html.</li>
	<li>2 - 3 dni po zamknięciu samic przygotuj fiolki ze świeżą pastą drożdżową, jak pokazano na rysunku 1E. Przygotować świeżą pastę drożdżową, mieszając 6 g aktywnych drożdży z 10 ml 0,5% kwasu proprionowego. Za pomocą szpatułki nałóż pastę drożdżową na boczną ściankę fiolek z żywnością. Zbierz do fiolek 30 - 35 zamkniętych samic wraz z 20 - 25 samcami.
	<ol>
		<li>Ogólnie rzecz biorąc, należy zbierać samce z tych samych fiolek, w których zbierane są samice (aby zaoszczędzić czas i wysiłek). Jeśli jednak istnieje obawa o płodność samców, zamiast tego użyj samców WT. Pasta drożdżowa jest również ważna dla stymulacji produkcji jaj, dlatego codziennie przygotowuj ją na świeżo.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Utrzymuj zebrane samice/samce w temperaturze 25 °C, wilgotności 65%, chyba że muchy są wrażliwe na temperaturę.</li>
	<li>Po ~ 4 - 5 dniach sprawdź fiolki, aby zobaczyć, czy samice są gotowe do eksperymentów ze składaniem jaj. Są gotowe, gdy powierzchnia podłoża pokarmowego jest mokra od larw aktywnie zagrzebujących się w pożywieniu (patrz rysunek 1E - F). 
	Uwaga: Samice zazwyczaj wstrzymują się ze składaniem jaj, gdy powierzchnia pokarmu staje się mokra i pełza od larw. Ten krok zapewnia, że samice będą gotowe do złożenia wielu jaj, gdy napotkają podłoża o pożądanej teksturze (np. ~1% agarozy).</li>
</ol>
2. Budowa komory, montaż, konfiguracja testu
<ol>
	<li>Zleć warsztatowi mechanicznemu zbudowanie akrylowych komór do składania jaj (Rysunek 1A - D). Rysunek techniczny różnych elementów przedstawiono na rysunku uzupełniającym 1 - 3. Zdjęcia w wysokiej rozdzielczości można również znaleźć tutaj (http://www.rebeccayang.org/pdf/chamber%20design.pdf).</li>
	<li>Włóż plastikowe arkusze do załadowczej (górnej) części komory, jak pokazano na rysunku 1C. Służy ona jako dolna powierzchnia podczas załadunku much do poszczególnych aren składania jaj.</li>
	<li>Znieczul samice na podkładce CO2 i załaduj je pojedynczo do każdej areny składania jaj. Odczekaj ~30 minut, aby muchy zregenerowały się po CO2 i zaaklimatyzowały się w nowym środowisku.</li>
	<li>Przygotuj podłoża z agarozy.
	<ol>
		<li>Dla wygody przechowuj gotową butelkę stopionej 1% agarozy w łaźni wodnej o temperaturze 55 °C.</li>
		<li>Do stożkowej probówki o pojemności 50 ml dodać żądaną ilość roztworu sacharozy (2 M) i wymieszać z odpowiednią ilością agarozy. Na przykład, aby przygotować substrat sacharozy o objętości 150 mM, umieść 750 μl 2 M roztworu sacharozy w probówce, a następnie napełnij probówkę agarozą do oznaczenia 10 ml.</li>
		<li>Przygotuj zwykły substrat w ten sam sposób, ale dodaj wodę destylowaną zamiast roztworu sacharozy. 
		Uwaga: Końcowe stężenie agarozy w tym protokole wynosi nieco mniej niż 1%. Z naszego doświadczenia wynika, że dokładne stężenie agarozy nie ma znaczenia, o ile jest kontrolowane tak, aby mieściło się w granicach ~0,9 - 1,1% i że oba substraty mają takie samo stężenie agarozy.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wziąć substrat (dolny) część komory i odpipetować 1 000 μl substratu agarozowego do każdego koryta, jak pokazano na rysunku 1D.</li>
	<li>Pozostaw agarozę do zastygnięcia na ~30 min.</li>
	<li>Gdy podłoża agarozowe i muchy będą gotowe, zmontuj wszystkie trzy części komory do składania jaj, a następnie wyjmij plastikowe arkusze.</li>
	<li>Umieść komory w inkubatorach muchowych. 
	Uwaga: Czas trwania eksperymentów ze składaniem jaj może się różnić w zależności od potrzeb eksperymentalnych. Zazwyczaj przeprowadzamy eksperyment O/N (14 - 16 godzin). Nie zaobserwowano również istotnego wpływu czasu okołodobowego na preferencje dotyczące składania jaj.</li>
	<li>Znieczulić samice, wstrzykując CO2 do komory. Zdemontuj komorę, wyrzuć znieczulone muchy do kostnicy na muchy (tj. pustej puszki po kawie wypełnionej olejem kukurydzianym). Zrób zdjęcia wyników w celu prowadzenia dokumentacji (zob. rysunek 2).</li>
	<li>Policz liczbę jaj ręcznie i oblicz wskaźniki preferencji do analizy. Obliczyć wskaźnik preferencji jako (Na - Nb)/(Na + Nb), gdzie Na i Nb reprezentują odpowiednio liczbę jaj w miejscu a w porównaniu z miejscem b.</li>
</ol>

