Name: Oczyszczanie całego genomu pozachromosomalnego kolistego DNA z komórek eukariotycznych (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-04-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 26 s
Description: Poznaj metodę Circle-Seq do oczyszczania i wykrywania pozachromosomalnego kolistego DNA w komórkach Saccharomyces cerevisiae. Protokół obejmuje oczyszczanie kolumnowe, trawienie egzonukleazą, amplifikację rolling-circle i sekwencjonowanie nowej generacji.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Podziękowania dla Kenna D. Møllera i Clausa Sternberga (DTU) za pomoc techniczną oraz dla Tue S. Jørgensena za ilościową analizę PCR.

UWAGA: Przegląd metody oczyszczania i sekwencjonowania DNA w cyklu (Circle-Seq) przedstawiono na rysunku 1.
1. Uprawa, zbieranie komórek i niszczenie błony komórkowej
<ol>
	<li>Zaszczepić komórki drożdży (na przykład Saccharomyces cerevisiae) z kultury O/N w 50 ml kompletnej pożywki z dekstrozy peptonowej drożdży (YPD). Zaszczepiać przy niskiej początkowej gęstości komórek 1-3 x 105 komórek/ml lub gęstości optycznej około 0,01 OD600.
	<ol>
		<li>Inkubować komórki w temperaturze 30 °C z mieszaniem przy 150 obrotach na minutę (obr./min), aż komórki osiągną maksymalną gęstość komórek około 1 x10 10 komórek, około po 24 do 48 godzinach lub gęstość optyczną przy OD600 > 10,0, 
		UWAGA: Czas uprawy nie jest kluczowy, ponieważ można stosować niższe stężenia komórek.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przenieść wyrośniętą kulturę do stożkowej probówki o pojemności 50 ml, osadzać komórki przez odwirowanie przy 800 x g przez 3 minuty i odrzucić supernatant.</li>
	<li>Przepłukać osad 25 ml roztworu buforowego 10 mM Tris-Cl, 1 mM EDTA, pH 8,0, ponownie zagnieździć komórki przez odwirowanie przy 800 x g przez 3 minuty i odrzucić supernatant.</li>
	<li>Zawiesić osad komórkowy w 1,2 ml buforu do resuspensji dostarczonego z zestawu do oczyszczania kolumny plazmidowej.</li>
	<li>Opcjonalny krok: Dodaj wysoce rozcieńczone plazmidy jako kontrole do oczyszczania kolistych elementów DNA20, 
	UWAGA: W obecnym zestawie danych mieszaninę plazmidu o stężeniu 7,7 μl zastosowano do każdej próbki zawierającej 1010 komórek. Podstawowa mieszanina plazmidów składała się z trzech plazmidów w różnych stężeniach; pBR322 przy 38 ng/próbkę, pUC19 przy 0,5 ng/próbkę i pUG72 przy 0,01 ng/próbkę.</li>
	<li>Przenieść zawiesinę komórek do dwóch probówek mikrowirówek o pojemności 2 ml, z których każda jest uzupełniona szklanymi kulkami o średnicy 0,5 mm w stosunku 1:3 całkowitej objętości zawiesiny.</li>
	<li>Wiruj każdą probówkę z maksymalną prędkością przez 10 minut, aby rozerwać błony komórek plazmatycznych. Granulki zagnieździć przez odwirowanie przy 268 x g przez 30 sekund i przenieść 1,2 ml połączonego supernatantu z dwóch probówek do mikrowirówki do nowej probówki. 
	UWAGA: Alternatywą dla kroku 1.6-1.7 jest użycie zymoliazy do rozbicia komórek w 0,6 ml roztworu buforowego do recytacji. Dziesięć jednostek zymoliazy może rozbić 5 x 107 komórek w ciągu 1,5 godziny w temperaturze 35 °C.</li>
</ol>
2. Wzbogacanie EccDNA metodą chromatografii kolumnowej
<ol>
	<li>Postępuj zgodnie z protokołem z zestawu do kolumnowego oczyszczania plazmidów. Krótko mówiąc, potraktować każdą próbkę 1,2 ml roztworu alkalicznego, delikatnie wymieszać i inkubować przez 3 minuty w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Dodać 1,2 ml buforu neutralizacyjnego, delikatnie wymieszać i odwirować przy 9650 x g przez 5 minut.</li>
	<li>Załadować roztwór do kolumny zrównoważonej 1 ml roztworu równoważącego i pozwolić, aby ciecz przepływała przez kolumnę pod wpływem grawitacji.</li>
	<li>Przemyć kolumnę 4 ml roztworu myjącego. Gdy roztwór przejdzie przez żywicę, ostrożnie dodaj 0,3 ml roztworu elucyjnego, aby zastąpić większość pustej objętości 0,35 ml kolumny.</li>
	<li>Wypłukać DNA do nowej probówki zbiorczej z 1 ml roztworu elucyjnego i wytrącić DNA, dodając 0,8 ml mieszaniny wytrącającej. Wirować przy 9650 x g przez 10 min.</li>
	<li>Przemyć osad DNA 0,5 ml 70% etanolu, odwirować przy 9650 x g przez 5 minut, wysuszyć na powietrzu przez 5 do 15 minut i rozpuścić oczyszczone DNA w 25 μl sterylnej wody. 
	UWAGA: Zaleca się tylko krótkotrwałe przechowywanie DNA w wodzie. Preferencyjnie przejdź bezpośrednio do kroku 3.</li>
</ol>
3. Trawienie pozostałego liniowego chromosomalnego DNA
<ol>
	<li>Opcjonalny krok: Aby ułatwić specyficzne trawienie liniowego DNA przez egzonukleazę, należy potraktować oczyszczone DNA rzadkim endonukleazą, taką jak NotI. W przypadku 5 μg DNA należy użyć 1 jednostki NotI, 5 μl 10x buforu wytrawiającego i sterylnej wody do całkowitej objętości 50 μl. Inkubować reakcję w temperaturze 37°C przez 16 godzin i podgrzewać, dezaktywować endonukleazę w temperaturze 80°C przez 5 minut.</li>
	<li>Dodaj 20 jednostek egzonukleazy (2 μl), 4 μl ATP (25 mM), 34 μl sterylnej wody i 10 μl 10x buforu reakcyjnego bezpośrednio do 50 μl DNA rozszczepionego endonukleazą, aby osiągnąć 1x objętość reakcyjną 100 μl, używając zestawu egzonukleazy zależnej od ATP.</li>
	<li>Przeprowadzić hydrolizę liniowego jednoniciowego i dwuniciowego DNA w temperaturze 37°C przez 5 dni lub dłużej. Dodawaj dodatkowe 4 μl ATP (25 mM), 0,6 μl 10x buforu reakcyjnego i 20 jednostek egzonukleazy co 24 godziny, aby kontynuować trawienie enzymatyczne DNA przy 1x objętości reakcji.</li>
	<li>Po usunięciu liniowego DNA pobrać próbkę 2 μl z roztworu poddanego działaniu egzonukleazy, aby potwierdzić eliminację chromosomalnego liniowego DNA w ilościowej reakcji łańcuchowej polimerazy (qPCR), przy użyciu markera chromosomalnego, takiego jak gen aktyny ACT120.
	<ol>
		<li>Każda objętość reakcyjna qPCR o objętości 20 μl zawiera 2 μl próbki poddanej działaniu egzonukleazy, 150 nM starterów ACT1 5'-TCCGTCTGGATTGGTGGTTTTA-3' i 5'-TGGACCACTTTCGTCGTATTC-3', 2% (objętość/objętość) dimetylosulfotlenku i 10 μl zielonej fluorescencyjnej mieszaniny wzorcowej.</li>
		<li>Stosować warunki reakcji: 3 minuty w temperaturze 95°C, a następnie 45 cykli po 15 sekund w temperaturze 95°C i 30 sekund w temperaturze 60°C. 
		UWAGA: ACT1 jest szczególnie odpowiednim markerem dla liniowego DNA, ponieważ zmiany liczby kopii w tym genie są szkodliwe21-23, więc eccDNA nie powinno być nosicielem ACT1.</li>
		<li>Alternatywą dla analizy trawienia DNA za pomocą qPCR jest standardowy PCR (4.3) lub barwienie jodkiem propidyny (4.4).
		<ol>
			<li>Użyj 2 μl próbki poddanej egzonukleazie jako matrycy PCR ze starterami ACT1 5'-TGGATTCTGGTATGTTCTAGC-3' i 5'-GAACGACGTGAGTAACACC-3'. Jako pozytywną kontrolę ACT1 użyj 50-100 ng genomowego DNA S. cerevisiae jako matrycy. warunki reakcji PCR; 3 minuty w temperaturze 95°C, a następnie 35 cykli po 30 sekund w temperaturze 95°C, 30 sekund w temperaturze 56°C i 1 minuta w temperaturze 72°C.</li>
			<li>Przeprowadź reakcje PCR metodą elektroforezy żelowej na 1% agarozie z 0,5 μg/ml bromku etydyny. Poszukaj pasma ACT1 o rozmiarze 0,8 kb. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Brak lub obecność liniowego DNA można również zbadać za pomocą barwienia jodkiem propidyny przed i po amplifikacji DNA.
		<ol>
			<li>Zmieszać każdą próbkę DNA w objętości 1:1 z roztworem 1:1000 H 2O-rozcieńczonym 20 mM jodku propidyny. Pozostaw roztwór w ciemności na 10-20 minut w temperaturze pokojowej i przeanalizuj barwienie DNA za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej przy 100-krotnym powiększeniu przy użyciu czerwonego filtra fluorescencyjnego wzbudzenia przy 663-738 nm i czasie naświetlania od 5 do 30 sekund. Jako kontrolę barwienia DNA użyj amplifikowanego ø29 genomowego DNA z drożdży i/lub plazmidu amplifikowanego ø29.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Podgrzewać roztwór egzonukleazy w temperaturze 70°C przez 30 minut.</li>
</ol>
4. Amplifikacja DNA
<ol>
	<li>Amplifikować oczyszczone i wzbogacone eccDNA z kroku 3.5) za pomocą polimerazy DNA ø2924-26 zgodnie z protokołem producenta polimerazy.
	<ol>
		<li>Krótko mówiąc, wymieszaj 5 μl wzbogaconego eccDNA z 5 μl buforu denaturacyjnego.</li>
		<li>Po 3 minutach w suchej temperaturze dodać 10 μl buforu neutralizującego. Delikatnie wymieszać i dodać 30 μl mieszanki wzorcowej zawierającej 29 μl buforu reakcyjnego i 1 μl polimerazy DNA ø29. Inkubować reakcję w temperaturze 30°C przez 16 godzin lub dłużej (do 72 godzin). Podgrzewać dezaktywację polimerazy DNA ø29 w temperaturze 65°C przez 3 min.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. Sekwencjonowanie i analiza danych
<ol>
	<li>Ścinać amplifikowane eccDNA za pomocą zogniskowanego ultrasonografu do średniej docelowej wielkości piku 300 pz. Użyj następujących ustawień dla próbki DNA 130 μl: moc szczytowa 450 W, obróbka 60 sekund, 30% współczynnik aktywności, 200 cykli na serię, temperatura 7°C.</li>
	<li>Dodaj etykiety indeksów kodów kreskowych i adaptery do pofragmentowanych odczytów w celu syntezy bibliotek do sekwencjonowania, przy użyciu odpowiedniej metody przygotowania biblioteki.</li>
	<li>Uruchamiaj głębokie sekwencjonowanie, na przykład jako odczyty 141-nukleotydowe pojedynczego końca na platformie sekwencjonowania o wysokiej przepustowości.</li>
	<li>Mapuj odczyty do badanego genomu referencyjnego drożdży i zezwalaj na odczyty w celu mapowania do wielu regionów. Na przykład można skorzystać z ogólnodostępnego systemu przepływu pracy27,28 i oprogramowania do mapowania nakładek z krótkim odczytem29.</li>
	<li>Zidentyfikuj odczyty z regionów przypuszczalnych eccDNA przy użyciu ciągłych odczytów, na przykład więcej niż siedmiu ciągłych odczytów (>1 kb) bez przerw20. 
	UWAGA: Oprogramowanie jest dostępne>27,28 do eksploracji zmapowanych odczytów w interesujących regionach genomu.</li>
</ol>

