Name: Modyfikacja i zastosowanie dmuchawy do liści do pobierania próbek stawonogów w terenie (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 43 s
Description: Poznaj modyfikację dmuchawy do liści do pobierania próbek stawonogów w uprawach ryżu. Ta metoda umożliwia badaczom uzyskanie wiarygodnych szacunków liczebności populacji w terenie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Badania były wspierane finansowo przez Wydział Nauk o Ziemi i Życiu Holenderskiej Organizacji Badań Naukowych (grant 833.13.004), Sci-Tech Landing Projection of Higher Education of Jiangxi Province (KJLD14030) oraz The Cultivation Plan for Young Scientists of Jiangxi Province (Jinggang star 20153BCB23014). Dziękujemy Daomeng Fu, Zhigang Li i Xiaolong Huang za pomoc w produkcji filmu.

1. Modyfikacja dmuchawy do liści do pobierania próbek
<ol>
	<li>Zbierz wszystkie części wymienione na liście materiałów.</li>
	<li>Połącz wszystkie rury z polichlorku winylu (PVC) za pomocą kleju z nieplastyfikowanego polichlorku winylu (U-PVC) (rury 1-2-3-4-5 i 6-7).</li>
	<li>Wywierć trzy otwory, które są równomiernie rozmieszczone wokół otworu ssącego maszyny.</li>
	<li>Podłącz maszynę do końca 1 rury PVC 1-5, wkręcając po jednej w każdy z trzech otworów. Nie używaj kleju do łączenia końca rury 1 z maszyną, ponieważ połączenie powinno być odwracalne, aby wyczyścić wentylator. 
	Uwaga: W przypadku, gdy średnica otworu ssącego maszyny różni się od opisanego tutaj modelu, średnicę końca rury 1 należy wyregulować, aby bezproblemowo pasowała do maszyny.</li>
	<li>Dodaj 2 warstwy taśmy uszczelniającej gwint na końcach rur 5 i 6.</li>
	<li>Umieść kawałek metalowej gazy między wężem a ustnikiem (rury PVC 6 i 7), aby zapobiec zassaniu siatki do pobierania próbek do urządzenia. Użyj metalowej gazy o średnicy oczek od 0,5 mm do 0,5 cm.</li>
	<li>Podłącz wąż do końców rur 5 i 6 za pomocą metalowych obręczy zaciskowych.</li>
</ol>
2. Przygotuj komorę do pobierania próbek
<ol>
	<li>Zdejmij dno z plastikowego wiadra (50 l, średnica dna 40 cm). Ten rozmiar wybiegu obejmuje 2-4 wzgórza ryżowe na przesadzonym polu ryżowym, w zależności od etapu uprawy24.</li>
	<li>Przymocuj nylonową tuleję z siatki o długości 1 m do górnej części wiadra za pomocą gumki. W przypadku tego rękawa należy użyć rozmiaru oczek, który jest wystarczająco mały, aby zapobiec ucieczce najmniejszych docelowych stawonogów. Użyj średnicy mniejszej niż 0,5 mm.</li>
</ol>
3. Zastosowanie w terenie zmodyfikowanej dmuchawy do liści do pobierania próbek
<ol>
	<li>Do obsługi urządzenia w terenie należy używać dwóch osób. Jedna osoba obsługuje dmuchawę odkurzającą, a druga obsługuje obudowę wiadra i siatki do pobierania próbek.</li>
	<li>Uruchom maszynę.</li>
	<li>Włóż siatkę do pobierania próbek do części ustnej dmuchawy i przymocuj ją gumką. W przypadku siatki użyj rozmiaru oczek, który jest wystarczająco mały, aby złapać najmniejsze docelowe stawonogi, ale nie tworzy wyraźnego oporu przepływu powietrza. Użyj lekkiego materiału nylonowego o średnicy oczek od 0,2 do 0,5 mm.</li>
	<li>Szybko umieść obudowę nad roślinami w losowym miejscu na polu i mocno wciśnij dno wiadra w glebę. Upewnij się, że rękaw jest zamknięty, aby zapobiec ucieczce stawonogów z górnej części obudowy.</li>
	<li>Wyjmij wszystkie stawonogi z wnętrza obudowy w sposób spiralny od góry do dołu, aby uzyskać znormalizowany czas pobierania próbek. W przypadku upraw ryżu w fazie wegetatywnej i reprodukcyjnej należy stosować czas pobierania próbek wynoszący odpowiednio 1 i 2 minuty.</li>
	<li>Po zakończeniu pobierania próbki należy zdjąć gumkę recepturkę z siatki do pobierania próbek, szybko zamknąć siatkę i wyjąć ją z części ustnej dmuchawy-odkurzacza i zamknąć węzłem, nie pozostawiając maszyny w ruchu.</li>
	<li>Powtórzyć kroki od 3.2 do 3.5 w losowych miejscach w terenie dla następnych próbek. Liczba powtórzeń zależy od zmienności rozmieszczenia przestrzennego stawonogów w terenie, wymaganej dokładności oszacowania oraz celu badania. Zazwyczaj sześć powtórzeń daje dobre wrażenie o zbiorowisku stawonogów i liczebności gatunków.</li>
</ol>

