2 listopada 2016
Opisujemy mikrochirurgiczne podejście do generowania pętli tętniczo-żylnej (AV) jako model do analizy unaczynienia in vivo w izolowanym i dobrze scharakteryzowanym środowisku. Model ten jest nie tylko przydatny do badania angiogenezy, ale jest również optymalnie przystosowany do inżynierii osiowo unaczynionych i przeszczepialnych tkanek.
Ogólnym celem tego podejścia mikrochirurgicznego jest stworzenie pętli tętniczo-żylnej do inżynierii tkanek aksjalnie unaczynionych i transplantowalnych oraz analizy unaczynienia in vivo oraz w izolowanym i dobrze scharakteryzowanym środowisku. Dzięki tej metodzie możemy wykorzystać własne organizmy jako żywe bioreaktory do generowania różnych rodzajów aksjalnie unaczynionych tkanek dostosowanych do indywidualnych potrzeb pacjenta. Główną zaletą tej techniki jest to, że wygenerowana tkanka może zostać przeszczepiona wraz z dostępem naczyniowym i połączona z lokalnymi naczyniami po stronie biorcy, co zapewnia natychmiastowe dostarczanie tlenu i składników odżywczych.
Oprócz badań nad inżynierią tkankową, metoda ta może dostarczyć wglądu w procesy angiostenozy w żywym organizmie. Może ona być również zastosowana w sytuacjach patologicznych, takich jak angiogeneza nowotworowa. Zazwyczaj osoby rozpoczynające pracę z tą metodą napotykają trudności ze względu na wysoką złożoność zabiegu chirurgicznego, takiego jak mikroanastomoza naczynia podmilimetrowego.
Pomysł na tę metodę pojawił się, gdy zetknęliśmy się z przypadkami klinicznymi z dużymi ubytkami tkanek, które wymagały przeszczepienia unaczynionej tkanki autologicznej, co wiązało się ze znacznym ograniczeniem ruchomości po stronie dawcy. Po potwierdzeniu prawidłowego znieczulenia, zważ szczura w celu obliczenia dawek leków. Następnie zastosuj maść do oczu, aby zapobiec ich wysychaniu podczas znieczulenia.
Po podaniu leków przeciwbólowych i antybiotyków umieść szczura na podkładce grzewczej i podawaj izofluran w sposób ciągły. Następnie ponownie potwierdź poziom znieczulenia, wykonując test ucisku palca u nogi. Jeśli to możliwe, użyj również pulsoksymetrii, aby sprawdzić poziom znieczulenia szczura.
Następnie należy ogolić wewnętrzne strony kończyn tylnych. Po tym czasie należy zdezynfekować obszar operacyjny, stosując naprzemienne przemywanie betadyną i alkoholem. Następnie należy rozsunąć kończyny tylne i unieruchomić je za pomocą taśmy klejącej.
Na koniec umieść szczura pod mikroskopem chirurgicznym i przykryj go sterylną draperią. Przeprowadź operację zgodnie z procedurami sterylnymi. Za pomocą skalpela wykonaj podłużne nacięcie skóry w środkowej części lewego uda, od górnej części kolana do pachwiny.
Następnie, używając nożyczek sekcyjnych i mikropincety, przetnij tkankę podskórną i powięź w warstwach o długości około trzech centymetrów. Przerwij czynność, gdy wiązka naczyniowa uda zostanie odsłonięta od tętnicy miednicznej w pachwinie aż do kolana. Następnie, używając nożyczek do tkanek tłuszczowych i mikropincety, odseparuj naczynia i usuń tkankę tłuszczową.
W razie potrzeby koaguluj odnogi boczne za pomocą koagulacji elektrycznej. Po zakończeniu przykryj pole operacyjne wilgotnym kompresem i powtórz procedurę na prawej stronie szczura. Po symetrycznym wykonaniu pierwszej procedury przystąp do pobrania przeszczepu żylnego.
Najpierw należy podwiązać prawą żyłę udową, stosując koagulację elektryczną na końcach proksymalnym i dystalnym, aby uzyskać przeszczep o długości około 1 do 1,5 cm. Następnie należy usunąć przeszczep żylny za pomocą mikropincety. Do rozszerzenia otworu przeszczepu żylnego należy użyć rozszerzacza do naczyń.
Następnie przepłucz przeszczep żylny roztworem heparyny za pomocą kaniuli irygacyjnej. Przenieś przepłukany przeszczep na lewe udo i przykryj pole po prawej stronie wilgotnym kompresem. Następnie podwiąż żyłę udową po lewej stronie, proksymalnie w okolicy pachwinowej, używając mikroclampa naczyniowego.
Następnie należy koagulować żyłę udową dystalnie, w górnej części kolana, przed rozgałęzieniem. W celu wykonania anastomozy należy połączyć proksymalny koniec przeszczepu żylnego z proksymalnym końcem żyły, stosując technikę szycia koniec-do-końca przy użyciu nici 11-0. Rozpocznij od założenia dwóch pierwszych szwów w pozycjach na godzinie 12 i godzinie 6.