<ol><li>Kugelberg, E., Kofoid, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Tandem+Inversion+Duplication+in+Salmonella+enterica.%3A+Selection+Drives+Unstable+Precursors+to+Final+Mutation+Types%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The Tandem Inversion Duplication in Salmonella enterica.: Selection Drives Unstable Precursors to Final Mutation Types.</a> Genetics. 185 (1), 65-80 (2010).</li>
<li>Reams, A. B., Kofoid, E., Savageau, M., Roth, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Duplication+Frequency+in+a+Population+of+Salmonella+enterica.+Rapidly+Approaches+Steady+State+With+or+Without+Recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Duplication Frequency in a Population of Salmonella enterica. Rapidly Approaches Steady State With or Without Recombination.</a> Genetics. 184 (4), 1077-1094 (2010).</li>
<li>Smith, C. A., Vinograd, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+polydisperse+circular+DNA+of+HeLa+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Small polydisperse circular DNA of HeLa cells.</a> Journal of Molecular Biology. 69 (2), 163-178 (1972).</li>
<li>Carroll, S. M., DeRose, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Double+Minute+Chromosomes+Can+Be+Produced+from+Precursors+Derived+from+a+Chromosomal+Deletion%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+cellular+biology%22%5BJournal%5D)">Double Minute Chromosomes Can Be Produced from Precursors Derived from a Chromosomal Deletion.</a> Molecular and cellular biology. 8 (4), 1525-1533 (1988).</li>
<li>Cohen, S., Yacobi, K., Segal, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrachromosomal+Circular+DNA+of+Tandemly+Repeated+Genomic+Sequences+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+research%22%5BJournal%5D)">Extrachromosomal Circular DNA of Tandemly Repeated Genomic Sequences in Drosophila.</a> Genome research. 13 (6A), 1133-1145 (2003).</li>
<li>Horowitz, H., Haber, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+Autonomously+Replicating+Circular+Subtelomeric+Y%27+Elements+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+cellular+biology%22%5BJournal%5D)">Identification of Autonomously Replicating Circular Subtelomeric Y' Elements in Saccharomyces cerevisiae.</a> Molecular and cellular biology. 5 (9), 2369-2380 (1985).</li>
<li>Moore, I. K., Martin, M. P., Dorsey, M. J., Paquin, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+Circular+Amplifications+in+Saccharomyces+cerevisiae+by+a+Breakage-Fusion-Bridge+Mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+and+molecular+mutagenesis%22%5BJournal%5D)">Formation of Circular Amplifications in Saccharomyces cerevisiae by a Breakage-Fusion-Bridge Mechanism.</a> Environmental and molecular mutagenesis. 36 (2), 113-120 (2000).</li>
<li>Gresham, D., Usaite, R., Germann, S. M., Lisby, M., Botstein, D., Regenberg, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptation+to+diverse+nitrogen-limited+environments+by+deletion+or+extrachromosomal+element+formation+of+the+GAP1+locus%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Adaptation to diverse nitrogen-limited environments by deletion or extrachromosomal element formation of the GAP1 locus.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (43), 18551-18556 (2010).</li>
<li>Windle, B., Draper, B. W., Yin, Y. X., O'Gorman, S., Wahl, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+central+role+for+chromosome+breakage+in+gene+amplification%2C+deletion+formation%2C+and+amplicon+integration%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+%26+development%22%5BJournal%5D)">A central role for chromosome breakage in gene amplification, deletion formation, and amplicon integration.</a> Genes & development. 5 (2), 160-174 (1991).</li>
<li>Gresham, D., Ruderfer, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-Wide+Detection+of+Polymorphisms+at+Nucleotide+Resolution+with+a+Single+DNA+Microarray%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Genome-Wide Detection of Polymorphisms at Nucleotide Resolution with a Single DNA Microarray.</a> Science. 311 (5769), 1932-1936 (2006).</li>
<li>Kidd, J. M., Cooper, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+and+sequencing+of+structural+variation+from+eight+human+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mapping and sequencing of structural variation from eight human genomes.</a> Nature. 453 (7191), 56-64 (2008).</li>
<li>Gresham, D., Desai, M. M., Botstein, D., Dunham, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Repertoire+and+Dynamics+of+Evolutionary+Adaptations+to+Controlled+Nutrient-Limited+Environments+in+Yeast%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genetics%22%5BJournal%5D)">The Repertoire and Dynamics of Evolutionary Adaptations to Controlled Nutrient-Limited Environments in Yeast.</a> PLoS Genetics. 4 (12), 1-19 (2008).</li>
<li>Lang, G. I., Botstein, D., Desai, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+Variation+and+the+Fate+of+Beneficial+Mutations+in+Asexual+Populations%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Genetic Variation and the Fate of Beneficial Mutations in Asexual Populations.</a> Genetics. 188 (3), 647-661 (2011).</li>
<li>van Loon, N., Miller, D., Murnane, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+extrachromosomal+circular+DNA+in+HeLa+cells+by+nonhomologous+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Formation of extrachromosomal circular DNA in HeLa cells by nonhomologous recombination.</a> Nucleic Acids Research. 22 (13), 2447-2452 (1994).</li>
<li>Vinograd, J., Lebowitz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+and+Topological+Properties+of+Circular+Dna%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+General+Physiology%22%5BJournal%5D)">Physical and Topological Properties of Circular Dna.</a> Journal of General Physiology. 49 (6P2), 103(1966).</li>
<li>Shibata, Y., Kumar, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrachromosomal+MicroDNAs+and+Chromosomal+Microdeletions+in+Normal+Tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Extrachromosomal MicroDNAs and Chromosomal Microdeletions in Normal Tissues.</a> Science. 336 (6077), 82-86 (2012).</li>
<li>Dillon, L. W., Kumar, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+Extrachromosomal+MicroDNAs+Is+Linked+to+Mismatch+Repair+Pathways+and+Transcriptional+Activity%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Production of Extrachromosomal MicroDNAs Is Linked to Mismatch Repair Pathways and Transcriptional Activity.</a> Cell Reports. 11 (11), 1749-1759 (2015).</li>
<li>Li, L. L., Norman, A., Hansen, L. H., Sørensen, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metamobilomics+-+our+knowledge+on+the+pool+of+plasmid+encoded+traits+in+natural+environments+using+high-throughput+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+microbiology+and+infection+%3A+the+official+publication+of+the+European+Society+of+Clinical+Microbiology+and+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Metamobilomics - our knowledge on the pool of plasmid encoded traits in natural environments using high-throughput sequencing.</a> Clinical microbiology and infection : the official publication of the European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. 18, 5-7 (2012).</li>
<li>Brown Kav, A., Sasson, G., Jami, E., Doron-Faigenboim, A., Benhar, I., Mizrahi, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+the+bovine+rumen+plasmidome%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Insights into the bovine rumen plasmidome.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (14), 5452-5457 (2012).</li>
<li>Møller, H. D., Parsons, L., Jørgensen, T. S., Botstein, D., Regenberg, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrachromosomal+circular+DNA+is+common+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Extrachromosomal circular DNA is common in yeast.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , 201508825(2015).</li>