<ol><li>Perisse, E., Burke, C., Huetteroth, W., Waddell, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shocking+revelations+and+saccharin+sweetness+in+the+study+of+Drosophila+olfactory+memory%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Shocking revelations and saccharin sweetness in the study of Drosophila olfactory memory.</a> Curr. Biol. 23 (17), 752-763 (2013).</li>
<li>Yamamoto, N. C., Koganezawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genes+and+circuits+of+courtship+behaviour+in+Drosophila+males%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Genes and circuits of courtship behaviour in Drosophila males.</a> Nat. Rev. Neurosci. 14 (10), 681-692 (2013).</li>
<li>Zwarts, L., Versteven, M., Callaerts, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+and+neurobiology+of+aggression+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Fly%22%5BJournal%5D)">Genetics and neurobiology of aggression in Drosophila.</a> Fly. 6 (1), 35-48 (2012).</li>
<li>Joseph, R. M., Devineni, A. V., King, I. F., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oviposition+preference+for+and+positional+avoidance+of+acetic+acid+provide+a+model+for+competing+behavioral+drives+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Oviposition preference for and positional avoidance of acetic acid provide a model for competing behavioral drives in Drosophila.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 106 (27), 11352-11357 (2009).</li>
<li>Miller, P. M., Saltz, J. B., Cochrane, V. A., Marcinkowski, C. M., Mobin, R., Turner, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+variation+in+decision-making+behavior+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Natural variation in decision-making behavior in Drosophila melanogaster.</a> PLoS One. 6 (1), 16436(2011).</li>
<li>Schwartz, N. U., Zhong, L., Bellemer, A., Tracey, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Egg-laying+decisions+in+Drosophila+are+consistent+with+foraging+costs+of+larval+progeny%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Egg-laying decisions in Drosophila are consistent with foraging costs of larval progeny.</a> PloS One. 7 (5), 37910(2012).</li>
<li>Yang, C. H., Belawat, P., Hafen, E., Jan, L. Y., Jan, Y. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+egg-laying+site+selection+a+system+to+study+simple+decision-making+processes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Drosophila egg-laying site selection a system to study simple decision-making processes.</a> Science. 319 (5870), 1679-1683 (2008).</li>
<li>Kacsoh, B. Z., Lynch, Z. R., Mortimer, N. T., Schlenke, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fruit+flies+medicate+offspring+after+seeing+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Fruit flies medicate offspring after seeing parasites.</a> Science. 339 (6122), 947-950 (2013).</li>
<li>Wu, C. -L., Fu, T. -F., Chou, Y. -Y., Yeh, S. -R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Single+Pair+of+Neurons+Modulates+Egg-Laying+Decisions+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">A Single Pair of Neurons Modulates Egg-Laying Decisions in Drosophila.</a> PloS one. 10 (3), e0121335(2015).</li>
<li>Yang, C. H., He, R., Stern, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+and+circuit+basis+of+sucrose+rejection+by+Drosophila+females+in+a+simple+decision-making+task%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Behavioral and circuit basis of sucrose rejection by Drosophila females in a simple decision-making task.</a> J. Neurosci. 35 (4), 1396-1410 (2015).</li>
<li>Gou, B., Liu, Y., Guntur, A. R., Stern, U., Yang, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanosensitive+neurons+on+the+internal+reproductive+tract+contribute+to+egg-laying+induced+acetic+acid+attraction+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Mechanosensitive neurons on the internal reproductive tract contribute to egg-laying induced acetic acid attraction in Drosophila.</a> Cell Rep. 9 (2), 522-530 (2014).</li>
<li>Stern, U., Zhu, E. Y., He, R., Yang, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-duration+animal+tracking+in+difficult+lighting+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Rep%22%5BJournal%5D)">Long-duration animal tracking in difficult lighting conditions.</a> Sci. Rep. 5, 10432(2015).</li>
<li>Zhu, E. Y., Guntur, A. R., He, R., Stern, U., Yang, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Egg-laying+demand+induces+aversion+of+UV+light+in+Drosophila+females%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Egg-laying demand induces aversion of UV light in Drosophila females.</a> Curr. Biol. 24 (23), (2014).</li>
<li>Branson, K., Robie, A. A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+ethomics+in+large+groups+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">High-throughput ethomics in large groups of Drosophila.</a> Nat. Methods. 6, 451-457 (2009).</li>
<li>Klatpoetke, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Independent+Optical+Excitation+of+Distinct+Neural+Populations%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Independent Optical Excitation of Distinct Neural Populations.</a> Nat. Methods. 11 (3), 338-346 (2014).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Opisane tutaj komory i protokoły mają kilka ulepszeń w porównaniu z poprzednimi testami składania jaj. Po pierwsze, znacznie zwiększają przepustowość oznaczania preferencji pojedynczych zwierząt. Każda komora może badać 30 pojedynczych samic, a jej rozstawienie zajmuje mniej niż godzinę. Po drugie, zwiększają spójność preferencji dotyczących składania jaj w porównaniu z poprzednimi metodami. Standaryzacja wymiarów hali, wielkości substratów do składania jaj oraz odległości między substratami ułatwia porównywanie wyników ...

