23 sierpnia 2016
Wirus Zika (ZIKV), nowy patogen, jest powiązany z nieprawidłowościami rozwojowymi płodu i małogłowiem. Stworzenie skutecznego systemu hodowli komórek zakaźnych ma kluczowe znaczenie dla badań nad replikacją ZIKV, a także dla opracowywania szczepionek i leków. W niniejszej pracy zilustrowano i omówiono różne testy wirusologiczne dotyczące ZIKV.
Ogólnym celem niniejszego badania jest opracowanie systemu hodowli in vitro zakażonych wirusem Zika komórek ssaczych w celu zbadania replikacji wirusa Zika, a także wykorzystanie tej platformy in vitro w procesie opracowywania leków. Niniejszy szczegółowy protokół krok po kroku dotyczący systemu hodowli komórkowej zakażonej wirusem Zika może pomóc w wyjaśnieniu mechanizmu patogenezy choroby wywoływanej przez wirusa Zika oraz ewolucji jego wirulencji. Główną zaletą tej techniki jest możliwość produkcji wirusa Zika na dużą skalę w celu opracowania leków i szczepionek.
Zacznij od zebrania komórek Vero przy 80% gęstości komórkowej w kolbie hodowlanej T75, odsysając medium z kolby i płucząc komórki dwiema mililitrami soli fizjologicznej w buforze fosforanowym (PBS). Dodaj dwa mililitry 0,25% trypsyny i inkubuj kolbę w temperaturze 37 °C przez pięć minut. Po inkubacji dodaj osiem mililitrów medium wzrostowego zawierającego serum, aby inaktywować trypsynę. Następnie przenieś komórki do probówki o pojemności 15 ml. Dalej, pobierz 10 µL zawiesiny komórkowej i wymieszaj z taką samą ilością 0,4% błękitu trypanu. Nanieś przygotowaną mieszaninę na szkiełko komory licznikowej i określ liczbę żywych komórek za pomocą automatycznego licznika komórek. Wysiej łącznie siedem milionów komórek do kolby T160 w objętości 30 ml. Następnego dnia przygotuj odpowiednią wielokrotność zakażenia (MOI) inokulum wirusa Zika w 10 ml bezserwatkowego medium hodowlanego na każdą kolbę.
Bezpieczne obchodzenie się z wirusem jest kluczowe dla zapobiegania rozprzestrzenianiu się infekcji.
Usunąć zużytą pożywkę z kolby T160, a następnie dodać pełne 10 ml świeżo przygotowanego inokulum wirusowego. Inkubować zaszczepione kolby w temperaturze 37 °C przy 5% CO2 przez cztery do sześciu godzin. Rozprzestrzeniać inokulum, delikatnie przechylając kolbę na boki w każdej godzinie inkubacji. Po zakończeniu inkubacji zastąpić inokulum 30 ml podgrzanej pożywki wzrostowej z dodatkiem surowicy. Następnie kontynuować hodowlę wirusową przez kolejne 96 godzin. Po czterech dniach zweryfikować postęp infekcji, obserwując pojawienie się plam wirusowych na monowarstwie komórkowej za pomocą mikroskopu fazowego. Wykonać obrazy w razie potrzeby przy powiększeniu 40x i 200x.
Zebrać nadpłyny z hodowli komórkowych w punkcie czasowym 96 godzin i odwirować nadpłyn przy 300 ×g przez 10 minut w temperaturze 4 °C, aby usunąć szczątki komórkowe. Po wirowaniu ostrożnie zebrać nadpłyny, nie naruszając osadu ze szczątków, i przelać je do probówek o pojemności 15 ml.
Przechowywać nadnadpłyny z kultur wirusowych w wielu alikwotach w temperaturze -80 °C.
Aby oznaczyć miano wirusa, najpierw należy wysiać naiwne komórki Vero na płytkę 12-dołkową w zagęszczeniu 1 × 10⁵ komórek na dołek, w objętości 2 ml. Następnego dnia należy przygotować dziesięciokrotne rozcieńczenia seryjne supernatantów kultur wirusowych, pobranych z kolby T160 przy użyciu medium bezzserwowego.
Podczas przygotowywania rozcieńczeń seryjnych supernatantu hodowli wirusowej do oznaczenia miana, należy przestrzegać zasad bezpiecznego obchodzenia się z wirusem, aby zapobiec zakażeniu.
Następnie usunąć zużyte medium z każdej studni płytki 12-dołkowej zawierającej komórki Vero i dodać 400 µl rozcieńczonego inokulum do komórek Vero w trzech powtórzeniach. Inkubować zaszczepione płytki w inkubatorze do hodowli tkanek przez cztery do sześciu godzin.
Po zakończeniu inkubacji zastąpić inokulum dwiema mililitrami pożywki uzupełnionej surowicą na każdą studnię. W 48 godzinie po inokulacji policzyć ogniska wirusowe w odpowiednich rozcieńczeniach, używając mikroskopu fazowego. Obliczyć miano wirusa jako liczbę jednostek tworzących plak (PFU) na mililitr.
Po zaszczepieniu komórek Vero w płytce 12-dołkowej wysokimi i niskimi mianami wirusa Zika oraz inkubacji przez 48 i 96 godzin, replikację genomu ocenia się za pomocą ilościowej PCR w celu oznaczenia ekspresji genomu wirusa Zika oraz immunocytochemicznie w celu wykrycia dwuniciowego RNA.