<li>Drubin, D. G., Miller, K. G., Botstein, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yeast+Actin-Binding+Proteins+-+Evidence+for+a+Role+in+Morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Yeast Actin-Binding Proteins - Evidence for a Role in Morphogenesis.</a> The Journal of cell biology. 107 (6), 2551-2561 (1988).</li>
<li>Magdolen, V., Drubin, D. G., Mages, G., Bandlow, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+levels+of+profilin+suppress+the+lethality+caused+by+overproduction+of+actin+in+yeast+cells%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+letters%22%5BJournal%5D)">High levels of profilin suppress the lethality caused by overproduction of actin in yeast cells.</a> FEBS letters. 316 (1), 41-47 (1993).</li>
<li>Sandrock, T. M., Brower, S. M., Toenjes, K. A., Adams, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppressor+analysis+of+fimbrin+%28Sac6p%29+overexpression+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Suppressor analysis of fimbrin (Sac6p) overexpression in yeast.</a> Genetics. 151 (4), 1287-1297 (1999).</li>
<li>Blanco, L., Bernad, A., Lázaro, J. M., Martìn, G., Garmendia, C., Salas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+Efficient+DNA+Synthesis+by+the+Phage+%C3%B829+DNA+Polymerase%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+biological+chemistry%22%5BJournal%5D)">Highly Efficient DNA Synthesis by the Phage ø29 DNA Polymerase.</a> The Journal of biological chemistry. 264 (15), 8935-8940 (1989).</li>
<li>Dean, F. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Amplification+of+Plasmid+and+Phage+DNA+Using+Phi29+DNA+Polymerase+and+Multiply-Primed+Rolling+Circle+Amplification%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+research%22%5BJournal%5D)">Rapid Amplification of Plasmid and Phage DNA Using Phi29 DNA Polymerase and Multiply-Primed Rolling Circle Amplification.</a> Genome research. 11 (6), 1095-1099 (2001).</li>
<li>Hutchison, C. A., Smith, H. O., Pfannkoch, C., Venter, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+cloning+using+%C3%B829+DNA+polymerase%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Cell-free cloning using ø29 DNA polymerase.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (48), 17332-17336 (2005).</li>
<li>Goecks, J., Nekrutenko, A., Taylor, J., Galaxy Team, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Galaxy%3A+a+comprehensive+approach+for+supporting+accessible%2C+reproducible%2C+and+transparent+computational+research+in+the+life+sciences%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">Galaxy: a comprehensive approach for supporting accessible, reproducible, and transparent computational research in the life sciences.</a> Genome Biology. 11 (8), 86(2010).</li>
<li>Giardine, B., Riemer, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Galaxy%3A+A+platform+for+interactive+large-scale+genome+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+research%22%5BJournal%5D)">Galaxy: A platform for interactive large-scale genome analysis.</a> Genome research. 15 (10), 1451-1455 (2005).</li>
<li>Langmead, B., Salzberg, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+gapped-read+alignment+with+Bowtie+2%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Fast gapped-read alignment with Bowtie 2.</a> Nature Methods. 9 (4), 357(2012).</li>
<li>Tsalik, E. L., Gartenberg, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Curing+Saccharomyces+cerevisiae+of+the+2+micron+plasmid+by+targeted+DNA+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Yeast%22%5BJournal%5D)">Curing Saccharomyces cerevisiae of the 2 micron plasmid by targeted DNA damage.</a> Yeast. 14 (9), Chichester, England 847-852 (1998).</li>
<li>Norman, A., Riber, L., Luo, W., Li, L. L., Hansen, L. H., Sørensen, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Improved+Method+for+Including+Upper+Size+Range+Plasmids+in+Metamobilomes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">An Improved Method for Including Upper Size Range Plasmids in Metamobilomes.</a> PLoS ONE. 9 (8), e104405(2014).</li>
<li>Storlazzi, C. T., Lonoce, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+amplification+as+double+minutes+or+homogeneously+staining+regions+in+solid+tumors%3A+Origin+and+structure%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+research%22%5BJournal%5D)">Gene amplification as double minutes or homogeneously staining regions in solid tumors: Origin and structure.</a> Genome research. 20 (9), 1198-1206 (2010).</li>
<li>Von Hoff, D. D., Needham-VanDevanter, D. R., Yucel, J., Windle, B. E., Wahl, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amplified+human+MYC+localized+to+replicating+submicroscopic+circular+DNA+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Amplified human MYC localized to replicating submicroscopic circular DNA molecules.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 85 (13), 4804-4808 (1988).</li>
<li>Raymond, E., Faivre, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+hydroxyurea+on+extrachromosomal+DNA+in+patients+with+advanced+ovarian+carcinomas%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+cancer+research+%3A+an+official+journal+of+the+American+Association+for+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Effects of hydroxyurea on extrachromosomal DNA in patients with advanced ovarian carcinomas.</a> Clinical cancer research : an official journal of the American Association for Cancer Research. 7 (5), 1171-1180 (2001).</li>
<li>Shimizu, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrachromosomal+Double+Minutes+and+Chromosomal+Homogeneously+Staining+Regions+as+Probes+for+Chromosome+Research%5BTitle%5D)+AND+%22Cytogenetic+and+genome+research%22%5BJournal%5D)">Extrachromosomal Double Minutes and Chromosomal Homogeneously Staining Regions as Probes for Chromosome Research.</a> Cytogenetic and genome research. 124 (3-4), 3-4 (2009).</li>
<li>Eckhardt, S. G., Dai, A., Davidson, K. K., Forseth, B. J., Wahl, G. M., Von Hoff, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+differentiation+in+HL60+cells+by+the+reduction+of+extrachromosomally+amplified+c-myc%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Induction of differentiation in HL60 cells by the reduction of extrachromosomally amplified c-myc.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (14), 6674-6678 (1994).</li>
<li>Vogt, N., Lefèvre, S. -H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+structure+of+double-minute+chromosomes+bearing+amplified+copies+of+the+epidermal+growth+factor+receptor+gene+in+gliomas%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Molecular structure of double-minute chromosomes bearing amplified copies of the epidermal growth factor receptor gene in gliomas.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (31), 11368-11373 (2004).</li>
<li>Ahn, K., Gotay, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+rate+of+disease-related+copy+number+variations+in+childhood+onset+schizophrenia%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+psychiatry%22%5BJournal%5D)">High rate of disease-related copy number variations in childhood onset schizophrenia.</a> Molecular psychiatry. 19 (5), 568-572 (2013).</li>
<li>Girirajan, S., Johnson, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+increases+in+both+common+and+rare+copy+number+load+associated+with+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Human+molecular+genetics%22%5BJournal%5D)">Global increases in both common and rare copy number load associated with autism.</a> Human molecular genetics. 22 (14), 2870-2880 (2013).</li>
<li>Vogt, N., Gibaud, A., Lemoine, F., de la Grange, P., Debatisse, M., Malfoy, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amplicon+rearrangements+during+the+extrachromosomal+and+intrachromosomal+amplification+process+in+a+glioma%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Amplicon rearrangements during the extrachromosomal and intrachromosomal amplification process in a glioma.</a> Nucleic Acids Research. , (2014).</li>
</ol>