Drosophila melanogaster to potężny genetyczny organizm modelowy do badania neuronalnych podstaw zachowań. Szybki rozwój narzędzi genetycznych do manipulowania neuronami w ukierunkowany sposób oraz pojawienie się wyrafinowanych narzędzi analizy behawioralnej znacznie poprawiły naszą zdolność do analizowania mechanizmów obwodów, które leżą u podstaw procesów transformacji czuciowo-motorycznej kilku wrodzonych i wyuczonych zachowań.
Składanie jaj przez Drosophila jest odpowiednim modelem do badania neuronalnych podstaw prostych procesów podejmowania decyzji. W szczególności wykazano, że samice Drosophila posiadają zdolność do porównywania i oceniania swoich opcji przed "zobowiązaniem" się do złożenia jaja w danej opcji4-8. Na przykład, gdy otrzymują tylko zwykły substrat (wolny od sacharozy) lub tylko substrat zawierający sacharozę, samice chętnie akceptują każdą opcję składania jaj. Jednakże, gdy przedstawiono im obie opcje, samice o dużej wytrzymałości odrzucają substrat sacharozy w niektórych kontekstach7,9,10. Stosunkowo niewiele wiadomo jednak o mechanizmach neuronalnych, które pozwalają kobietom "wybrać większy z dwóch dóbr". Główną przeszkodą jest brak skutecznej metody badania preferencji dotyczących składania jaj, tak aby można było zastosować systematyczne genetyczne badania przesiewowe w celu zbadania tego problemu.
W tym raporcie opisujemy opracowany przez nas protokół, który pozwala na badanie preferencji samic w zakresie składania jaj w rozdzielczości pojedynczego zwierzęcia i ze znacznie lepszą przepustowością i spójnością w porównaniu z poprzednimi metodami. W szczególności dostarczamy plany budowy zaprojektowanych przez nas komór, protokół przygotowania samic tak, aby każda z nich była przygotowana do złożenia wielu jaj oraz protokół korzystania z komór.