Następnie nałóż od dwóch do trzech dodatkowych szwów pomiędzy tymi punktami od strony przedniej. Potem nałóż od dwóch do trzech kolejnych szwów od strony tylnej. Anastomoza naczyń pętli jest najbardziej krytycznym etapem protokołu.
Ważne jest, aby szwy zostały wykonane jak najdokładniej, aby zminimalizować ryzyko zamknięcia pętli naczyniowych. Następnie podwiąż tętnicę udową za pomocą zacisku naczyniowego mikro i zastosuj koagulację elektroniczną, analogicznie do podwiązania żyły udowej. Przed kontynuacją upewnij się, że naczynia w pętlach nie są skręcone.
Następnie wykonaj anastomozę dystalnego końca przeszczepu żylnego z proksymalnym końcem tętnicy, stosując tę samą technikę szwu, która została zaprezentowana wcześniej. Po wykonaniu drugiej anastomozy podaj dożylnie 25 iu heparyny. Teraz upewnij się, że naczynia pętlowe nie są skręcone, a następnie zdejmij zaciski.
Obserwuj pętlę przez około pięć minut, sprawdzając szczelność i drożność. W przypadku drożności pętla zwiększy swoją objętość, a puls tętnicy będzie widoczny. Podczas obserwacji aplikuj kroplami papawerynę na naczynia, aby zapobiec skurczom naczyniowym.
Następnie należy wstępnie napełnić komorę implantacyjną pierwszą połową mieszaniny macierzy, około pół mililitra. Potem wprowadź pętlę do komory implantacyjnej. Zamknij wejście do komory dwoma skrzepami fibryny i napełnij komorę drugą połową mieszaniny macierzy, tak aby całkowita objętość wyniosła jeden mililitr.
Następnie przymocuj komorę do uda, zamknij ją pokrywką i zabezpiecz pokrywkę niewchłanialną szyną 6-0. Następnie przymocuj komorę implantacyjną do uda dodatkową niewchłanialną szyną 6-0. Wszelkie krwawienie zatamuj za pomocą koagulacji elektrycznej.
Na koniec zamknij skórę za pomocą wchłanialnych szwów 4-0 i pokryj ranę sprayem aluminiowym. W celu inżynierii tkanki kostnej w modelu pętli tętniczo-żylnej (A-V) u szczurów wszczepiono szereg różnych substytutów kości. Unaczynienie obserwowano przy użyciu mikrotomografii komputerowej 3D.
Przedwaskularyzacja przetworzonej macierzy kostnej gąbczastej bydlęcej przez sześć tygodni doprowadziła do lepszego przeżycia wstrzykniętych osteoblastów. Pętle zostały pobrane, przekrojone i wybarwione w różnych punktach czasowych po implantacji. Na przykład barwienie H and E wykazało, że zastosowanie substytutu kostnego z hydroksyapatytu i beta-fosforanu trójwapniowego z mezenchymalnymi komórkami macierzystymi doprowadziło do powstania wielu połączeń naczyniowych w ciągu sześciu tygodni.
Po opanowaniu techniki, przy prawidłowym wykonaniu, procedura ta zajmuje od pięciu do sześciu godzin. Zgodnie z tą procedurą można implantować szeroką gamę różnych czynników komórkowych lub przeciwciał w celu zbadania wielu różnych stanów chorobowych. Technika ta sprawdza się również w modelu pętli żylnej u owiec (dużych zwierząt).
Dzięki temu badacze będą mogli wytwarzać unaczynione tkanki w dużych ilościach istotnych klinicznie. Model ten może stworzyć możliwość badania unaczynienia w warunkach patologicznych. Przykładowo, można by badać wpływ różnych czynników wzrostu i komórek podczas tworzenia sieci naczyń nowotworowych
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje mikrochirurgiczne podejście do wytwarzania pętli tętniczo-żylnej (AV), która służy jako model do analizy unaczynienia in vivo. Technika ta jest przydatna w badaniu angiogenezy oraz w inżynierii tkanek przeszczepialnych z unaczynieniem osiowym.
Model pętli tętniczo-żylnej (AV) zapewnia kontrolowane środowisko in vivo do badania angiogenezy i tworzenia unaczynionej tkanki, odpowiadając na krytyczną potrzebę w badaniach przedklinicznych w zakresie powtarzalnych modeli unaczynienia. Dzięki możliwości odizolowania procesów naczyniowych od wpływów systemowych, model ten wspomaga mechanistyczną weryfikację bezpieczeństwa i skuteczności kandydatów pro-angiogennych oraz anty-angiogennych. Zdolność ta zwiększa pewność prognostyczną w walidacji celów i identyfikacji wiodących cząsteczek w zastosowaniach terapeutyki naczyniowej oraz medycyny regeneracyjnej.
Model pętli AV wpisuje się w kontinuum odkryć, od walidacji celu, przez identyfikację wiodących związków, aż po ocenę przedkliniczną, szczególnie w programach dotyczących biologii naczyniowej i inżynierii tkankowej.