Autorzy oświadczają, że nie mają konkurencyjnych interesów finansowych.

Metoda Circle-Seq umożliwia wykrywanie eccDNA w skali genomu z komórek drożdży z rozdzielczością na poziomie sekwencji. Metoda ta polega na łagodnym oczyszczaniu eccDNA, które nie wymaga intensywnego wirowania ani pipetowania i wykorzystuje separację kolumn grawitacyjnie w celu ograniczenia pękania eccDNA, które prowadziłoby do trawienia egzonukleazą na kolejnym etapie. Te cechy metody mogą mieć kluczowe znaczenie dla wykrywania dużych eccDNA, które zawierają sekwencje genów. Circle-Seq wykrył liczne eccDNA, w tym pełne geny (zestaw danych 1). Wykryto również mitochondrialne DNA drożdży o wielkości 86 kb. W ten sposób protokół ten ułatwia oczyszczanie dużych kolistych elementów DNA. Ograniczenie liczby etapów ekstrakcji DNA do minimum zmniejsza ryzyko utraty eccDNA i maksymalizuje wydajność. Opierając się na wynikach dla kontroli, wzbogaconych plazmidów, Circle-Seq jest bardzo czuły, wykrywając pojedyncze koliste DNA z 2500 komórek. Co więcej, usunięcie licznych endogennych plazmidów, takich jak plazmid 2μ lub mitochondrialne DNA, może znacznie zwiększyć wrażliwość. Utwardzanie 2μ z kultur drożdży opisano30. Alternatywnie, usunięcie 2μ i mitochondrialnego DNA można osiągnąć za pomocą rzadkiej endonukleazy tnącej, takiej jak SwaI. Jednak etap enzymu restrykcyjnego może być ukierunkowany na inne interesujące eccDNA i ograniczyć całkowitą wydajność eccDNA.
Krytycznymi etapami wykrywania eccDNA było usunięcie liniowego DNA (krok 3) i sekwencjonowanie DNA (krok 5) na odpowiednią głębokość. Aby zarejestrować większość eccDNA z populacji komórek, może być wymagane głębokie sekwencjonowanie20. Sekwencjonowanie sparowanych końców powinno zapewnić jeszcze większą pewność wykrywania eccDNA, ponieważ oczekuje się, że okrągłe połączenia DNA dadzą odczyty sparowanych końców, które mapują się niezgodnie z przepisami. Rozbieżności te wspierają odkrycie kolistych struktur DNA i mogą być potencjalnie wykorzystane jako dodatkowy filtr do wykrywania eccDNA.
Metodę Circle-Seq zwalidowano przy użyciu trzech niezależnych S. cerevisiae CEN. Populacje farmakokinetyki. Wykryte sekwencje obejmowały wcześniej zgłoszone eccDNA, endogenne plazmidy i plazmidy z kolcami oraz setki domniemanych eccDNA (zestaw danych 1). Wyniki te potwierdzają poprzednie zestawy danych Circle-Seq z S. cerevisiae S288c 20. Odkrycie kilku eccDNA wspólnych dla CEN. Populacje PK i S288c wskazują, że loci te mają skłonność do istnienia jako elementy koliste (ryc. 4). Wcześniej wykazaliśmy, że [krąg GAP1] jest wzbogacany w warunkach ograniczonych azotem w CEN. Tło PK8, chociaż nie znaleziono dowodów na [krąg GAP1] w innych tłach szczepów. Znalezienie eccDNA z loci CUP1-1 RSC30, ASP3-1, COS111 i HXT6 HXT7 zarówno w S288c, jak i CEN. PK sugeruje, że predyspozycja do krążenia DNA jest zachowana między szczepami drożdży. Pozostaje do pokazania, czy [koło HXT6/7], [koło ASP3-1], [koło COS111] i [koło CUP1-1 RSC30] przyznają komórkom selektywne korzyści, czy też ich istnienie jest jedynie efektem wysokich wskaźników krążenia DNA.
Podsumowując, wyniki wskazują, że Circle-Seq dobrze nadaje się do wykrywania eccDNA o rozmiarach kilozasad i ma zalety w identyfikacji eccDNA z kompletnymi genami. Circle-Seq to bardzo czuła metoda, która umożliwia badania przesiewowe eccDNA drożdży w skali całego genomu. Metoda Circle-Seq może otworzyć nową dziedzinę badań mających na celu wyjaśnienie roli eccDNA w generowaniu delecji i amplifikacji genów. Biorąc pod uwagę, że architektura i struktura DNA są w dużej mierze zachowane od drożdży eukariotycznych do wyższych eukariontów, metoda Circle-Seq powinna w zasadzie mieć zastosowanie do wszystkich komórek eukariotycznych, z niewielkimi modyfikacjami. Obecnie wydaje się, że metoda ta nie ma żadnych ograniczeń, chociaż jej zdolność do oczyszczania eccDNA o rozmiarach megazasad nie została jeszcze wykazana. Ponadto zastosowanie polimerazy DNA ø29, która wykorzystuje metodę amplifikacji w kształcie koła31, powoduje skłonność do mniejszych eccDNA, co utrudnia kwantyfikację eccDNA. Circle-Seq wykrywa eccDNA wystarczająco duże, aby przenosić pełne geny, dzięki czemu nadaje się do badań nad podwójnymi minutami - kolistym DNA z ludzkich komórek somatycznych. Podwójne minuty mogą przyczyniać się do raka, gdy protoonkogeny są amplifikowane na tych pierwiastkach32-37. Badania eccDNA w komórkach linii rozrodczej mogą być wykorzystane do pomiaru częstości mutacji w linii zarodkowej i oceny jakości nasienia, na przykład u zwierząt gospodarskich. W związku z tym projekt Circle-Seq ma potencjał, aby uzyskać wgląd w tempo, w jakim zmienność genetyczna pojawia się w postaci zmienności liczby kopii, i doprowadzić do nowego zrozumienia chorób, które obejmują zmienność liczby kopii genów38-40.

Wykrycie wczesnej lub przejściowej amplifikacji chromosomów jest trudne, ponieważ wymaga identyfikacji zmian w pojedynczych cząsteczkach DNA w dużych populacjach komórek. Wariacje liczby kopii chromosomów (CNV) są na ogół wykrywane długo po ich ustaleniu, pozostawiając tylko końcową strukturę CNV jako dowód mechanizmu, który wygenerował zmianę1,2. Wykrycie i odzyskanie pozachromosomalnego kolistego DNA (eccDNA) na wcześniejszych etapach tworzenia CNV może wyjaśnić trwające procesy w rearanżacjach genomu.
Poprzednio, odkrycie de novo eccDNA polegało na mikrografiach elektronowych3, barwieniu chromosomów metafazyGiemsa 4 lub dwuwymiarowej elektroforezie żelowej5. Metody te dostarczają niewiele lub nie dostarczają żadnych informacji na temat sekwencji kolistego DNA. Ukierunkowane techniki, takie jak Southern blot6,7, odwrotny PCR8 lub fluorescencyjna hybrydyzacja in situ 9 dostarczają dowodów tylko na temat określonych elementów eccDNA. Żadna z tych metod nie zapewnia sekwencji wszystkich istniejących typów eccDNA w populacji komórek.
Dywergencja genomowa w puli komórek może być scharakteryzowana przez sekwencjonowanie genomu i/lub układanie tablickafelkowych 10,11. Wykrycie delecji lub amplifikacji za pomocą konwencjonalnych metod oczyszczania DNA zwykle wymaga, aby zmutowany allel reprezentował co najmniej 0,1-1% populacji komórek12,13. Oczekuje się, że acentryczne eccDNA będą jeszcze bardziej przejściowe w hodowli komórkowej ze względu na brak centromerów i potencjalny brak syntezy DNA podczas replikacji. W związku z tym, że większość eccDNA przypuszczalnie występuje w małych ilościach, a ich sekwencje przypominają genom, potrzebne są alternatywne metody ekstrakcji DNA w celu wykrycia eccDNA.
Kilka technik oczyszczania DNA metodą kolistego wykorzystuje różnice strukturalne między chromosomami a DNA kolistym. Na przykład szybkie ultrawirowanie w gradientach chlorku cezu stosuje się do izolowania 350-3000 par zasad (bp) dużych eccDNA z ludzkiej liniikomórkowej raka HeLa 14. Jednak duża prędkość może złamać lub naciąć szkielet superskręconych kolistych struktur DNA, zmieniając prędkość sedymentacji15 i wydajność eccDNA. Dutta i współpracownicy opracowali metodę identyfikacji de novo w skali genomu kolistego DNA z tkanek myszy, a także z kultur komórek kurczaka i komórek ludzkich16,17. Ich metoda polega na ekstrakcji jąder z homogenizowanej tkanki za pomocą ultrawirowania sacharozy, a następnie oczyszczania plazmidu i kilku rund reakcji enzymatycznych oraz ekstrakcji DNA. Ich protokół identyfikuje przede wszystkim eccDNA o długości 200-400 pz, zwane mikroDNA. Dutta i współpracownicy próbowali również oczyścić mikroDNA z Saccharomyces cerevisiae, ale nie byli w stanie zarejestrować mikroDNA z tego gatunku drożdży.
Opracowaliśmy nowatorską metodę wykrywania de novo eccDNA z drożdży o nazwie Circle-Seq. Metoda ta umożliwia badania w skali genomu w poszukiwaniu kolistych cząsteczek DNA wystarczająco dużych, aby przenosić całe geny i tak dużych, jak mitochondrialne DNA (mtDNA) o wielkości 86 kilozasad (kb). Metoda Circle-Seq została opracowana na podstawie dobrze znanej metody oczyszczania plazmidu prokariotycznego18,19, zoptymalizowanej pod kątem komórek drożdży eukariotycznych i połączonej z głębokim sekwencjonowaniem. Stosując podejście Circle-Seq, wykryto 1756 różnych eccDNA, wszystkie większe niż 1 kb, w dziesięciu populacjach S. cerevisiae S288c 20. Wybrano punkt odcięcia wielkości, aby skupić się na eccDNA, które było wystarczająco duże, aby przenosić całe geny. Circle-Seq był bardzo wrażliwy; wykrył pojedyncze eccDNA w tysiącach komórek20. W obecnym badaniu Circle-Seq wykorzystano do wyizolowania i zidentyfikowania 294 eccDNA z trzech biologicznych powtórzeń innego szczepu drożdży S. cerevisiae, CEN.PK. Dane ujawniają, że eccDNA jest powszechnym elementem genetycznym szczepów S. cerevisiae.