<table><tbody><tr><td>Ultraczysta agaroza&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>16500-500</td><td></td></tr><tr><td>Sacharoza</td><td>Sigma</td><td>S0389</td><td></td></tr><tr><td>Kąpiel wodna&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>15-462-6Q</td><td></td></tr><tr><td>LifeCam Cinema kamera internetowa</td><td>Microsoft</td><td>H5D-00013</td><td></td></tr><tr><td>Czerwone diody LED</td><td>Cree</td><td>C503B-RAN-CA0B0AA1</td><td></td></tr><tr><td>Komory do składania jaj</td><td>Niestandardowe</td><td></td><td></td></tr><tr><td>uchwyty do kamer</td><td>Niestandardowe</td><td></td><td></td></tr><tr><td>uchwyty LED</td><td>Custom Built</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fiolki Fly (wąskie)</td><td>Genesee</td><td>32-116 p.n.e</td><td></td></tr></tbody></table>.

wysokoprzepustowy test do badania preferencji składania jaj u poszczególnych drosophila melanogaster

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Ostatnio, preferencja składania jaj przez Drosophila pojawiła się jako genetycznie podatny model do badania neuronalnych podstaw prostych procesów decyzyjnych. Wybierając miejsca do złożenia jaj, samice much są w stanie ocenić względną atrakcyjność swoich opcji i wybrać "większy z dwóch towarów". Jednak większość testów preferencji składania jaj nie jest praktyczna, jeśli ktoś chce przyjąć systematyczne genetyczne podejście przesiewowe w celu poszukiwania podstawy obwodu leżącego u podstaw tego prostego procesu podejmowania decyzji. ponieważ są one oparte na populacji i pracochłonne w konfiguracji. Aby zwiększyć wydajność badań nad preferencjami składania jaj przez pojedyncze samice, opracowaliśmy niestandardowe komory, z których każda może jednocześnie testować preferencje składania jaj nawet trzydziestu pojedynczych much, a także protokół, który zapewnia każdej samicy wysoki wskaźnik składania jaj (tak, aby ich preferencje były łatwo dostrzegalne i bardziej przekonujące). Nasze podejście jest proste do wykonania i daje bardzo spójne wyniki. Dodatkowo komory te mogą być wyposażone w różne przystawki, które umożliwiają nagrywanie wideo zwierząt składających jaja i dostarczają światło do badań optogenetycznych. Niniejszy artykuł zawiera plany wytwarzania tych komór oraz procedurę przygotowania much do testowania w tych komorach.

Komory do składania jaj składają się z kilku elementów: elementu podstawy (dolnego), elementu dzielącego (środkowego), elementu załadunkowego (górnego) oraz 2 przesuwnych drzwiczek (Rysunek 1A - D). Elementy te służą do niezależnego przygotowania much i podłoży przed eksperymentami dotyczącymi składania jaj. Rysunek 1F przedstawia wygląd fiolek, gdy samice much są gotowe do składania jaj. Gdy muchy miały wybór między podłożem zwykłym a podłożem zawierając...

Ten protokół opisuje test o wysokiej przepustowości do testowania preferencji składania jaj przez Drosophila melanogaster w rozdzielczości pojedynczego zwierzęcia. Ten test zapewnia prostą, wydajną i skalowalną platformę do identyfikacji genów i składników obwodów, które kontrolują prosty proces podejmowania decyzji.

Wysokoprzepustowy test do badania preferencji składania jaj u poszczególnych Drosophila melanogaster

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...