<ol><li>Dale, D. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDale%2C+D+%22Biology+and+management+of+rice+insects%22">Biology and management of rice insects</a>. Heinrichs, E. A. , Wiley Estern Ltd & New Age International Ltd. London, UK. (1994).</li>
<li>Settle, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Managing+tropical+rice+pests+through+conservation+of+generalist+natural+enemies+and+alternative+prey%5BTitle%5D)+AND+%22Ecology%22%5BJournal%5D)">Managing tropical rice pests through conservation of generalist natural enemies and alternative prey.</a> Ecology. 77 (7), 1975-1988 (1996).</li>
<li>Heong, K. L., Schoenly, K. G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHeong%2C+KL+%22Ecotoxicology%22">Ecotoxicology</a>. Haskell, P. T., McEwen, P. , Springer. US. 381-403 (1998).</li>
<li>Schellhorn, N. A., Bianchi, F., Hsu, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Movement+of+entomophagous+arthropods+in+agricultural+landscapes%3A+links+to+pest+suppression%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Entomol%22%5BJournal%5D)">Movement of entomophagous arthropods in agricultural landscapes: links to pest suppression.</a> Annu Rev Entomol. 59, 559-581 (2014).</li>
<li>Zou, Y., Feng, J., Xue, D., Sang, W., Axmacher, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+terrestrial+arthropod+sampling+methods%5BTitle%5D)+AND+%22J+Resour+Ecol%22%5BJournal%5D)">A comparison of terrestrial arthropod sampling methods.</a> J Resour Ecol. 3 (2), 174-182 (2012).</li>
<li>Saska, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temperature+effects+on+pitfall+catches+of+epigeal+arthropods%3A+a+model+and+method+for+bias+correction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Ecol%22%5BJournal%5D)">Temperature effects on pitfall catches of epigeal arthropods: a model and method for bias correction.</a> J Appl Ecol. 50 (1), 181-189 (2013).</li>
<li>Vander Werf, W., Evans, E. W., Powell, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+and+modelling+the+dispersal+of+Coccinella+septempunctata+%28Coleoptera+%3A+Coccinellidae%29+in+alfalfa+fields%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Entomol%22%5BJournal%5D)">Measuring and modelling the dispersal of Coccinella septempunctata (Coleoptera : Coccinellidae) in alfalfa fields.</a> Eur J Entomol. 97 (4), 487-493 (2000).</li>
<li>Rashid, T., Johnson, D. T., Bernhardt, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sampling+rice+stink+bug+%28Hemiptera+%3A+Pentatomidae%29+in+and+around+rice+fields%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Entomol%22%5BJournal%5D)">Sampling rice stink bug (Hemiptera : Pentatomidae) in and around rice fields.</a> Environ Entomol. 35 (1), 102-111 (2006).</li>
<li>Sarwshri, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aboveground+arthropod+pest+and+predator+diversity+in+irrigated+rice+%28Oryza+sativa+L.%29+production+systems+of+the+Philippines%5BTitle%5D)+AND+%22J+Trop+Agr%22%5BJournal%5D)">Aboveground arthropod pest and predator diversity in irrigated rice (Oryza sativa L.) production systems of the Philippines.</a> J Trop Agr. 45 (1/2), 1-8 (2007).</li>
<li>Wade, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+variation+in+arthropod+sampling+effectiveness%3A+the+case+for+using+the+beat+sheet+method+in+cotton%5BTitle%5D)+AND+%22Entomol+Exp+Appl%22%5BJournal%5D)">Temporal variation in arthropod sampling effectiveness: the case for using the beat sheet method in cotton.</a> Entomol Exp Appl. 120 (2), 139-153 (2006).</li>
<li>Dietrick, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Improved+Backpack+Motor+Fan+for+Suction+Sampling+of+Insect+Populations%5BTitle%5D)+AND+%22J+Econ+Entomol%22%5BJournal%5D)">An Improved Backpack Motor Fan for Suction Sampling of Insect Populations.</a> J Econ Entomol. 54 (2), 394-395 (1961).</li>
<li>Munyaneza, J. E., Crosslin, J. M., Upton, J. E., Buchman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incidence+of+the+beet+leafhopper-transmitted+virescence+agent+phytoplasma+in+local+populations+of+the+beet+leaf+hopper%2C+Circulifer+tenellus%2C+in+Washington+State%5BTitle%5D)+AND+%22J+Insect+Sci%22%5BJournal%5D)">Incidence of the beet leafhopper-transmitted virescence agent phytoplasma in local populations of the beet leaf hopper, Circulifer tenellus, in Washington State.</a> J Insect Sci. 10 (1), 1-10 (2010).</li>
<li>Finke, D. L., Denno, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intra-guild+predation+relaxes+natural+enemy+impacts+on+herbivore+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Ecol+Entomol%22%5BJournal%5D)">Intra-guild predation relaxes natural enemy impacts on herbivore populations.</a> Ecol Entomol. 28 (1), 67-73 (2003).</li>
<li>Koss, A. M., Snyder, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alternative+prey+disrupt+biocontrol+by+a+guild+of+generalist+predators%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Control%22%5BJournal%5D)">Alternative prey disrupt biocontrol by a guild of generalist predators.</a> Biol Control. 32 (2), 243-251 (2005).</li>
<li>Elliott, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((D-vac+sampling+for+predatory+arthropods+in+winter+wheat%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Control%22%5BJournal%5D)">D-vac sampling for predatory arthropods in winter wheat.</a> Biol Control. 38 (3), 325-330 (2006).</li>
<li>Arida, G., Heong, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blower-Vac%3A+a+new+suction+apparatus+for+sampling+rice+arthropods%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Rice+Res.+New%22%5BJournal%5D)">Blower-Vac: a new suction apparatus for sampling rice arthropods.</a> Int. Rice Res. New. 17, 30-31 (1992).</li>
<li>Domingo, I., Schoenly, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+suction+apparatus+for+sampling+invertebrate+communities+in+flooded+rice%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Rice+Res.+New%22%5BJournal%5D)">An improved suction apparatus for sampling invertebrate communities in flooded rice.</a> Int. Rice Res. New. 23 (2), 38-39 (2012).</li>
<li>Moorman, C. E., Plush, C. J., Orr, D. B., Reberg-Horton, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Beneficial+Insect+Borders+Provide+Northern+Bobwhite+Brood+Habitat%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Beneficial Insect Borders Provide Northern Bobwhite Brood Habitat.</a> PLoS ONE. 8 (12), e83815(2013).</li>
<li>Bambaradeniya, C. N. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biodiversity+associated+with+an+irrigated+rice+agro-ecosystem+in+Sri+Lanka%5BTitle%5D)+AND+%22Biodivers+Conserv%22%5BJournal%5D)">Biodiversity associated with an irrigated rice agro-ecosystem in Sri Lanka.</a> Biodivers Conserv. 13 (9), 1715-1753 (2004).</li>
<li>Whitehouse, M. E. A., Wilson, L. J., Fitt, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+arthropod+communities+in+transgenic+Bt+and+conventional+cotton+in+Australia%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Entomol%22%5BJournal%5D)">A comparison of arthropod communities in transgenic Bt and conventional cotton in Australia.</a> Environ Entomol. 34 (5), 1224-1241 (2005).</li>