<table><tbody><tr><td>Można zastosować pepton</td><td>Bacto BD Difco</td><td>211677</td><td>Produkt alternatywny.</td></tr><tr><td>Brilliant III SYBR Green PCR Master Mix&nbsp;</td><td>Agilent Technologies</td><td>600882</td><td>Do analizy qPCR. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Dekstroza (D-glukoza)</td><td>Carl Roth</td><td>HN06.4</td><td>Można zastosować produkt alternatywny.</td></tr><tr><td>Koraliki zakłócające, 0,5 mm</td><td>Scientific Industries, Inc.</td><td>SI-BG05</td><td>Szklane kulki do rozbijania błon komórek plazmatycznych. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Bromek etydyny</td><td>Carl Roth</td><td>2218.2</td><td>Barwienie żelem agarozowym do wykrywania DNA/RNA.</td></tr><tr><td>Zestaw do miniprzygotowania plazmidu GeneJet</td><td>Thermo Fisher</td><td>K0502</td><td>Oczyszczanie plazmidu z bakterii. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>NotI, Technologie</td><td>FastDigest Life -&nbsp; Thermo Fisher Scientific, USA</td><td>FD0594</td><td>Endonukleaza. Można użyć alternatywnego produktu.&nbsp;</td></tr><tr><td>Zestaw Plasmid Mini AX&nbsp;</td><td>A& A Biotechnology, Poland</td><td>010-50</td><td>Zestaw do oczyszczania plazmidu służący do oczyszczania eccDNA. &nbsp;</td></tr><tr><td>Bezpieczny dla plazmidu zestaw DNazy zależny od ATP</td><td>Epicentre, USA</td><td>E3105K</td><td>zestaw egzonukleazy zależny od ATP. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Jodek propidyny&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich, USA</td><td>81845</td><td>Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>plazmid pUG6</td><td>EUROSCARF, Niemcy</td><td>P30114</td><td>Gen markerowy: loxP-PAgTEF1-kanMX-TAgTEF1-loxP.</td></tr><tr><td>Końcówka genomiczna QIAGEN 100/G&nbsp;</td><td>Qiagen, USA</td><td>13343</td><td>Oczyszczanie genomowego DNA z drożdży. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Protokół REPLI-g Mini Kit&nbsp;</td><td>Qiagen, USA</td><td>150023</td><td>Amplifikacja eccDNA przez polimerazę phi29.</td></tr><tr><td>Można użyć ekstraktu drożdżowego</td><td>BD Difco</td><td>210929</td><td>Produkt alternatywny.</td></tr><tr><td>Zymoliaza 100T (Lyticase, Yeast Lytic Enzyme)</td><td>Nordic BioSite, Szwecja</td><td>Z1004-3</td><td>Można zastosować produkt alternatywny.</td></tr><tr><td>Dostęp do plików sekwencyjnych</td><td>European Nucleotide Archive&nbsp;</td><td></td><td>Zbiór danych EccDNA z Saccharomyces cerevisiae CEN. PK113-7D. Numer dostępu do badania PRJEB9684. 2. numer akcesyjny to ERP010820. Prefiks znacznika locus to BN2032.&nbsp;</td></tr><tr><td>Nazwa</td><td>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td>Komentarze</td></tr><tr><td>Szczepy</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Saccharomyces cerevisiae CEN. PK113-7D</td><td></td><td></td><td>Genotyp MATa MAL2-8c SUC2</td></tr><tr><td>Saccharomyces cerevisiae pula bibliotek delecji drożdży</td><td>EUROSCARF, Niemcy</td><td></td><td>S288c BY4741 pula 4400 żywotnych mutantów delecji pojedynczego genu usuniętych przez moduł KanMX. Genotypy MATa his3&Delta; 1 leu2&Delta; 0 met15 i Delta; 0 ura3 i Delta; 0 genexxx::KanMX.</td></tr><tr><td>Nazwa</td><td>Company</td><td>Numer katalogowy</td><td>Komentarze</td></tr><tr><td>Equipments</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spektrofotometr DNA&nbsp;</td><td>Spektrofotometr NanoDrop 1000, Thermo Fisher</td><td></td><td>Pomiar stężenia DNA. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Mikroskopia fluorescencyjna</td><td>Nikon Optronics Magnafire. Czerwony filtr fluorescencyjny wzbudzenia, 663-738 nm.</td><td></td><td>Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Zrobotyzowany system budowy biblioteki</td><td>Apollo 324, IntegenX Inc.</td><td></td><td>Przygotowanie biblioteki DNA. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Platforma sekwencjonowania</td><td>Platforma Illumina HiSeq 2000, Illumina Inc.</td><td></td><td>Sekwencjonowanie DNA. Można użyć produktu alternatywnego.</td></tr><tr><td>Ultradźwiękowiec</td><td>Covaris LE220, mikrorurka AFA Rurki światłowodowe</td><td></td><td>Można zastosować produkt alternatywny.</td></tr><tr><td><silny>Nazwa</silny><</td><td>silny>Firma</silny></td><td><silny>Numer katalogowy</silny></td><td><silny>Komentarze</silny></td></tr><tr><td><silny>Metody</silny></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2% YPD media&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Wymieszaj 10 g dekstrozy, 10 g ekstraktu drożdżowego, 20 g peptonu Bacto i dodaj H2O do całkowitej objętości 1000 ml i autoklawu.</td></tr><tr><td>Test Circle-Seq na genomowym DNA</td><td></td><td></td><td>Genomowe DNA oczyszczono (Qiagen) z puli biblioteki delecji drożdży (Euroscarf). Stężenie DNA mierzono za pomocą nanokropli i 30 &mikro; g genomowe DNA pipetowano do dwóch mikroprobówek wirówkowych. Jedna mikroprobówka wirówkowa została uzupełniona plazmidem o nanagramaturze 100 nanogramów (pUG6). Próbki DNA oczyszczono za pomocą Circle-Seq, pomijając kroki protokołu 1.1-1.3 i 1.5-1.7. Stężenia eluowanego DNA mierzono za pomocą nanokropli, a cały plon DNA z próbki GD i GD+P traktowano egzonukleazą przez okres 29 godzin. Pobrano 10% frakcję do amplifikacji phi29 i analizy PCR, podczas gdy pozostałe DNA poddano 72-godzinnemu zabiegowi egzonukleazy. Próbki analizowano pod kątem liniowej zawartości DNA metodą PCR, wykorzystując gen ACT1 jako marker chromosomowy. 5% frakcja każdej z próbek poddanych działaniu egzonukleazy amplifikowano przez polimerazę DNA phi29 przez 16 godzin (Qiagen). Obecność DNA w każdej próbce badano poprzez obciążenie równą ilością (7 &mikro; l) w studniach na 0,5 &mikro; g/ml bromku etydyny 0,9% żelu agarozowego po uruchomieniu elektroforezy żelowej.&nbsp;</td></tr><tr><td>Oprogramowanie do mapowania</td><td>Bowtie2 aligner, John Hopkins University</td><td></td><td>Ultraszybkie wyrównanie krótkiego odczytu. Numer referencyjny: 29.</td></tr><tr>Barwienie <td></td><td></td><td>jodkiem propidyny</td><td>Obrazy DNA barwionego jodem propidyny uchwycono za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej przy 100-krotnym powiększeniu (100x/1,30 olej, Nikon) w kanale RFP (czerwony filtr fluorescencyjny wzbudzenia, 663-738 nm) przy identycznym czasie ekspozycji (5 sekund).&nbsp;</td></tr><tr><td>System bioinformatyczny przepływu pracy</td><td>Galaxy, Open source.</td><td></td><td>Bezpłatna platforma internetowa do badań biomedycznych wymagających dużej ilości danych. Bibliografia: 27-28.</td></tr></tbody></table>

oczyszczanie całego genomu pozachromosomalnego kolistego dna z komórek eukariotycznych

Genome-wide Purification of Extrachromosomal Circular DNA from Eukaryotic Cells

Pozachromosomalne koliste DNA (eccDNAs) są powszechnymi elementami genetycznymi u Saccharomyces cerevisiae i są również opisywane u innych eukariontów. ECCDN przyczyniają się do zmienności genetycznej między komórkami somatycznymi w organizmach wielokomórkowych oraz do ewolucji jednokomórkowych eukariontów. Potrzebne są czułe metody wykrywania eccDNA, aby wyjaśnić, w jaki sposób te elementy wpływają na stabilność genomu oraz w jaki sposób czynniki środowiskowe i biologiczne indukują ich powstawanie w komórkach eukariotycznych. Ten film przedstawia czułą metodę oczyszczania eccDNA o nazwie Circle-Seq. Metoda obejmuje oczyszczanie kolumnowe z kolistego DNA, usuwanie pozostałego liniowego chromosomalnego DNA, amplifikację eccDNA w toczonym okręgu, głębokie sekwencjonowanie i mapowanie. Intensywne leczenie egzonukleazą było konieczne w celu uzyskania wystarczającej liniowej degradacji chromosomalnego DNA. Wzmocnienie toczącego się koła krok po φ29 polimeraza wzbogacona o koliste DNA nad liniowym DNA. Walidacja metody Circle-Seq na trzech S. cerevisiae CEN. Populacje farmakokinetyczne składające się z10-10 komórek wykryły setki profili eccDNA o rozmiarach większych niż 1 kilozasada. Powtarzające się odkrycia genów ASP3-1, COS111, CUP1, RSC30, HXT6, HXT7 na kolistym DNA zarówno w S288c, jak i CEN. PK sugeruje, że krążenie DNA jest zachowane między szczepami w tych loci. Podsumowując, metoda Circle-Seq ma szerokie zastosowanie w badaniach przesiewowych w skali genomu pod kątem eccDNA u eukariontów, a także do wykrywania określonych typów eccDNA.