Ogólnym celem tego testu wysokoprzepustowego jest zapewnienie prostej, wydajnej i skalowalnej platformy do identyfikacji genów i neuronów kontrolujących proste zachowanie wyboru u Drosophila. Główną zaletą tej metody jest w rzeczywistości możliwość przeprowadzania infekcji jako wyboru w stadium jaja, a także analiza pojedynczego zwierzęcia w sposób wysoce odpowiedni. Aby rozpocząć eksperyment, umieść osiem samic i sześć samców w wąskiej fiolce z pożywką wypełnionej standardowym medium dla much.Następnie wykorzystaj żeńskie potomstwo wyhodowane z tej fiolki do eksperymentów dotyczących składania jaj. Od dwóch do trzech dni po wykluciu się samic przygotuj świeżą pastę drożdżową, mieszając sześć gramów aktywnych drożdży z 10 mililitrami 0,5% kwasu propionowego. Za pomocą szpatułki nanieś pastę drożdżową na ściankę boczną fiolek z pożywką.Następnie należy umieścić w fiolkach 30 wcześniej zebranych samic po wyjściu z poczwarki oraz 20 samców. Po czterech dniach należy sprawdzić powierzchnię pożywki. Jeśli powierzchnia jest wilgotna z powodu aktywnego drążenia tuneli w pożywce przez larwy, oznacza to, że samice much są gotowe do eksperymentów dotyczących składania jaj.Kontynuuj eksperyment, przygotowując wcześniej wykonane akrylowe komory do składania jaj. Wsuń plastikowe arkusze do góry, umieszczając element komory tak, aby służył jako powierzchnia dna. Następnie poddaj samice anestezji na podkładce z dwutlenkiem węgla i przenieś je pojedynczo do każdej z aren do składania jaj.Pozostaw muchy na 30 minut, aby mogły dojść do siebie po działaniu dwutlenku węgla i zaadaptować się do nowego środowiska. Podczas aklimatyzacji much wypełnij probówkę agarozą do poziomu 10 ml, a następnie przygotuj 150 ml podłoża sacharozowego, wlewając do probówki 750 µl dwumolowego roztworu sacharozy. Przechowuj butelkę z roztopioną 1% agarozą w kąpieli wodnej.Przygotuj podłoże zwykłe w ten sam sposób, zastępując roztwór sacharozy wodą destylowaną. Następnie pobierz element podłoża komory i nawiń 1 000 µL podłoża agarozowego do każdej rynienki. Odstaw agarozę na 30 minut w celu zestalenia.Po przygotowaniu podłoży agarowych i much, złóż wszystkie trzy elementy komory do składania jaj, a następnie wyjmij plastikowe arkusze. Umieść komory w inkubatorach dla much na noc. Znieczul samice, wstrzykując do komory dwutlenek węgla.Zdemontuj komorę i usuń znieczulone muchy. Na koniec wykonaj zdjęcia jaj w celu prowadzenia dokumentacji. Wskaźnik preferencji (PI) obliczono jako liczbę jaj złożonych przez samice much, gdy miały wybór między podłożem zwykłym a podłożem zawierającym sacharozę.Samice wyraźnie preferowały zwykłe podłoże do składania jaj. Po zastosowaniu tej procedury inne metody, takie jak rejestracja radiowa, dają możliwość przeprowadzenia badań genetycznych w celu odpowiedzi na inne pytania, na przykład dotyczące zachowania much przed złożeniem każdego jaja.

high-throughput-assay-to-examine-egg-laying-preferences-individual

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neuronauka

Drosophila melanogaster to genetycznie i behawioralnie podatny system modelowy, który od ponad wieku jest wykorzystywany do zrozumienia molekularnych i komórkowych podstaw wielu ważnych procesów biologicznych 1. Drosophila została szeroko wykorzystana w celu uzyskania wglądu w genetyczne podstawy zachowania much.

Metody oceny zachowania Drosophila

Ten film opisuje prostą metodę ilościowego oznaczania lokomocji muchy i pokazuje przeprowadzony test wspinaczki. Test wspinaczki muchowej jest ogólnym testem funkcji motorycznych, który opiera się na negatywnej odpowiedzi geotaksji.