<li>Schoenly, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fallowing+did+not+disrupt+invertebrate+fauna+in+Philippine+low-pesticide+irrigated+rice+fields%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Ecol%22%5BJournal%5D)">Fallowing did not disrupt invertebrate fauna in Philippine low-pesticide irrigated rice fields.</a> J Appl Ecol. 47 (3), 593-602 (2010).</li>
<li>de Kraker, J., van Huis, A., van Lenteren, J. C., Heong, K. L., Rabbinge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identity+and+relative+importance+of+egg+predators+of+rice+leaffolders+%28Lepidoptera+%3A+Pyralidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Control%22%5BJournal%5D)">Identity and relative importance of egg predators of rice leaffolders (Lepidoptera : Pyralidae).</a> Biol Control. 19 (3), 215-222 (2000).</li>
<li>Hu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+study+on+population+development+patterns+of+Sogatella+furcifera+between+tropical+and+subtropical+areas%5BTitle%5D)+AND+%22J+Asia-Pacif+Entomol%22%5BJournal%5D)">A comparative study on population development patterns of Sogatella furcifera between tropical and subtropical areas.</a> J Asia-Pacif Entomol. 17 (4), 845-851 (2014).</li>
<li>Schoenly, K. G., Domingo, I. T., Barrion, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+optimal+quadrat+sizes+for+invertebrate+communities+in+agrobiodiversity+studies%3A+A+case+study+from+tropical+irrigated+rice%5BTitle%5D)+AND+%22Env+Entomol%22%5BJournal%5D)">Determining optimal quadrat sizes for invertebrate communities in agrobiodiversity studies: A case study from tropical irrigated rice.</a> Env Entomol. 32 (5), 929-938 (2003).</li>
<li>Marcos, T., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMarcos%2C+T+%22Exploiting+Biodiversity+for+Sustainable+Pest+Management%22">Exploiting Biodiversity for Sustainable Pest Management</a>. Mew, T. W., Borromeo, E., Hardy, B. , 23-24 (2001).</li>
<li>Kraker, dJ., Huis, vA., Heong, K. L., Lenteren, vJ. C., Rabbinge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Population+dynamics+of+rice+leaffolders+%28Lepidoptera%3A+Pyralidae%29+and+their+natural+enemies+in+irrigated+rice+in+the+Philippines%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+Entomol+Res%22%5BJournal%5D)">Population dynamics of rice leaffolders (Lepidoptera: Pyralidae) and their natural enemies in irrigated rice in the Philippines.</a> Bull Entomol Res. 89 (5), 411-421 (1999).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Pobieranie próbek ssących jest jedną z wielu możliwych metod pobierania próbek populacji stawonogów w uprawach. W przypadku badań naukowych w systemach ryżowych pobieranie próbek z ssania jest odpowiednią opcją, ponieważ metoda zapewnia bezwzględne oszacowanie zagęszczenia stawonogów, jest nieniszcząca i – w przeciwieństwie do zliczania wizualnego – umożliwia pobieranie i przechowywanie próbek do późniejszego przetwarzania. W porównaniu z dostępnym na rynku D-vac, dmuchawa jest mniejsza, lżejsza i łatwiejsza w obsłudze na (zalanych) polach ryżowych, a także łatwiejsza do połączenia z obudową. Na przykład dmuchawa próżniowa waży około 6 kg, podczas gdy plecakowy model D-vac, przedstawiany jako międzynarodowy standard pobierania próbek owadów, ma wagę 12 kg11. Co ważniejsze, wydajność pobierania próbek przez dmuchawę jest wyższa niż w przypadku D-vac16,17, podczas gdy koszt dmuchawy jest niższy. Modyfikacja dmuchawy do liści w próbnik ssący nie wymaga specjalnych umiejętności ani sprzętu i trwa mniej niż godzinę po zebraniu wszystkich dodatkowych części. Opisany tutaj dmuchawa-odkurzacz jest łatwiejszy w budowie i obsłudze niż wersje opisane wcześniej w literaturze16,17, a wymagane części (Tabela 1) są standardowymi materiałami konstrukcyjnymi, które są powszechnie dostępne. To sprawia, że dmuchawa próżniowa jest również dostępna dla naukowców z niewielkimi budżetami w krajach rozwijających się.
Moc i pojemność skokowa silnika decyduje o sile ssania dmuchawy-odkurzacza. W tym przypadku polecamy maszynę o mocy od 0,7 do 1,2 kW i pojemności skokowej od 25 do 35 cm3, która jest wystarczająca do pobierania próbek populacji stawonogów żyjących w roślinach w ryżu. Długość elastycznego węża z tworzywa sztucznego i średnica części ssącej (rura 7) mają kluczowe znaczenie dla dobrej wydajności pobierania próbek. Zbyt długi wąż zmniejszy moc ssania, podczas gdy zbyt krótki wąż będzie niewygodny w użyciu podczas pobierania próbek. Podobnie, część ustnika o zbyt dużej średnicy zmniejszy moc ssania, podczas gdy zbyt mała średnica zmniejszy wydajność próbkowania ze względu na małą powierzchnię. Wydajność pobierania próbek zależy w decydującym stopniu od czasu trwania pobierania próbek. Jeżeli pobieranie próbek odbywa się przez cały sezon wegetacyjny, może być konieczne dostosowanie czasu pobierania próbek do wielkości rośliny, struktury i gęstości sadzenia, aby utrzymać podobny poziom wydajności. Skuteczność pobierania próbek powinna być sprawdzana poprzez staranne oględziny zamkniętego obszaru po pobraniu próbek. Jeżeli stawonogi są nadal obecne, czas pobierania próbek musi zostać wydłużony. Zalecany czas pobierania próbek dla upraw ryżu w fazie wegetatywnej wynosi 1 minutę, a w fazie rozrodu i dojrzewania 2 minuty.
Pobieranie próbek z ssania za pomocą dmuchawy próżniowej można przeprowadzać na zalanych polach, podczas gdy alternatywne metody, takie jak pobieranie próbek z dołu i uderzenia, nie są możliwe w przypadku wody stojącej. Dmuchawa próżniowa może być również używana do pobierania próbek społeczności stawonogów na powierzchni wody zalanych pól ryżowych (np. drapieżnych pluskwiaków wodnych), ponieważ maszyna jest w stanie zassać trochę wody. Nie zaleca się jednak pobierania próbek stawonogów wodnych, ponieważ silnik może przestać działać, gdy część gębowa zostanie głęboko włożona do wody, a przepływ powietrza zostanie zablokowany. Oprócz ryżu, dmuchawa-odkurzacz może być również stosowany w innych uprawach i siedliskach nieuprawnych, o ile wysokość i struktura roślinności pozwala na prawidłowe umieszczenie obudowy25.
Nasza metoda pobierania próbek ssania blower-vac jest nieniszcząca. Przetrwały prawie wszystkie stawonogi zebrane w sieci do pobierania próbek, w tym te miękkie ciała, takie jak komary i ważki. Zastosowanie tej metody ma jednak pewne ograniczenia i wady. Dmuchawa-odkurzacz musi być obsługiwana przez dwie osoby. Noszenie dmuchawy na polu spowoduje pewne zakłócenia, a zatem ta metoda może zaniżyć gatunki wrażliwe na zakłócenia, takie jak koniki polne. Szybkie i nagłe umieszczenie obudowy w stosunkowo niezakłóconym obszarze w kierunku ruchu do przodu może ograniczyć to potencjalne odchylenie. Głośny hałas dmuchawy może również powodować zakłócenia, a pobieranie próbek w nocy w obszarach mieszkalnych nie jest zalecane. Metoda ta nie nadaje się do pobierania próbek wysoce ruchliwych owadów latających, takich jak drapieżne Odonata lub większe parazytoidy błonkoskrzydłe. Podobnie jak w przypadku każdej metody pobierania próbek, połączenie dmuchawy próżniowej z innymi metodami, takimi jak pobieranie próbek z sieci zamiatającej lub destrukcyjne zbieranie roślin, może zapewnić bardziej kompletną i zrównoważoną ocenę populacji stawonogów26.