Aby zwalidować metodę Circle-Seq, przesiewowo zbadano trzy populacje S. cerevisiae CEN.PK o liczebności 1 x 1010 komórek, po ich oddzielnej hodowli w pożywce YPD przez dziesięć generacji. Eliminację liniowego DNA chromosomowego potwierdzono brakiem sygnału qPCR dla genu ACT1 , zgodnie z wcześniejszym opisem20 (dane niepokazane). Oczyszczone i wzbogacone eccDNA poddano sekwencjonowaniu, uzyskując do 68 milionów odczytów (odczyty jednostronne o długości 141 nukleotydów), a następnie zmapowano je do genomu referencyjnego CEN.PK113-7D (wersja z 19 czerwca 2012 r.). Odczyty prawdopodobnych eccDNA z trzech próbek nazwanych C1, C2 i C4 przypisano do regionów genomowych zmapowanych przez ciągłe odczyty dłuższe niż 1 kb. Na podstawie 10 00 symulacji Monte Carlo oszacowano istotność każdego regionu zmapowanego przez ciągłe odczyty dłuższe niż 1 kb. W ten sposób 79, 159 i 56 regionów adnotowano jako prawdopodobne sekwencje eccDNA (p &lt; 0.1, Dataset 1). Liczba zarejestrowanych ciągłych odczytów &gt; 1 kb rosła w funkcji głębokości sekwencjonowania, co sugeruje, że przy głębszym sekwencjonowaniu próbek wykryto by jeszcze więcej elementów eccDNA (Figure 2). Zgodnie z oczekiwaniami, metoda Circle-Seq pozwoliła na wyodrębnienie licznych odczytów z wielu znanych kolistych elementów DNA, w tym z plazmidu 2µ, DNA mitochondrialnego, genów rRNA na chromosomie XII oraz trzech wewnętrznych plazmidów kontrolnych pBR32, pUC19 i pUG72, które dodano do próbek bezpośrednio przed oczyszczaniem kolumnowym (Figure 3).
Wideo przedstawia przykład sąsiednich odczytów zmapowanych do locus HXT7_ARS432_HXT6 na chromosomie IV. Wcześniej [HXT6/7circle] został wykryty za pomocą metody Circle-Seq w dziesięciu populacjach S28c (każda zawierająca 1 x 1010 komórek), a kolista struktura DNA została potwierdzona analizą odwrotnej PCR20. [HXT6/7circle] odnotowano również w każdej z trzech populacji CEN.PK (Rysunek 4A). Ponadto większość wspólnych genów eccDNA w próbkach powtórzonych CEN.PK pokrywała się z genami eccDNA z zestawów danych S28c (Rysunek 4B).
Aby przetestować specyficzność protokołu Circle-Seq w zakresie oczyszczania kolistego DNA, przygotowano dwie próbki, z których każda zawierała 30 µg przebadano genomowe DNA. Jedną z próbek uzupełniono o 10 ng plazmidowego DNA, a następnie z obu próbek oczyszczono eccDNA zgodnie z protokołem Circle-Seq. Po rozdziale kolumnowym wydajność DNA wyniosła 1,27% (380 ng) dla próbki bez plazmidu (GD) oraz 1,60% (480 ng) dla próbki z plazmidem (GD+P). Efektywność traktowania egzonukleazą w odniesieniu do zawartości liniowego DNA przetestowano po 29 h oraz 72 h za pomocą reakcji PCR przeciwko ACT1. W żadnych próbkach nie stwierdzono amplifikacji ACT1 (dane nie pokazano). Część każdej próbki traktowanej egzonukleazą poddano dalszej amplifikacji za pomocą ø29 polimerazę oraz produkty reakcji enzymatycznych przeanalizowano za pomocą barwienia jodkiem propidyny (Rysunek 5A-F) oraz elektroforezę w żelu agarozowym (Rysunek 5G). Próbki po traktowaniu egzonukleazą wykazały minimalne barwienie jodkiem propidyny (Rysunek 5A-B). ø29-próbka wzbogacona, zawierająca wyłącznie DNA genomowe, ujawniła struktury przypominające nici (Rycina 5C) podobne do próbki kontrolnej (Rycina 5E). The ø29-wz wzmocnionej próbce z dodatkiem plazmidu zaobserwowano ogniska (Rycina 5D) przypominający kontrolę plazmidową (Rycina 5F). Obrazy wskazały, że polimeraza ø29 wzbogaca frakcję kolistego DNA w stosunku do liniowego DNA. Większość liniowego DNA chromosomalnego została usunięta z próbek po 29-godzinnej inkubacji z egzonukleazą (Rysunek 5A-B, G). Jednakże, aby usunąć całe chromosomalne liniowe DNA, wymagana była intensywna obróbka egzonukleazą przez ponad 100 h z użyciem więcej niż 100 jednostek, ponieważ ø29-próbki po amplifikacji nadal wykazywały obecność w tle struktur przypominających nici po 72-godzinnej inkubacji z egzonukleazą (Rycina 5C-D).
<img alt="Proces hodowli komórek i analizy DNA; schemat z etapami oczyszczania, trawienia i amplifikacji." src="/files/ftp_upload/54239/54239fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 1"> 
Rysunek 1. Schemat metody Circle-Seq. Protokół składa się z 5 etapów: 1) hodowli komórek, 2) oczyszczania i wzbogacania eccDNA za pomocą chromatografii kolumnowej, 3) trawienia pozostałego liniowego DNA chromosomalnego w frakcji eluate, 4) amplifikacji DNA za pomocą polimerazy DNA ø29 oraz 5) sekwencjonowania silnie wzbogaconego eccDNA i mapowania odczytów do S. cerevisiae genom referencyjny <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54239/54239fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Wykres odczytów ciągłych względem odczytów zmapowanych; wizualizacja danych w analizie sekwencjonowania genomowego." src="/files/ftp_upload/54239/54239fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 2"> 
Rysunek 2. Odczyty kontigowe &gt; 1 kb w funkcji głębokości sekwencjonowania. eccDNA z 1 x 1010 liczba komórek wzrasta w funkcji głębokości sekwencjonowania (w milionach zmapowanych odczytów). Przedstawiono: triplikaty biologiczne z haploidalnego szczepu CEN.PK S. cerevisiae populacje (C1, C2, C4) oddzielone przez 1010 podziały komórkowe. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54239/54239fig2large.jpg" target="_blank">Prosimy o kliknięcie tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Wykres procentowego pokrycia odczytami porównujący 2μ, rDNA, mtDNA oraz plazmidy pBR32, pUC19, pUG72." src="/files/ftp_upload/54239/54239fig3.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 3"> 
Rysunek 3. Detekcja znanych kolistych elementów DNA. (A-B) Wykresy rozrzutu pokrycia odczytów (gęstości odczytów) w procentach dla plazmidów w powtórzeniach biologicznych CEN.PK: C1, C2 i C4. (A) Liczba odczytów zmapowanych do endogennych plazmidów drożdżowych wynosiła: 2µ; [rDNAokrąg] (geny rRNA z chromosomu XII) oraz mtDNA (mitochondrialne DNA). (B) Unikalne odczyty zmapowane do plazmidów kontrolnych. Plazmidy kontrolne dodano do próbek przed oczyszczaniem kolumnowym. Stosunki plazmidów na komórkę wynosiły: pBR32 (plusy) 1:1, pUC19 (kółka) 1:50 oraz pUG72 (trójkąty) 1:2 50.
<img alt="Diagram Venna przedstawiający nakładanie się genów/plazmidów w badaniach nad eccDNA; uwidacznia zmienność eksperymentalną." src="/files/ftp_upload/54239/54239fig4.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 4"> 
Rysunek 4. Wspólne elementy eccDNA w szczepach CEN.PK i S28c. (A) Diagram Venna przedstawiający nakładanie się 476 geny na 294 elementach eccDNA w trzech próbkach CEN.PK (C1, C2, C4). Adnotowano 16 wspólnych, nakładających się genów/plazmidów eccDNA (wszystkie nazwy genów znajdują się w Zbiór danych 1). (B) Diagram Venna wszystkich genów zidentyfikowanych w domniemanych ekstrachromosomalnych kołowych cząsteczkach DNA (eccDNA) z trzech próbek CEN.PK (C1, C2, C4), w porównaniu do wszystkich genów zidentyfikowanych w domniemanych eccDNA z 10 próbek S28c: S1-S2, R1-R4, Z1-Z4 (patrz odniesienie20). Przedstawiono 13 powtórzeń biologicznych (S1-S2, R1-R4, Z1-Z4, C1-C3) z genami/plazmidami oraz domniemanymi regionami eccDNA, które nakładały się na co najmniej 2 tła szczepowe oraz na 3 lub więcej układów doświadczalnych. Próbki C: CEN.PK; próbki R i Z: S28c BY4741; próbki S: S28c M3750. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54239/54239fig4large.jpg" target="_blank">Prosimy o kliknięcie tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ilustracji.</a>
<img alt="Przetwarzanie DNA przez egzonukleazę: obrazy mikroskopowe, elektroforeza w żelu, analiza danych dotyczących trawienia DNA." src="/files/ftp_upload/54239/54239fig5.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rysunek 5"> 
Rysunek 5. Wizualizacja próbek DNA po zastosowaniu egzonukleazy i ø29 traktowanie. (A-F) Barwienie DNA jodkiem propidium. Pasek skali, 10 µm. (A, C i E) Próbki z kwasem DNA genomowym (GD); (B i D) próbki z GD oraz plazmidem (GD+P). (A-B) Po 29-godzinnej inkubacji z egzonukleazą (EXO 29 h); (C-D) po 72-godzinnej inkubacji z egzonukleazą, a następnie amplifikacji za pomocą polimerazy ø29 (EXO 72 h + ø29). (E) kontrola genomowego DNA po amplifikacji polimerazą ø29; (F) kontrola plazmidowa (5,5 kb) po 29 amplifikacja polimerazowa; (Gø) elektroforeza w żelu agarozowym. Od lewej: L, markery 1 kb; P, kontrola plazmidowa (5,5 kb) po 29 godz. działania EXO; GD, po 29 godz. działania EXO (próbka tak jak w A); GD+P, po 29 godzinach EXO (próbka jako B); GD i GD+P, po EXO 29 h + ø29; GD i GD+P, po EXO 72 h + ø29 (próbka jak w C-D). Patrz Tabela S1 po dodatkowe szczegóły. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54239/54239fig5large.jpg" target="_blank">Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Tabela mapowania EcoDNA szczegółowo przedstawiająca wyniki analizy genów; prezentuje dane w formacie tabelarycznym." src="/files/ftp_upload/54239/54239dataset1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Zbiór danych 1"> 
Zbiór danych 1. Potencjalne regiony cyrkularyzacji DNA w CEN.PK. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54239/DATASET1-CENPK.xlsx">Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.</a> 
Przedstawiono dane sekwencyjne i analizy dla 348 regionów. Kolumny A-D obejmują mapowanie eccDNA. A (pierwsza kolumna od lewej) to próbka, w której zidentyfikowano domniemane eccDNA; B to chromosom; C-D to współrzędne początkowe i końcowe domniemanych eccDNA. Kolumny E-H określają zawartość eccDNA. E to autonomicznie replikująca się sekwencja (ARS) w regionie; F to kompletny gen w regionie; G to fragment genu zawarty w regionie; H to gen zidentyfikowany za pomocą BLASTN. Kolumny I-O obejmują pokrycie eccDNA i wartości p. I to najdłuższy region z unikalnie adnotowaną sekwencją w bp; J to liczba wszystkich zmapowanych odczytów; K to pokrycie wszystkich zmapowanych odczytów wyrażone jako liczba fragmentów na kb z miliona zmapowanych odczytów (FPKM); L to wartość p dla domniemanych eccDNA w porównaniu do występowania przypadkowego w symulacjach Monte Carlo; M to liczba unikalnie zmapowanych odczytów; N-O to odpowiednio K i L z wykorzystaniem wyłącznie unikalnie zmapowanych odczytów (UFPKM). Parametry mapowania odczytów i symulacji Monte Carlo były zgodne z opisem20.

