2 października 2016
Przedstawiono metodę identyfikacji gatunków materiału botanicznego poprzez bezpośrednią analizę w czasie rzeczywistym - spektrometria mas o wysokiej rozdzielczości i wielowymiarowa analiza statystyczna.
Ogólnym celem tego eksperymentu jest identyfikacja gatunków materiału botanicznego za pomocą spektrometrii mas z jonizacją otoczenia. W połączeniu z wielowymiarową analizą statystyczną. Ta metoda może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania z dziedziny chemii i biologii, takie jak na przykład, jaki gatunek rośliny masz na podstawie jej chemicznego odcisku palca.
Możesz również uzyskać informacje na temat bioaktywnych cząsteczek znajdujących się w tkance roślinnej. Główną zaletą tej techniki jest to, że do analizy potrzebne jest bardzo niewielkie przygotowanie próbki, a dane można uzyskać w ciągu kilku minut. Metoda ta może być również stosowana do rozwiązywania innych problemów w chemii.
Na przykład śledzenie produktów pośrednich i produktów reakcji w syntezie organicznej, analizowanie złożonych matryc różnych typów i przeprowadzanie analizy przestrzeni nad głową. Aby przygotować świeży materiał liściowy kratomu, użyj dziurkacza o średnicy sześciu milimetrów, aby stworzyć jednolite kawałki materiału z liści kratomu z rośliny M.speciosa. Powtórz ten proces pięć razy.
Aby wyekstrahować proszek kratomu, należy wykonać 1,5 mililitrową probówkę mikrowirówkową i zawiesić niewielką ilość proszku Kratom Bali w jednym mililitrze mieszaniny rozpuszczalnika etanolowego do wody jeden do jednego. Powtórz ten proces pięć razy. Sonizować próbki ekstraktu z proszku kratom Bali w kąpieli ultradźwiękowej przez 30 minut w temperaturze otoczenia.
Następnie odwirować próbki ekstraktu z proszku kratom Bali przez dwie minuty w temperaturze 750 razy G w temperaturze otoczenia. Zdekantować rozpuszczalnik z pozostałości proszku do dalszej analizy. Aby przygotować nasiona datury, przekrój nasiona D.stramonium na pół w poprzek płaszczyzny poprzecznej za pomocą żyletki.
Powtórz ten proces, używając pięciu różnych nasion. Po ustawieniu parametrów spektrometru masowego lub MS zgodnie z opisem w protokole tekstowym, naciśnij Start Run w oprogramowaniu sterującym spektrometrem mas, aby przeanalizować liść kratomu. Zawiesić czad materiału roślinnego z liści kratomu między źródłem jonów a wlotem spektrometru masowego za pomocą pęsety, aż do uzyskania widma.
Powtórz tę procedurę pięć razy z oddzielnymi kawałkami materiału roślinnego. Aby skalibrować widmo za pomocą glikolu polietylenowego 600, w skrócie PEG, zanurz zamknięty koniec rurki kapilarnej do pomiaru temperatury topnienia w wzorcu peg. Zawiesić powlekaną kapilarnę między źródłem jonów a wlotem spektrometru masowego.
Wybierz przycisk Zatrzymaj, aby zakończyć przebieg analizy. Naciśnij Start Run w oprogramowaniu sterującym spektrometrem mas, aby przeanalizować wysuszony liść kratomu. Zawiesić niewielką ilość wysuszonego materiału liściowego między źródłem jonów a wlotem spektrometru mas za pomocą pęsety, aż do uzyskania widma.
Powtórz akwizycję pięć razy, analizując za każdym razem nowy materiał roślinny. Skalibruj widmo za pomocą PEG jak poprzednio, a następnie wybierz przycisk Stop, aby zakończyć przebieg analityczny. Aby przeanalizować proszek kratomu, naciśnij Start Run w oprogramowaniu sterującym spektrometrem mas.
Zanurz zamknięty koniec kapilary o temperaturze topnienia w proszku kratomu. Zawiesić powlekaną kapilarnę między źródłem jonów a wlotem spektrometru masowego do momentu uzyskania widma. Powtórz analizę pięć razy z nową kapilarną za każdym razem, a następnie wykonaj kalibrację PEG.
Aby przeanalizować ekstrakt z kratomu, zanurz koniec rurki kapilarnej w ekstrakcie. Zawiesić rurkę kapilarną w uchwycie na 12 próbek na szynie liniowej spektrometru mas. Powtórz pięć razy z innym ekstraktem za każdym razem.
Naciśnij Start Run w oprogramowaniu sterującym spektrometrem mas. Korzystając z panelu sterowania, wybierz przycisk przewijania do przodu, aby przesuwać szynę liniową przez strumień jonów z prędkością jednego milimetra na sekundę w celu zebrania widm. Skalibruj widmo za pomocą PEG jak poprzednio i naciśnij Stop, aby zakończyć przebieg analityczny.
Aby przeanalizować nasiona datury, naciśnij Start Run w oprogramowaniu sterującym spektrometrem mas. Zawiesić połówkę ziarna datury między źródłem jonów a wlotem spektrometru mas za pomocą pęsety, aż do zebrania widma. Upewnij się, że strona cięcia jest zorientowana w stronę źródła jonów.