Wielokrotna ocena obfitości i różnorodności stawonogów fitofagów i entomofagów w uprawach jest potrzebna do badań ekologicznych dynamiki populacji i interakcji między gatunkami, w tym do badania kontroli biologicznej. Ryż jest głównym podstawowym pożywieniem, o wysokim potencjale biokontroli przez stawonogi entomofagiczne1,2, ale który może zostać zakłócony przez insektycydy3. Różnorodność stawonogów w uprawach ryżu może być duża, a gatunki stawonogów zajmują różne warstwy upraw (np. ziemia, łodyga, baldachim, kwiaty), różnią się sposobem poruszania się (np. chodzenie, skakanie, latanie) i strategią żerowania (np. osiadłe owady ssące, polowanie na drapieżniki i zapylacze odwiedzające kwiaty)4.
Istnieje szeroki zakres technik pobierania próbek stawonogów, z których każda ma mocne i słabe strony. Na przykład pułapki mogą być używane do pobierania próbek stawonogów żyjących na ziemi, ale zapewniają zależne od aktywności szacunki względnej populacji5,6. Siatki do zamiatania mogą być używane do pobierania próbek szybko latających owadów w koronach drzew7-9, ale dają względne szacunki liczebności stawonogów. Metoda beat sheet może być stosowana do pobierania próbek społeczności stawonogów żyjących w roślinach i zapewnia bezwzględne oszacowanie liczebności stawonogów, ale nie może być skutecznie stosowana na zalanych polach uprawnych, takich jak pola ryżowe10.
Pobieranie próbek ssania, gdy jest przeprowadzane w połączeniu z pomieszczeniem pokrywającym znormalizowany obszar pola, dostarcza bezwzględnych szacunków gęstości stawonogów żyjących w roślinach. Ta metoda może być również stosowana w przypadku zalanego ryżu. Próbki mogą być przechowywane w celu późniejszego przetworzenia i identyfikacji. Odkurzacz Dietrick (D-vac)11 jest pierwszym komercyjnie opracowanym próbnikiem ssącym. Chociaż D-vacs są nadal szeroko stosowane12-14, są stosunkowo drogie, mają ograniczoną siłę ssania15 i są stosunkowo ciężkie, co sprawia, że są trudne w obsłudze na zalanych polach ryżowych16. Arida i Heong 16 opracowali próbnik ssący wykorzystujący napędzaną benzyną dmuchawę do liści, a prototyp ten został następnie udoskonalony przez Domingo i Schoenly 17. Zaletą próbnika ssącego blower-vac w porównaniu z D-vac jest to, że jest znacznie tańszy i łatwiejszy w obsłudze.
Chociaż metoda pobierania próbek z odsysaniem dmuchawy była używana w wielu badaniach ekologicznych18-23, instrukcje dotyczące jej modyfikacji i zastosowania nie zostały jasno opisane. Poniżej przedstawiamy szczegółowy opis modyfikacji i zastosowania spalinowej dmuchawy do liści do pobierania próbek populacji stawonogów na zalanych polach ryżowych. Modyfikacja jest inspirowana modelami Arida i Heong 16 oraz Domingo i Schoenly 17, ale projekt został jeszcze bardziej uproszczony w porównaniu z tymi oryginalnymi publikacjami, co ułatwia budowę i użytkowanie.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Maszyna</td></tr><tr><td>Dmuchawa do liści</td><td>Użyliśmy Oleo-Mac BV300, Wyprodukowano we Włoszech</td><td>Moc: 1,0 kW, Wydajność: 30,5 cc, Maksymalna objętość powietrza: 720 m&sup3;/h, Maksymalna prędkość powietrza: 70 m/s, Waga: 4,5 kg, Średnica otworu ssącego: 113&nbsp; mm</td><td>Dostępnych jest wiele różnych marek i modeli. Aby uzyskać porównywalne osiągi, specyfikacje dotyczące mocy i prędkości powietrza powinny być podobne do przedstawionych tutaj.</td></tr><tr><td colspan="4">Dodatkowe części do modyfikacji</td></tr><tr><td>PVC pipe 1</td><td></td><td>Zewnętrzna &oslash; końca podłączonego do maszyny: 112 mm, Wewnętrzna &oslash; końca podłączonego do rury PVC 2: 110 mm</td><td>To jest osłona rury PVC &oslash; 110 mm</td></tr><tr><td>Rura PVC 2</td><td></td><td>Zewnętrzna &oslash;: 110 mm, Długość: 10 cm</td><td>Normalna zewnętrzna &oslash; 110 mm rura PVC; do łączenia rur PVC 1 i 3</td></tr><tr><td>Rura PVC 3</td><td></td><td>Wewnętrzna i ukośna dużego końca: 110 mm, Wewnętrzna i ukośna małego końca: 50 mm</td><td>PVC &oslash; 110 mm do &oslash; 50&nbsp; mm reduktor rury spustowej</td></tr><tr><td>Rura PVC 4</td><td></td><td>Zewnętrzna &oslash;: 50 mm, Długość: 5&nbsp; cm</td><td>Normalny &oslash; 50 mm Rura PVC; do łączenia Rura PVC 3 i 5</td></tr><tr><td>Rura PVC 5</td><td></td><td>Wewnętrzna &oslash;: 50 mm i 32&nbsp; mm, Zewnętrzne i ukośnik; z małej części: 38 mm</td><td>PVC &oslash; 50 mm do &oslash; 32 mm reduktor rury spustowej</td></tr><tr><td>Wąż</td><td></td><td>zewnętrzny &oslash;: 40 mm</td><td>Wzmocniony drutem, elastyczny wąż z tworzywa sztucznego&nbsp;</td></tr><tr><td>Metalowa gaza</td><td></td><td>Siatka &oslash;: 1 mm, &oslash;: 60 mm</td><td>Zapobiec zasysaniu siatki do pobierania próbek do maszyny</td></tr><tr><td>Rura PVC 6</td><td></td><td>Zewnętrzna &oslash; małego końca: 38&nbsp; mm, Wewnętrzny i ukośnik; dużego końca: 63&nbsp; mm</td><td>PVC &oslash; 32 mm do &oslash; 63 mm reduktor</td></tr><tr><td>Rura PVC 7</td><td></td><td>Zewnętrzna &oslash;: 63 mm, Długość: 25 cm</td><td>Normalna zewnętrzna &oslash; 63&nbsp; mm Rura PVC</td></tr><tr><td>Klej</td><td></td><td></td><td>U-PVC Klej U-PVC; do łączenia części PVC</td></tr><tr><td>Metalowe obręcze zaciskowe (2)</td><td>Elastyczny między &oslash; 35 mm - 51 mm</td><td>Do łączenia węża z rurami</td><td></td>PVC</tr><tr><td>Taśma uszczelniająca gwint</td><td>Szerokość: 18mm</td><td>Uszczelnij połączenia</td><td></td>wąż-PVC</tr><tr><td>(3)</td><td></td><td>Długość: 25&nbsp; mm</td><td>Do połączenia rury PVC 1 z otworem ssącym maszyny</td></tr><tr><td colspan="4">Siatka do pobierania próbek i obudowa</td></tr><tr><td>Siatka do pobierania próbek</td><td>Rozmiar oczek &oslash;: 0,3 mm, Szerokość otworu: 10&nbsp; cm, Wysokość: 30 cm</td><td>Siatka do pobierania próbek ma stożkowaty kształt.</td><td></td></tr><tr><td>Dno wiadra</td><td></td><td>&oslash;: 40 cm, Pojemność: 50 L</td><td>Wytnij spód</td></tr><tr><td>Nylonowy rękaw</td><td></td><td>Rozmiar oczek &oslash;: 0,3 mm, Długość: 1 m</td><td>Aby przykryć wiadro jako obudowę</td></tr></tbody></table>