Ten artykuł przedstawia czułą metodę o nazwie Circle-Seq do oczyszczania pozachromosomalnego kolistego DNA (eccDNA). Metoda obejmuje oczyszczanie kolumny, usuwanie pozostałego liniowego chromosomalnego DNA, amplifikację w okręgu toczonym i sekwencjonowanie wysokoprzepustowe. Circle-Seq ma zastosowanie do badań przesiewowych eukariotycznego eccDNA w skali genomu oraz badania niestabilności genomu i zmienności liczby kopii.

Oczyszczanie całego genomu pozachromosomalnego kolistego DNA z komórek eukariotycznych

Extrachromosomal circular DNAs (eccDNAs) are common genetic elements in Saccharomyces cerevisiae and are reported in other eukaryotes as well. EccDNAs ...

Ogólnogenomowa puryfikacja pozachromosomalnego kolistego DNA z komórek eukariotycznych. Cześć, jestem Rasmus. Przedstawię tutaj cały schemat metody puryfikacji kolistego DNA.W pierwszej części hodowane i zbierane są komórki drożdży. Następnie koliste DNA jest oczyszczane i powielane w trzech etapach. Pierwszym z nich jest rozdział kolumnowy, podczas którego koliste DNA jest oczyszczane i wzbogacane.Następnie, poprzez potraktowanie DNA egzonukleazą w celu strawienia całego pozostałego linearnego DNA, a na koniec poprzez amplifikację kolistego DNA przy użyciu polimerazy phi-29. W piątej części niniejszego protokołu koliste cząsteczki DNA zostaną zsekwencjonowane, a odczyty zmapowane do genomu referencyjnego Saccharomyces cerevisiae. Na końcu tego filmu przedstawimy kilka reprezentatywnych wyników.Omówimy perspektywy przyszłych badań oraz zalety stosowania tej metody. Część pierwsza,y zbieranie komórek. Kultura startowa jest hodowana w temperaturze 30 °C z wytrząsaniem do osiągnięcia maksymalnej gęstości, która wynosi około 200 milionów komórek na mililitr i jest osiągana po 24 do 48 godzinach.Wyhodowaną kulturę przenosi się do probówki Falcon i pelletuje poprzez wirowanie przez trzy minuty. Nadpływ zostaje usunięty. Duży pellet miesza się w wstrząsarce w buforze TE, a następnie ponownie pelletuje przez wirowanie.Część druga, oczyszczanie kolumnowe. Na tym etapie wykorzystujemy komercyjnie dostępny zestaw do oczyszczania kolumnowego, który pozwala uzyskać wysoko oczyszczone plazmidy z bakteryjnego genomowego DNA. Przed zastosowaniem tego zestawu w przypadku drożdży konieczne jest rozbicie ściany komórkowej.Jest to osiągane poprzez ponowne zawieszenie przemytego osadu komórkowego w buforze L-1 z zestawu. Zawiesinę komórkową przenosi się do probówki do mikrowirówki i dodaje szklane kuleczki w ilości stanowiącej jedną trzecią całkowitej objętości. Próbkę mieszano w wstrząsarze typu vortex z maksymalną prędkością przez 10 minut, a kuleczki usuwano poprzez wirowanie z prędkością 2 000 obr./min przez 30 sekund.Nadpływ przenosi się do nowej probówki. W tej metodzie do nadpływu dodaje się silnie rozcieńczone plazmidy w trzech różnych stosunkach. Proponujemy włączenie silnie rozcieńczonego plazmidu do cyklu.Może to służyć jako wewnętrzne przewodniki referencyjne. Można ich użyć do kontroli jakości puryfikacji i amplifikacji DNA, a także do półilościowej oceny zawartości niecyklicznych cząsteczek DNA na komórkę przy użyciu tych plazmidów spike-in. Należy dodawać jedynie silnie rozcieńczone plazmidy, ponieważ w przeciwnym razie wpłyną one na rozdzielczość sekwencjonowania innych cyklicznych cząsteczek DNA.Zawiesinę komórkową zawierającą dodane plazmidy traktuje się roztworem L-2 z zestawu, a następnie postępuje zgodnie z protokołem zestawu. Po nałożeniu próbki na kolumnę białka, lipidy i chromosomalne DNA są usuwane poprzez dwukrotne przemycie kolumny. Pozakomórkowe koliste DNA są silnie wzbogacone w frakcji eluatem.Część trzecia, trawienie liniowego DNA. Na tym etapie wykorzystujemy egzonukleazę do strawienia pozostałego liniowego DNA. Egzonukleaza zależna od ATP specyficznie celuje w liniowe dwuniciowe i jednoniciowe DNA, nie trawiąc DNA kolistego.Specyficzność egzonukleazy względem liniowego DNA została potwierdzona za pomocą elektroforezy żelowej po 29 godzinach inkubacji z DNazą. Wyniki pokazują, że DNA genomowe ulega trawieniu, podczas gdy DNA plazmidowe pozostaje nienaruszone, co wskazuje czerwona strzałka. Drożdże posiadają 16 chromosomów o długości do 1 500 kilobaz.Aby ułatwić trawienie egzonukleazą, stosuje się rzadko tnącą endonukleazę w celu uzyskania zwiększonej liczby dostępnych końców DNA. W przypadku użycia enzymu restrykcyjnego NotI, każdy chromosom jest przecinany do siedmiu razy, zgodnie z oznaczeniem. DNA oczyszczone kolumnowo poddaje się działaniu NotI w temperaturze 37°C w bloku grzewczym przez noc.Po inaktywacji termicznej NotI, przecięte DNA poddaje się działaniu egzonukleaz w temperaturze 37°C zgodnie z protokołem producenta. Po traktowaniu egzonukleazami, enzymy są inaktywowane termicznie w temperaturze 70°C przez 30 minut. Trawienie całego liniowego DNA chromosomowego przy użyciu dodatkowego ATP i egzonukleazy może potrwać kilka dni. Aby upewnić się, że całe liniowe DNA zostało całkowicie strawione, próbki analizuje się metodami PCR lub qPCR, wykorzystując wewnętrzny gen referencyjny, taki jak ACTI.Część czwarta, amplifikacja DNA. Na tym etapie wzbogacamy i amplifikujemy koliste DNA przy użyciu polimerazy phi-29. Reakcja zachodzi w temperaturze 30°C z wykorzystaniem losowych oligonukleotydów heksamerowych oraz phi-29.Polimeraza charakteryzuje się wysoką wiernością oraz aktywnością korekcyjną, co zapewnia nieobciążoną amplifikację DNA. Każda polimeraza może, poprzez replikację z kolistym wzorcem (rolling circle replication), zsyntetyzować do 100 kilobaz DNA. Polimeraza wykazuje również wysoką procesywność, amplifikując DNA do 10⁹ razy.Część piąta, sekwencjonowanie. Zgodnie z protokołem dla platformy wysokoprzepustowego sekwencjonowania nowej generacji, DNA poddano sonikacji do średniej wielkości 300 par zasad i zsekwencjonowano jako jednoniciowe odczyty o długości 141 nukleotydów. Odczyty sekwencji zmapowano do genomu referencyjnego Saccharomyces cerevisiae, korzystając z bezpłatnej bazy danych Galaxy.Sekwencjonowane dane są przesyłane do Galaxy, a odczyty są mapowane przy użyciu narzędzia do wyrównywania krótkich odczytów Bowtie2, które umożliwia mapowanie odczytów częściowych. Część szósta, reprezentatywne wyniki. Po sekwencjonowaniu i mapowaniu do genomu referencyjnego Saccharomyces cerevisiae, odczyty można zwizualizować w przeglądarce genomu w oprogramowaniu Galaxy.DNA o pochodzeniu kolistym można na przykład zliczać jako regiony zawierające spójne odczyty o długości większej niż jeden kilobaza, co jest wskazane na ekranie. Przykładem regionu na chromosomie czwartym, który zawiera spójne odczyty obejmujące więcej niż jeden kilobaza, jest region z genami transporterów heksóz sześć i siedem. Przy zastosowaniu tej metody w populacji komórek drożdży, w tym locus często odnajdywane są zmapowane odczyty, a pokrycie odczytami wyraźnie sugeruje, że koliste DNA utworzyło się pomiędzy paralogicznymi genami transporterów heksóz.Ze względu na wysoką homologię sekwencji między genami transporterów heksoz, przypuszczamy, że nieprawidłowa rekombinacja homologiczna prowadzi do cyrkularyzacji tego DNA. Modelem mutacji DNA kolistego jest sytuacja, w której proces naprawy DNA przebiega w sposób niepełny. Na przykład, jeśli w elemencie repetytywnym wystąpi pęknięcie obu nici, sekwencja homologiczna na tej samej chromatydzie może zostać wykorzystana jako matryca do naprawy DNA poprzez rekombinację homologiczną.Po resekcji, inwazji nici, syntezie DNA i rozdzieleniu wszystkich struktur pośrednich, z genomu może wyłonić się kolista cząsteczka DNA, co prowadzi do delecji DNA w chromosomie. Efekty traktowania DNA egzonukleazami oraz polimerazą phi-29 można zwizualizować przy użyciu barwienia jodkiem propidyny. Kontrole barwienia DNA genomicznego wyglądają jak na obrazie po lewej stronie, natomiast DNA plazmidowe jak na obrazie po prawej stronie.Po 29 godzinach traktowania 400 nanogramami genomowego DNA egzonukleazą, większość DNA ulega strawieniu, co pokazano na lewym obrazie. Wynik ten został potwierdzony za pomocą elektroforezy żelowej, zgodnie z obrazem żelu po prawej stronie. Po 72 godzinach traktowania egzonukleazą, a następnie syntezie DA przez polimerazę phi-29, wciąż można zidentyfikować miliony kopii DNA.Podobnie, po 29 godzinach inkubacji 400 nanogramów DNA genomowego oraz dodatkowych 100 nanogramów DNA plazmidowego z egzonukleazą, większość DNA genomowego uległa trawieniu. Jednak DNA plazmidowe nie zostało strawione, co widać na obrazie żelu. Po poddaniu próbki inkubowanej z egzonukleazą przez 72 godziny działaniu polimerazy phi-29, większość amplifikowanego DNA pojawiła się w formie zabarwionych plazmidów.W pierwszej kolejności przesialiśmy geny pod kątem obecności kolistego DNA i byliśmy naprawdę zaskoczeni, odkrywszy kilkaset różnych typów próbek DNA. Tak, fakt, jak powszechne są koliste DNA w populacji drożdży, był naprawdę zaskakujący i uważamy, że metodę tę można zastosować w wielu rodzajach badań. Oczywistym kierunkiem byłoby przyjrzenie się tkankom ludzkim.Wiemy, że geny mogą ulegać amplifikacji na elementach acyrkularnych, oczywiście w drożdżach, a nawet w komórkach nowotworowych. Myślę, że ogólnie interesujące będzie przyjrzenie się komórkom somatycznym i zbadanie, jaki typ kolistego DNA tam znajdziemy oraz w jaki sposób możemy wpłynąć na ten proces cyrkularyzacji. W starzejących się komórkach mamy kręgi, które gromadzą się wraz z wiekiem, i spodziewamy się, że na kolistym DNA znajdzie się więcej genów.Dodatkowo chcielibyśmy przyjrzeć się molekularnym mechanizmom cyrkularyzacji DNA; oczywistym rozwiązaniem jest zbadanie drożdży, w których dysponujemy mutantami z defektami w zakresie rekombinacji homologicznej oraz niehomologicznej. Badając te mutanty, spodziewamy się, że profil cyrkularyzacji DNA będzie różnił się w zależności od rodzaju mutanta i mamy nadzieję, że dzięki badaniom nad drożdżami będziemy w stanie dowiedzieć się znacznie więcej o cyrkularyzacji DNA. W porównaniu z innymi metodami, metoda ta jest znacznie bardziej czuła. Możliwe będzie wykrycie cyklicznego DNA w około jednej na 10 000 komórek.Z tego, co wiem z badań przeprowadzonych w ramach obszernych prób, allele mutantów muszą zazwyczaj osiągnąć proporcję od 1 do 10% populacji, aby można było je wykryć. Zgadza się, a stosując tę technikę, nie trzeba posiadać żadnej wiedzy uprzedniej o utworzonych kolistych cząsteczkach DNA, w przeciwieństwie do innych technik, w których koliste cząsteczki DNA muszą być w pewnym stopniu związane, aby można było je łatwo wykryć jako amplifikacje za pomocą sekwencjonowania lub barwienia chromosomów.Tak, zatem uważam, że główną zaletą jest czułość i mam nadzieję, że będziemy mogli wykorzystać tę metodę do wielu interesujących zastosowań.