Powtórz tę procedurę pięć razy, za każdym razem analizując nową połowę nasion. Zakończ analizę kalibracją PEG i naciśnij Stop, aby zakończyć przebieg analityczny. Po przetworzeniu danych zgodnie z opisem w protokole tekstowym należy przeprowadzić analizę składowych podstawowych, przechodząc do sekcji Classify oprogramowania do analizy spektralnej na karcie Setup (Konfiguracja) i tworząc klasy do przetwarzania danych, wybierając opcję Add Class (Dodaj klasę).
Zaimportuj pliki tekstowe danych, wybierając pozycję Dodaj pliki. Przypisz pliki danych do odpowiedniej klasy zakładu, wybierając Pliki tekstowe i Ustaw klasę dla wybranych plików. Wybierz masy elementów do dyskryminacji z MS z zestawu treningowego i ustaw procent progu na 1%Następnie ustaw tolerancję masy na 10 i wybierz opcję Buduj wektory z plików danych.
W sekcji Obliczenia przeprowadź analizę składowych podstawowych, zaznaczając pole wyboru 3D PCA Graph (Wykres 3D PCA) i wybierz opcję Oblicz. Przeprowadź krzyżową walidację typu leave-one-out, wybierając pozycję Weryfikuj. Następnie wygeneruj mapę cieplną danych, przechodząc do zakładki Wykres częstotliwości w oprogramowaniu do analizy spektralnej i wybierając Mapa cieplna.
Wybierz opcję Próg zapisanych danych, aby ustawić próg obfitości na 1%Wyeksportuj mapę skupień do arkusza kalkulacyjnego, wybierając pozycję Zapisz mapę skupień w programie Excel. W programie arkusza kalkulacyjnego zapisz wyeksportowaną mapę cieplną jako plik tekstowy. Następnie, aby przeprowadzić hierarchiczną analizę grupowania, zaimportuj mapę skupień jako plik tekstowy do oprogramowania Cluster 3.0.
Na karcie Hierarchiczne klastra 3.0 w obszarze Geny i tablice zaznacz pola wyboru Grupowanie i Oblicz wagi. Ustaw wartość odcięcia na 0,1, a wykładnik na jeden. Wybierz grupowanie z pojedynczym połączeniem, aby przeprowadzić analizę.
Na koniec wyświetl wygenerowany plik danych cdt w widoku drzewa Java. Reprezentatywne widma trybu jonów dodatnich miękkiej jonizacji produktów kratomu są pokazane tutaj. Zidentyfikowano związki wcześniej wyizolowane z M.speciosa.
W tym biomarkery psychoaktywne Mitraginina i 7-hydroksy-mitragynina. Reprezentatywne widma trybu jonów dodatnich miękkiej jonizacji nasion datury są pokazane tutaj. Zidentyfikowano związki wcześniej wyizolowane z datury, w tym biomarkery psychoaktywne atropinę i skopolaminę.
Renderingi map cieplnych danych spektrometrii mas są zilustrowane tutaj. Pokazano analizę głównych składowych lub wykres PCA danych kratomu i datury. Wykres PCA wyraźnie pokazuje, że dane dotyczące kratomu i dane dotyczące datury są dobrze oddzielone od siebie.
Analiza PCA wykazała również, że poszczególne odmiany kratomu i różne gatunki datury mogą być identyfikowane i odróżniane od siebie. Przedstawiono hierarchiczną analizę skupień lub wyniki HCA danych spektralnych mas kratomu i datury. Wyniki HCA ujawniły zróżnicowanie klas, gatunków i odmian wyłącznie w oparciu o bezpośrednią analizę danych pochodzących ze spektrometrii mas o wysokiej rozdzielczości w czasie rzeczywistym i potwierdziły wyniki analizy PCA.
Po opanowaniu tej techniki można wykonać w mniej niż godzinę, w zależności od liczby posiadanych próbek, jeśli zostanie to wykonane prawidłowo. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak korzystać z bezpośredniej analizy i spektrometrii mas w czasie rzeczywistym do analizy złożonych próbek i korzystania z analizy statystycznej przetwarzania danych w celu uzyskania informacji o gatunkach. Podczas próby wykonania tej procedury ważne jest, aby trzymać próbkę w strumieniu jonów przez odpowiedni czas, aby uzyskać pełne spektrum masowe próbki.
Technika ta pozwoliła naukowcom z wielu dziedzin, w tym z zakresu omiki roślin, kryminalistyki, chemii organicznej i analitycznej, na analizę substancji lotnych emitowanych przez rośliny, zidentyfikowanie legalnych alternatyw w celu wywołania narkotyków i monitorowanie produktów reakcji w czasie rzeczywistym.
Niniejsze badanie przedstawia metodę identyfikacji gatunków botanicznych za pomocą bezpośredniej analizy w czasie rzeczywistym z wysoką rozdzielczością spektrometrii masowej w połączeniu z wielowymiarową analizą statystyczną. Technika ta pozwala na szybka analizę z minimalną przygotowaniem próbki, zapewniając wgląd w skład chemiczny materiałów roślinnych.
Direct analysis in real time-high resolution mass spectrometry (DART-HRMS) enables rapid, high-throughput species identification of botanical materials, streamlining early-stage discovery and quality control workflows. By generating chemical fingerprints without extensive sample preparation, this approach enhances predictive confidence and supports portfolio triage in botanical and natural product R&D. The integration of multivariate statistical analysis further strengthens target validation and mechanistic de-risking for plant-derived bioactive compounds.
DART-HRMS with multivariate analysis integrates at the interface of early discovery, screening, and preclinical research for botanical and natural product pipelines.