modyfikacja i zastosowanie dmuchawy do liści do pobierania próbek stawonogów w terenie

Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods

Pola ryżowe są domem dla dużej różnorodności stawonogów, ale badanie dynamiki ich populacji i interakcji jest wyzwaniem. W tym miejscu opisujemy modyfikację i zastosowanie dmuchawy do liści do pobierania próbek ssania populacji stawonogów w ryżu. W połączeniu z obudową, zastosowanie tego urządzenia do pobierania próbek zapewnia bezwzględne oszacowanie populacji stawonogów jako liczby na znormalizowany obszar pobierania próbek. Wydajność pobierania próbek zależy w decydującym stopniu od czasu trwania pobierania próbek. W przypadku dojrzałej uprawy ryżu dwuminutowe pobieranie próbek w pomieszczeniu o powierzchni 0,13m2 daje ponad 90% populacji stawonogów. Urządzenie umożliwia również pobieranie próbek stawonogów żyjących na powierzchni wody lub glebie na polach ryżowych, ale nie nadaje się do pobierania próbek szybko latających owadów, takich jak drapieżne Odonata lub większe parazytoidy błonkoskrzydłe. Zmodyfikowany dmuchawę próżniową jest prosty w budowie, tańszy i łatwiejszy w obsłudze niż tradycyjne urządzenia do pobierania próbek ssące, takie jak D-vac. Niski koszt sprawia, że zmodyfikowany odkurzacz dmuchawy jest również dostępny dla naukowców z krajów rozwijających się.