genome-wide-purification-extrachromosomal-circular-dna-from

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Oczyszczanie plazmidowego DNA z E. coli jest podstawową techniką w klonowaniu molekularnym. Oczyszczanie w małej skali (miniprep) z mniej niż 5 ml hodowli bakteryjnej...

Oczyszczanie plazmidowego DNA z kolonii bakteryjnych przy użyciu zestawu Qiagen Miniprep Kit

Opisujemy metodę ekstrakcji genomowego DNA o wysokiej masie cząsteczkowej z biomasy planktonicznej skoncentrowanej na filtrach Sterivex 0.22 μm, a następnie oczyszczania go za pomocą wirowania w gradiencie gęstości chlorku cezu.

Ekstrakcja DNA z filtrów Sterivex 0,22 $\mu$M oraz wirowanie w gradiencie gęstości chlorku cezu

Opisano metodologię izolacji wysokiej jakości genomowego DNA o wysokiej masie cząsteczkowej z mikrobiologicznej społeczności glebowej.

Ekstrakcja wysokocząsteczkowego genomowego DNA z gleb i osadów

Niniejszy protokół stanowi kosztowo efektywną alternatywę dla wydajnego równoległego klarowania i oczyszczania plazmidowego DNA z kultur E. coli. Proces AcroPrep Advance rozpoczyna się od zoptymalizowanej płyty filtracyjnej do klarowania lizatu, a następnie obejmuje oczyszczanie na płycie filtracyjnej do wiązania DNA o wysokiej pojemności wiązania.

Uproszczone oczyszczanie plazmidowego DNA z kultur prokariotycznych

Opisana tutaj jest metoda ekstrakcji, oczyszczania i kontroli jakości genomowego DNA z obligatoryjnego biotroficznego patogenu grzybowego, mączniaka prawdziwego, do użycia w długotrwałym sekwencjonowaniu genomu.

Oczyszczanie genomowego DNA o wysokiej masie cząsteczkowej z mączniaka prawdziwego do sekwencjonowania z długim odczytem

Identyfikacja fizycznych interakcji między genami a elementami regulatorowymi jest trudna, ale została ułatwiona dzięki metodom wychwytywania konformacji chromosomów. Ta modyfikacja protokołu 4C-seq łagodzi stronniczość PCR, minimalizując nadmierną amplifikację matryc PCR i maksymalizując mapowalność odczytów poprzez włączenie etapu trawienia enzymu ograniczającego dodawanie.

Wysokoprzepustowa identyfikacja sekwencji regulatorowych genów przy użyciu sekwencjonowania nowej generacji wychwytywania konformacji chromosomów kołowych (4C-seq)

Hi-C 3.0 to ulepszony protokół Hi-C, który łączy sieciujące formaldehyd i glutaran disuccinimidylu z koktajlem enzymów restrykcyjnych DpnII i DdeI, aby zwiększyć stosunek sygnału do szumu i rozdzielczość wykrywania interakcji chromatyny.

Rejestrowanie konformacji chromosomów w różnych skalach długości

Ten protokół przedstawia metodę izolacji chromatyny specyficzną dla locus, opartą na rekombinacji specyficznej dla miejsca, w celu oczyszczenia interesującego miejsca pojedynczej kopii genu w jego natywnym kontekście chromatyny z pączkujących drożdży, Saccharomyces cerevisiae.

Oczyszczanie chromatyny locus genu z pojedynczą kopią u Saccharomyces cerevisiae

Tutaj prezentujemy prostą technikę oceny środowiskowej oporności na środki przeciwdrobnoustrojowe (AMR) poprzez zwiększenie proporcji niskocząsteczkowego DNA zewnątrzkomórkowego. Wcześniejsze leczenie 20%-30% PEG i 1,2 M NaCl pozwala na wykrycie zarówno genomowych, jak i przenoszonych horyzontalnie genów AMR. Protokół nadaje się do procesu bez zestawów z dodatkową optymalizacją.

Ulepszona ekstrakcja DNA o niskiej masie cząsteczkowej ze ścieków w celu kompleksowej oceny oporności na środki przeciwdrobnoustrojowe

Istotną przeszkodą dla technologii takich jak CRISPR są zdarzenia niezgodne z celem, które mogą zakłócić działanie ważnych genów. "Circularization for In Vitro Reporting of Cleavage Effects by Sequencing" (CIRCLE-seq) jest techniką opracowaną w celu identyfikacji niezamierzonych miejsc rozszczepienia. Metoda ta mapuje aktywność CRISPR-Cas9 w całym genomie z wysoką czułością i bez uprzedzeń.

CIRCLE-Seq do badania edycji genów poza celem

Poznaj metodę Circle-Seq do oczyszczania i wykrywania pozachromosomalnego kolistego DNA w komórkach Saccharomyces cerevisiae. Protokół obejmuje oczyszczanie kolumnowe, trawienie egzonukleazą, amplifikację rolling-circle i sekwencjonowanie nowej generacji.

Oczyszczanie całego genomu pozachromosomalnego kolistego DNA z komórek eukariotycznych

Przeglądaj więcej filmów