RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/53830-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Opisujemy wielozadaniową procedurę chromogenicznej hybrydyzacji in situ (MC-WISH) w nienaruszonych zarodkach Drosophila, pozwalającą na jednoczesne i specyficzne wykrywanie trzech różnych wzorców dystrybucji mRNA poprzez kontrastujące kolorowe osady.
Ogólnym celem projektu Chromogenic Multi-target WISH jest ułatwienie mapowania wzorców dystrybucji mRNA w nienaruszonych zarodkach Drosophila. Dzięki tej metodzie lokalizacje mRNA trzech różnych genów mogą być bezpośrednio porównane w obrębie tego samego zarodka. Wielokolorowy WISH może być używany do generowania map ekspresji genów w rozwijających się organizmach w szybki i niezawodny sposób. Może to dostarczyć ważnych wskazówek na temat interakcji regulacyjnych genów, aktywnego i embrionalnego rozwoju lub organogenezy. Główną zaletą tej techniki jest to, że wzorce ekspresji mRNA różnych genów są wizualizowane w charakterystycznych i kontrastujących kolorach. W ten sposób unikalne i nakładające się na siebie witryny wyrażeń mogą być wyróżniane z dużą dokładnością. Korzystając ze standardowych procedur, zbierz, zdechorionować, utrwalić i zdewitylizować wymagane zarodki. Przechowuj je w metanolu w zamrażarce, aż będą potrzebne. Teraz zacznij od zarodków w temperaturze pokojowej. Włóż wkładkę do pierwszego dołka płytki 12-dołkowej i dodaj dwa mililitry metanolu. Przenieś żądaną ilość zarodków do wkładki, która jest używana do przenoszenia zarodków przez cały zabieg. Teraz ponownie nawodnij zarodki za pomocą trzyminutowych inkubacji w zmniejszającej się serii metanolu. Zacznij od 75% metanolu w PBS. Następnie dodaj 50% metanolu w PBS-T. Następnie użyj 25% metanolu w PBS-T i zakończ dwiema inkubacjami w czystym PBS-T. Następnie umieść zarodki w 4% paraformaldehydzie w PBS przez 20 minut w temperaturze pokojowej. Usunąć utrwalacz, przemywając go czterema razy w PBS-T. Podczas etapów mycia rozmrozić i przygotować roztwory robocze dla proteinazy K i glicyny. Po umyciu należy przepuszczać zarodki w świeżo przygotowanej proteinazie K przez trzy minuty w temperaturze pokojowej. Zatrzymaj reakcję, przemywając dwie jednominutowe płukanki w świeżo przygotowanej glicynie. Następnie umieść zarodki w 4% paraformaldehydzie wyprodukowanym w PBS przez 20 minut w temperaturze pokojowej. Wypłukać paraformaldehyd czterema płukaniami w PBS-T po trzy minuty. Następnie przenieś zarodki do buforu prehybrydyzacyjnego. Można je przechowywać w zamrażarce do czasu, gdy będą potrzebne. Zacznij od rozprowadzenia zarodków w buforze prehy do dwóch mililitrowych probówek. Do każdej probówki wsypać około 15 mikrolitrów osiadłych zarodków. Teraz inkubuj zarodki w 65
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
15:42
Related Videos
13K Views
12:31
Related Videos
23.9K Views
13:54
Related Videos
26.7K Views
08:19
Related Videos
12.3K Views
03:26
Related Videos
597 Views
09:57
Related Videos
18.9K Views
14:21
Related Videos
13.7K Views
10:35
Related Videos
21.5K Views
08:29
Related Videos
3.5K Views
08:55
Related Videos
2.6K Views