Test wspinaczki muchowej: metoda testowania ogólnej lokomocji u Drosophila melanogaster

Ten film opisuje test wyspowy, metodę behawioralną używaną do badania lokomocji Drosophila. Protokół próbki zawiera konfigurację testu zgodną z półautomatyczną analizą obrazu.

Test wyspowy: wysokoprzepustowa metoda oceny zachowania lokomotorycznego Drosophila

Samice Drosophila wybierają między substratami i wybierają miejsca, które są atrakcyjne do składania jaj. Ten film opisuje test behawioralny, który testuje ich podejmowanie decyzji, zwany testem preferencji składania jaj. Prezentowany klip demonstruje procedurę z niestandardową konfiguracją, która umożliwia naukowcom nie tylko testowanie zachowania wielu samic w tym samym czasie, ale jest również kompatybilna z nagrywaniem wideo i konfiguracjami optogenetycznymi.

Drosophila Test preferencji składania jaj: metoda testowania podejmowania decyzji u much

C. elegans podczas składania jaj może dostarczyć ważnych informacji w badaniach rozwojowych, reprodukcyjnych i anatomicznych. Ten film przedstawia ważne etapy testu składania jaj i pokazuje próbkę eksperymentu, w którym lek jest testowany pod kątem toksyczności reprodukcyjnej.

Test składania jaj: metoda ilościowego określania zachowania C. elegans podczas składania jaj

W tym artykule wideo opisujemy zautomatyzowany test do pomiaru wpływu głodu lub sytości na zależne od węchu zachowanie związane z poszukiwaniem pokarmu u dorosłej muszki owocowej Drosophila melanogaster.

Test pojedynczej muchy na zachowania żerowe u Drosophila

Tutaj prezentujemy protokół do ilościowego określenia unikania osób zestresowanych. Ten paradygmat jest potężny, ale przyjazny dla użytkownika i może być wykorzystany do oceny wpływu genów i środowiska na jeden rodzaj interakcji społecznych u Drosophila melanogaster.

Prosty test do ilościowego oznaczania unikania społecznego u Drosophila melanogaster

Aby zidentyfikować nowe mutacje wpływające na mechanosensację, zaprojektowaliśmy test, który mierzy reakcję behawioralną na stymulację dotykową szczeciny muchy u zmutowanych klonów generowanych metodą MARCM. Połączenie technik pozwala na identyfikację mutacji mechanowrażliwych, które w przeciwnym razie byłyby śmiertelne.

Test behawioralny do mechanosensacji klonów opartych na MARCM u Drosophila melanogaster

Ten artykuł opisuje test behawioralny, który wykorzystuje popęd godowy samców u Drosophila melanogaster do badania motywacji. Korzystając z tej metody, naukowcy mogą wykorzystać zaawansowane techniki neurogenetyczne much, aby odkryć mechanizmy genetyczne, molekularne i komórkowe, które leżą u podstaw tej motywacji.

Pomiar i zmiana popędu godowego u samca Drosophila melanogaster

Ten protokół ma na celu ocenę żywotności Drosophila na każdym etapie rozwoju, od zarodka do dorosłego osobnika. Metoda ta może być stosowana do określania i porównywania żywotności różnych genotypów lub warunków wzrostu.

Bezpośrednia i prosta metoda oceny żywotności Drosophila melanogaster od zarodka do dorosłego osobnika

Integralność bariery krew-mózg jest kluczowa dla funkcjonowania układu nerwowego. U Drosophila melanogaster bariera krew-mózg jest tworzona przez komórki glejowe podczas późnej embriogenezy. Protokół ten opisuje metody oznaczania tworzenia i utrzymywania bariery krew-mózg w zarodkach D. melanogaster i larwach trzeciego stadium rozwojowego.

Test integralności bariery krew-mózg u Drosophila melanogaster

Poznaj wysokoprzepustowy test do badania preferencji składania jaj u Drosophila melanogaster. Ta metoda pozwala identyfikować geny i neurony kontrolujące proste zachowania decyzyjne.

Wysokoprzepustowy test do badania preferencji składania jaj u poszczególnych Drosophila melanogaster

Przeglądaj więcej filmów