Łącznie 295 stawonogów zebrano w 8 trzechminutowych próbkach przy użyciu odkurzacza dmuchającego z uprawy ryżu w fazie dojrzewania w prowincji Jiangxi w Chinach we wrześniu 2015 roku. Aby określić zależność między względną wydajnością (proporcją stawonogów zebranych w próbce) a czasem trwania próbkowania, każdą próbkę podzielono na sześć podpróbek po 30 sekund każda. Średnia liczba osobników na próbkę wyniosła 36,9 ± 4,1 (średnia ± SEM). Znaleziono łącznie osiem rzędów stawonogów, z których dominującymi były Hemiptera (28,8%), Araneae (27,5%) oraz Diptera (17,6%) (Rysunek 1). Względna wydajność, wyrażona jako procent liczby zebranych stawonogów po trzech minutach, wynosiła odpowiednio 52,9% ± 5,1, 92,4% ± 1,9 oraz 97,3% ± 0,9 po 30 sekundach, 2 minutach i 2,5 minutach (Rysunek 2).
<img alt="Wykres słupkowy różnorodności stawonogów; liczba osobników na próbkę w podziale na rzędy; wyniki badania ekologicznego." src="/files/ftp_upload/54655/54655fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1. Skład gatunkowy (na poziomie rzędu) próbek stawonogów z przedmieść miasta Nanchang w prowincji Jiangxi w Chinach. Pobrano osiem próbek za pomocą odkurzacza entomologicznego (blower-vac), poświęcając po trzy minuty na każdą. Słupki błędów reprezentują błąd standardowy średniej. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54655/54655fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<img alt="Wykres skumulowanej wydajności w funkcji czasu; analiza danych w badaniu kinetyki reakcji chemicznych." src="/files/ftp_upload/54655/54655fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2. Skumulowana wydajność względna w funkcji całkowitego czasu próbkowania na podstawie podpróbek trwających po 30 sekund każda. Całkowita liczba artropod zebranych w czasie próbkowania wynoszącym trzy minuty została przyjęta jako 100%. Podczas inspekcji wizualnej po ostatniej próbce pobranej za pomocą odkurzacza dmuchającego nie znaleziono żadnych artropod. Słupki błędów reprezentują błędy standardowe średniej z ośmiu trzyminuotowych próbek. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54655/54655fig2large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.</a>

Ocena obfitości stawonogów w uprawach jest kluczowa dla badania dynamiki populacji i interakcji między gatunkami. Tutaj opisujemy modyfikację i zastosowanie dmuchawy do liści do odkurzania do pobierania próbek stawonogów w ryżu.

Modyfikacja i zastosowanie dmuchawy do liści do pobierania próbek stawonogów w terenie

Rice fields host a large diversity of arthropods, but investigating their population dynamics and interactions is challenging. Here we describe the ...