W celu przeprowadzenia immunocytochemii należy usunąć pożywkę z dołków płytki 12-dołkowej i dodać do każdego dołka 1 mL metanolu. Pozostawić komórki do utrwalenia w temperaturze 4 °C przez 30 minut. Następnie utrwalone komórki przemyć trzykrotnie 1x PBS. Dodać bufor blokujący i inkubować przez jedną godzinę w temperaturze pokojowej. Przeciwciało mysie monoklonalne anty-dwuniciowe RNA J2 rozcieńczyć w buforze blokującym w stosunku 1:100, dodać do komórek i inkubować je w tym roztworze przez noc w temperaturze 4 °C. Następnego dnia przeciwciało wtórne kozie anty-mysie IgG-594 rozcieńczyć w buforze blokującym w stosunku 1:1 000, a po przemyciu komórek 1x PBS dodać je do komórek i inkubować przez jedną godzinę w temperaturze pokojowej. Po przemyciu komórek 1x PBS przeprowadzić barwienie jąder komórkowych barwnikiem Hoechst i obserwować komórki przy użyciu mikroskopu fluorescencyjnego z powiększeniem 100x.
Sześć godzin po wysianiu naiwnych komórek Vero na płytkę 12-dołkową, jak wcześniej, należy dodać interesujące cytokiny w określonych stężeniach w duplikacie biologicznym. 12 godzin po traktowaniu przeprowadza się infekcję wirusem Zika, uwzględniając dołki kontrolne ujemne bez infekcji. Cztery godziny po infekcji inokulum wirusowe zastępuje się medium z cytokinami, a następnie komórki inkubuje się w temperaturze 37 °C przez kolejne 44 godziny. W 48. godzinie po infekcji należy policzyć plak wirusowe przy użyciu mikroskopu kontrastowego i wykonać reprezentatywne zdjęcia zainfekowanych komórek przy powiększeniu 40x.
Wykres ten przedstawia zawartość genomu wirusa Zika zmierzoną za pomocą RT-qPCR. Zarówno startery dla genotypu Pan, jak i dla szczepu PRVABC-59 wykazały taką samą czułość i swoistość. Zgodnie z oczekiwaniami, startery wirusa zapalenia wątroby C nie spowodowały amplifikacji żadnego produktu.
Przedstawiono kinetykę wzrostu wirusa Zika w wskazanych punktach czasowych w komórkach zainfekowanych niskim i wysokim mianem, w porównaniu z niezinfekowaną kontrolą pozorowaną. Wyniki analizy immunocytochemicznej pokazują, że w 48 godzinach po infekcji zainfekowane komórki tworzą kilka skupisk, natomiast w 96 godzinach po infekcji większość komórek jest zainfekowana. Wykres ten przedstawia modulację wzrostu wirusa Zika przez różne cytokiny w porównaniu z kontrolą nośnika.
Te obrazy w kontraście fazowym przedstawiają komórki zainfekowane wirusem Zika z zastosowaniem lub bez zastosowania cytokin. Plaki wirusowe utworzone przez zainfekowane komórki są widoczne jako ogniska. Należy zauważyć, że w studzienkach traktowanych interferonem nie występują plaki wirusowe.
Po wykonaniu tej procedury można zastosować inne metody, takie jak mapowanie domen wirusa Zika o wysokiej rozdzielczości w celu lokalizacji białek wirusowych i badania replikacji w komórkach komarów oraz ludzi, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania, np. w zakresie wyjaśnienia mechanizmu patogenezy choroby i ewolucji wirulencji wirusa. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać biegłą wiedzę na temat tego, jak ustanowić oparty na komórkach ssaków system hodowli zakaźnej wirusa Zika in vitro w celu badania replikacji wirusa Zika, a także na temat wykorzystania platformy in vitro w opracowywaniu leków i szczepionek.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie ustanawia in vitro system hodowli oparty na komórkach ssaków dla wirusa Zika (ZIKV) w celu zbadania jego replikacji oraz usprawnienia rozwoju leków. Szczegółowy protokół ma na celu pogłębienie wiedzy na temat patogenezy ZIKV oraz wsparcie wielkoskalowej produkcji wirusa do celów terapeutycznych.
Ustanowienie solidnego systemu in vitro hodowli komórkowej zakażonej wirusem Zika wypełnia krytyczną lukę w początkowych etapach procesów odkrywania leków przeciwwirusowych i szczepionek. Platforma ta umożliwia powtarzalną propagację wirusa, ilościową ocenę kinetyki replikacji oraz systematyczną ewaluację kandydatów na leki przeciwwirusowe, co bezpośrednio wpływa na walidację celów i identyfikację wiodących związków w terapii ZIKV. Skalowalność systemu i standaryzacja testów wspierają translacyjne badania w całym portfolio oraz decyzje o rozwoju projektów w oparciu o analizę ryzyka.
Ten zakaźny system hodowli komórkowych integruje się z kontinuum od odkrycia do badań przedklinicznych, umożliwiając walidację celów opartą na hipotezach, identyfikację związków wiodących oraz badania translacyjne nad ZIKV i pokrewnymi flawiwirusami.