11 listopada 2016
Tutaj opisujemy ustawienia do równoległego monitorowania bioluminescencji okołodobowej i aktywności wydzielniczej ludzkich komórek wysp trzustkowych i pierwotnych miotub. W tym celu zastosowaliśmy dostarczanie genu lentiwirusowego za pomocą reportera zegara rdzeniowego lucyferazy, a następnie synchronizację in vitro i zbieranie pożywki odpływowej przez ciągłą peryfuzję komórek.
Ogólnym celem tej procedury jest równoległa ocena bioluminescencji okołodobowej i aktywności wydzielniczej ludzkich pierwotnych komórek endokrynnych hodowanych i synchronizowanych en vitro. Metoda ta może pomóc w zbadaniu czasowego wzorca wydzielania komórek i tego, jak może być ono regulowane przez autonomiczne zegary okołodobowe komórek. Główną zaletą tej techniki jest to, że pozwala nam monitorować okołodobowe lucyferyny jako aktywność reporterową i jednocześnie zbierać pożywkę odpływową do pomiaru poziomu wydzielanych hormonów i miokin. Aby wprowadzić okołodobowe reportery bioluminescencji do komórek pierwotnych za pomocą transdukcji lentiwirusa, najpierw przenieś 3,5 cm szalki Petriego zawierające ludzkie mioblasty przy zbiegu od 30% do 50% do komory laminarnej. Zastąp ludzką pożywkę mioblastową 2 ml pożywki wzrostowej. Następnie przenieś pierwotną hodowlę komórkową, pipetując roztwór lentiwirusa do naczynia, aby uzyskać wielokrotność infekcji równą trzech. Inkubować komórki przez noc w inkubatorze do hodowli tkankowych. Zmień podłoże następnego dnia. Aby uzyskać synchronizację en vitro, dodaj 10 mikromolowych aktywatorów cyklazy adenylowej w 2 ml pożywki na 3,5 cm szalki Petriego zawierającej wcześniej transfekowane komórki pierwotne. Inkubować komórki przez 60 minut w temperaturze 37
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie opisuje metody monitorowania okołodobowej bioluminescencji równolegle z aktywnością wydzielniczą ludzkich komórek wysepek trzustkowych oraz pierwotnych miotub). Podejście to obejmuje lentiwirusową dostawę genu reporterowego rdzenia zegara biologicznego (lucyferazy), a następnie synchronizację in vitro i ciągłą perifuzję komórek w celu zbierania pożywki.
Równoległy pomiar ekspresji genów zegara okołodobowego oraz sekrecji hormonów w pierwotnych hodowlach komórek ludzkich umożliwia bezpośrednią analizę regulacji czasowej w ludzkich układach hormonalnych i mięśniowych. Podejście to zwiększa wiarygodność predykcyjną walidacji celu poprzez powiązanie molekularnych oscylatorów okołodobowych z funkcjonalnymi produktami wydzielniczymi. Integracja tych pomiarów na etapie odkrywania wspiera optymalizację ryzyka w rozwoju programów metabolicznych i chronobiologicznych w całym portfolio.
Metoda ta łączy wczesną fazę odkryć z badaniami przedklinicznymi, umożliwiając testowanie hipotez dotyczących regulacji okołodobowej w ludzkich komórkach pierwotnych, co wspiera zarówno walidację celów terapeutycznych, jak i ciągłość translacyjną.