Ocena liczebności stawonogów w uprawach jest kluczowa dla badania dynamiki populacji gatunków oraz interakcji międzygatunkowych. Jednak uzyskanie wiarygodnych szacunków populacyjnych, które odzwierciedlają rzeczywistą liczebność stawonogów w polu, jest trudne. W niniejszym materiale opisujemy modyfikację i zastosowanie dmuchawy z funkcją odkurzacza do pobierania próbek stawonogów z ryżu metodą ssania.W pierwszej części tego filmu wyjaśnimy krok po kroku, jak zmodyfikować dmuchawę do liści z funkcją odkurzacza w celu pobierania próbek metodą ssącą. W drugiej części omówimy, jak używać tego urządzenia do pobierania próbek w terenie. W trzeciej części zaprezentujemy wyniki pobierania próbek.W pierwszej kolejności należy zgromadzić wszystkie części niezbędne do modyfikacji. W tym filmie wykorzystano dostępną w handlu dmuchawę z funkcją odkurzania liści Oleo-Mac BV300. Rura PVC o średnicy 110mm zostanie podłączona do urządzenia.Rura PVC numer dwa to standardowa rura o średnicy 110mm i zostanie użyta do połączenia rury PVC numer jeden z rurą PVC numer trzy, która zredukuje średnicę rury ze 110mm do 50mm. Rura PVC numer cztery to standardowa rura o średnicy 50mm i zostanie użyta do połączenia rur PVC numer trzy i pięć. Rura PVC numer pięć dodatkowo zredukuje średnicę rury do 32mm.Rura PVC sześć zwiększy średnicę części wlotowej z 32mm do 63mm. Rura PVC siedem to standardowa rura o średnicy 63mm, która utworzy wlot ssący urządzenia. Końcówka tej rury zostanie połączona z wężem.Wąż powinien być dopasowany do średnicy rur pięć i sześć i mieć około jednego metra długości. Musi być wzmocniony metalem, ponieważ musi wytrzymać znaczną siłę ssania odkurzacza dmuchającego. Do przymocowania węża do rury pięć zostanie użyta metalowa opaska zaciskowa jeden.Do przymocowania węża do części ustnej zostanie użyta druga metalowa opaska zaciskowa. Gaza metalowa służy do zapobiegania zasysaniu materiału do urządzenia. Połączenie rurek PVC z wężem zostanie uszczelnione taśmą uszczelniającą do gwintów.Do połączenia rur PVC należy użyć kleju do UPVC. Na koniec wymagane są trzy śruby, aby przytwierdzić rury do urządzenia. Należy pamiętać, że w zależności od rodzaju używanej maszyny może być wymagany inny rozmiar rury PVC.Pozostałe rurki mogą wymagać odpowiedniej zmiany. Kluczowe jest tutaj to, aby średnica zewnętrzna otwartego końca rurki pierwszej idealnie pasowała do średnicy wewnętrznej wlotu ssawki urządzenia, co zapewni optymalną wydajność. Ponadto średnica rurki siódmej nie powinna być ani zbyt duża, ani zbyt mała.Zbyt duża rura zmniejszy siłę ssania, natomiast zbyt mała rura obniży wydajność próbkowania ze względu na mniejszą powierzchnię poboru. Po zgromadzeniu wszystkich części możemy przystąpić do montażu próbownika typu blower-vac.Przygotuj rury, klej do UPVC oraz taśmę uszczelniającą. Oczyść wszystkie powierzchnie, które będą klejone. Połącz rurę pierwszą z rurą drugą, nakładając cienką warstwę kleju na wewnętrzną część rury pierwszej oraz grubą warstwę kleju na zewnętrzną część rury drugiej.prelegent robi sześciosekundową pauzę*Następnie, bezpośrednio po dodaniu kleju, włóż rurkę 2 do rurki 1 i usuń nadmiar kleju. Następnie połącz rurkę 2 z rurką 3, dodając klej w podobny sposób i wkładając rurkę 2 do rurki 3. prelegent robi 10-sekundową pauzę*Powtórz te kroki, aby połączyć rurkę 3 z rurką 4, rurkę 4 z rurką 5 oraz rurkę 6 z rurką 7, a następnie pozostaw klej do wyschnięcia.Wynik powinien wyglądać w ten sposób. Teraz można podłączyć rurę od pierwszej do piątej do dmuchawy-odkurzacza do liści. Włóż otwarty koniec pierwszej rury do wlotu dmuchawy-odkurzacza do liści.Upewnij się, że rurka nie dotyka wentylatora. Wywierć trzy równomiernie rozmieszczone otwory przez obudowę urządzenia i rurkę, w odległości około pięciu milimetrów od krawędzi połączenia, a następnie przymocuj rurkę do urządzenia za pomocą trzech śrub.Nie należy używać kleju do łączenia rury PVC z urządzeniem, ponieważ musi istnieć możliwość jej otwarcia w celu wyczyszczenia wentylatora. Teraz można podłączyć wąż. Najpierw nałóż taśmę uszczelniającą na otwarte końce rur pięć i sześć, aby zapewnić szczelne połączenie między rurami a wężem.Następnie podłącz wąż do końca rury pięć, używając metalnej opaski zaciskowej. Przykryj koniec rury sześć kawałkiem metalowej gazy i podłącz wąż do końca rury sześć, utrzymując gazę na miejscu. Metalowa gaza w otworze ssawnym zapobiega przedostawaniu się zanieczyszczeń do urządzenia.Próbnik typu blower-vac jest teraz gotowy do użycia. Przed jego uruchomieniem należy jednak najpierw sprawdzić, czy wszystkie połączenia są szczelne. Drugim krokiem jest przygotowanie obudowy do pobierania próbek.Weź wiadro o pojemności 50 litrów i średnicy dna 40 cm i usuń jego dno. Powierzchnia dna będzie wynosić w przybliżeniu jedną ósmą metra kwadratowego. Do górnej krawędzi wiadra przymocuj gumką recepturką nylonowy rękaw z siatki o długości około jednego metra.Po złożeniu próbnik typu blower-vac może być wykorzystany do pobierania próbek stawonogów w terenie. Po dotarciu na obszar badawczy można uruchomić urządzenie. Podczas pracy maszyny należy włożyć siatkę do pobierania próbek do otworu wlotowego i zabezpieczyć ją gumką recepturką.prelegent robi pięciosekundową przerwę*Gdy urządzenie jest już gotowe do użycia, druga osoba może gwałtownie nałożyć obudowę na rośliny w miejscu pobierania próbek. Należy upewnić się, że rękaw jest zamknięty, aby zapobiec ucieczce stawonogów górą obudowy. Dno wiadra należy mocno wcisnąć w glebę, tak aby żadne stawonogi nie mogły wydostać się dołem obudowy.Usuń wszystkie stawonogi z wnętrza obudowy, poruszając się spiralnie od góry do dołu, aby zachować standaryzowany czas próbkowania. Czas próbkowania należy dostosować do wielkości, struktury i gęstości nasadzeń roślin, aby utrzymać podobny poziom efektywności. Efektywność próbkowania należy sprawdzić poprzez dokładną oficjalną inspekcję obszaru objętego obudową po zakończeniu pobierania próbek.prelegent robi czterosekundową przerwę*Po pobraniu próbki należy zdjąć gumkę z sieci pobieracza, szybko ją zamknąć i wyjąć z otworu wlotowego odkurzacza, utrzymując urządzenie w stanie pracy, aby zapobiec ucieczce stawonogów. Sieć pobieracza można zamknąć za pomocą węzła lub gumki. prelegent robi 10-sekundową przerwę*Po bezpiecznym zabezpieczeniu próbki można pobrać kolejną.Pobrano osiem próbek z pola ryżu w fazie dojrzewania, przy czasie pobierania wynoszącym trzy minuty. Podczas oficjalnej inspekcji po każdym pobraniu próbki wewnątrz pułapki nie stwierdzono obecności stawonogów. W sumie zebrano 298 stawonogów należących do ośmiu rzędów.Średnia liczba osobników na próbkę wynosiła 37. Trzema najbardziej dominującymi rzędami były Hemiptera, Araneae oraz Diptera. W każdej próbce nasz trzy-minutowy czas poboru podzielono na sześć podprób po 30 sekund każda.Pierwsze 30 sekund pozwoliło na odłowienie ponad połowy całkowitej liczby osobników. Po dwóch minutach próbkowania względna wydajność, wyrażona jako procent liczby osobników zebranych po trzech minutach, wyniosła 92,4%. Po dwóch i pół minutach względna wydajność wyniosła 97,3%. Podsumowując, opisana tutaj modyfikacja dmuchawy próżniowej (blower-vac) jest łatwa do wykonania. Jest ona łatwa w użyciu w terenie, a nasze wyniki pokazują, że próbnik blower-vac jest wydajny.Pozwala nam to na uzyskanie wiarygodnych szacunków liczebności populacji, które odzwierciedlają rzeczywistą obfitość stawonogów na polach ryżowych. Dziękujemy za oglądanie i powodzenia w budowie własnego próbnika typu blower-vac.

modification-application-leaf-blower-vac-for-field-sampling

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

Przedstawiono metodę szybkiego przesiewania substancji lotnych roślin żywicielskich poprzez pomiar odpowiedzi elektrofizjologicznej czułków dorosłych osobników omacnicy brzoskwiniowej (Amyelois transitella) na pojedyncze składniki oraz mieszaniny za pomocą analizy elektroantenograficznej.

Bioassay elektroantenograficzny jako narzędzie przesiewowe dla lotnych substancji rośliny żywicielskiej

Udostępniamy technikę zachowania nienaruszonego łyka drzewnego i przygotowania go do obserwacji.  Tworzymy aparat zwany kanapką łyka, który pozwala na wprowadzenie i obserwację stawonogów, drobnoustrojów i innych organizmów zasiedlających tkanki łyka.

Technika badania zbiorowisk stawonogów i mikroorganizmów w tkankach drzew

Lizymetria terenowa i pobieranie próbek wody porowej pozwalają badaczom ocenić los substancji chemicznych stosowanych w glebach i ustalonej roślinności. Celem tego protokołu jest zademonstrowanie, w jaki sposób zainstalować wymagane oprzyrządowanie i pobrać próbki do analizy chemicznej podczas zintegrowanych eksperymentów z lizymetrią polową i pobieraniem próbek wody porowej.

Zintegrowana lizymetria polowa i pobieranie próbek wody porowej w celu oceny mobilności chemicznej w glebach i zastanej roślinności

Białka są często używane do oznaczania stawonogów do badań nad rozprzestrzenianiem się. Przedstawiono metody podawania wewnętrznych i zewnętrznych znaczników białkowych na stawonogach. Przedstawiono również techniki wykrywania znaczników białkowych, zarówno za pomocą pośrednich lub kanapkowych testów immunoenzymatycznych (ELISA).

Podawanie i wykrywanie śladów białkowych na stawonogach w celu badań nad dyspersją

Wprowadzamy VacuSIP, prostą, nieinwazyjną i niezawodną metodę czystego i dokładnego punktowego pobierania próbek wody. System został opracowany i oceniony pod kątem jednoczesnego zbierania wody wdychanej i wydychanej przez dozowniki zawiesiny bentosowej in situ, w celu czystego pomiaru usuwania i wydalania cząstek stałych i rozpuszczonych związków.

VacuSIP, ulepszona metoda InEx do pomiaru in situ cząstek stałych i rozpuszczonych związków przetwarzanych przez aktywne podajniki zawiesiny

Eksperymenty z pozostałościami pestycydów w systemach trawiastych są integralnymi składnikami oceny ryzyka dla ludzi. Eksperymentalne podejścia do pomiaru pozostałości zbywalnych powinny być dostosowane do interakcji człowieka będącej przedmiotem zainteresowania oraz dynamiki systemu traw darniowych. Przedstawiono trzy protokoły dotyczące pozostałości pestycydów i omówiono ich przydatność w trzech systemach traw darniowych.

Protokoły ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej

Określanie różnorodności grzybów w środowisku jest metodą wykorzystywaną w badaniach nad zdrowiem zawodowym do identyfikacji zagrożeń dla zdrowia. Protokół ten opisuje ekstrakcję DNA z próbek powietrza zawodowego w celu amplifikacji i sekwencjonowania regionów ITS grzybów. Takie podejście wykrywa wiele gatunków grzybów, które mogą zostać pominięte przez tradycyjne metody oceny.

Pobieranie i ekstrakcja próbek powietrza w miejscu pracy do analizy DNA grzybów

Opisujemy, jak określić ilościowo stawonogi żyjące w liściach, zamykając liście i końce gałęzi w torbie, przycinając i zamrażając materiał w worku, a następnie płucząc wcześniej zamrożony materiał w wodzie, aby oddzielić stawonogi od podłoża w celu ilościowego określenia.

Metoda ilościowego oznaczania stawonogów żyjących w liściach

Opisujemy półilościowe podejście do pomiaru cech korowych (żyjących w korze) społeczności stawonogówów. Umieściliśmy komercyjnie produkowane lepowe pułapki na pniach drzew, aby oszacować liczebność, całkowitą długość (substytut biomasy), bogactwo i różnorodność Shannona w celu porównania między gatunkami drzew.

Kwantyfikacja stawonogów korowych za pomocą lepkich pułapek

Aby zbadać wpływ sztucznego światła w nocy (ALAN) na nocne owady latające, pobieranie próbek musi być ograniczone do nocy. Protokół opisuje tanią, zautomatyzowaną pułapkę przechwytującą lot, która umożliwia naukowcom pobieranie próbek w zdefiniowanych przez użytkownika okresach ze zwiększoną replikacją.

Tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy

Tutaj prezentujemy prosty protokół nieinwazyjnego pobierania próbek genetycznych populacji motyli na podstawie zbierania w terenie resztek jaj. Może być używany do potwierdzania tożsamości gatunku i ilościowego określania zmienności genetycznej. Protokół ten można łatwo dostosować do szerszych grup w celu zaangażowania społeczności w naukę.

Rozmieszczenie naukowców w celu przeprowadzenia nieniszczących próbek genetycznych rzadkich populacji motyli

Poznaj modyfikację dmuchawy do liści do pobierania próbek stawonogów w uprawach ryżu. Ta metoda umożliwia badaczom uzyskanie wiarygodnych szacunków liczebności populacji w terenie.

Modyfikacja i zastosowanie dmuchawy do liści do pobierania próbek stawonogów w terenie

Przeglądaj więcej filmów