14 listopada 2016
Ogólnym celem tego protokołu mutagenezy jest wykorzystanie prostej konfiguracji LED do mutagenizacji genomowego DNA C. elegans, które wyraża zależne od niebieskiego, reaktywne białka generatora tlenu. Dwie główne zalety tej techniki to jedna, protokół mutagenezy jest bardzo prosty i nie wymaga toksycznych chemikaliów. A po drugie, generator mutagenezy okazuje się po długiej mutacji.
Po raz pierwszy wpadł mi do głowy pomysł na tę metodę i zdałem sobie sprawę, że białka generujące RFT nigdy nie były używane do wywoływania mutacji dziedzicznych. W tym eksperymencie podłącz sterownik oświetlacza LED do cyfrowego generatora funkcyjnego za pomocą BNC. Za pomocą niestandardowego uchwytu zabezpiecz światła LED 10 centymetrów nad sceną.
Teraz częściowo zakryj ustawienie, aby ograniczyć ekspozycję niebieskiego światła na otoczenie, ale nie na tyle, aby ciepło gromadziło się na scenie. Zastosowano tu wykonaną na zamówienie, twardą plastikową osłonę z otwartą górą i dołem. Podczas pracy diody LED należy zawsze nosić okulary chroniące przed laserem lub okulary przeciwsłoneczne, ponieważ światło jest bardzo jasne.
Teraz przełącz dźwignię kontrolera LED na wewnętrzną i ustaw ją na 65% jego maksymalnej mocy. Za pomocą fotometru w razie potrzeby wyreguluj moc światła, tak aby na scenie wynosiła 2,0 miliwata na milimetr kwadratowy podczas ciągłego oświetlenia. W przypadku tego protokołu utrzymuj wrażliwy na światło szczep w ciemności w standardowych warunkach.
Należy unikać niepotrzebnej ekspozycji na światło, ale rutynowe używanie lamp halogenowych do przejścia nie powoduje mutacji. Ponieważ przypadkowa mutacja jest problemem, należy zamrozić podwielokrotności szczepu, gdy zostaną one uzyskane po raz pierwszy. Do mutagenezy przygotuj bibułę filtracyjną pasującą do 60-milimetrowej płytki z około 25-milimetrowym kwadratowym otworem pośrodku i umieść ją na nieziarnistej płytce.
Następnie rozprowadź 100 mikrolitrów 100-milimolowego chlorku miedzi równomiernie na bibule filtracyjnej, aby robaki nie opuściły kwadratowego otworu. Teraz, z talerza robaków, które są około 12 godzin po ich stadium L4, wybierz ciężarne, młode dorosłe hermafrodyty i umieść je w środkowym kwadracie na talerzu. Następnie włącz diodę LED i generator funkcji.
Następnie przełącz sterownik LED na zewnętrzny, aby sterować nim za pomocą generatora funkcyjnego i odpowiednio ustaw moc. Z generatora funkcyjnego wytwórz falę sinusoidalną o częstotliwości 4 herców. Teraz przenieś płytkę na scenę i oświetl robaki niebieskim światłem przez 30 minut.
Bezpośrednio po zabiegu przenieś wszystkie zdrowo wyglądające robaki na talerz z nasionami. Robaki te będą wydawać się nieskoordynowane po leczeniu światłem, ale wyzdrowieją. Trzymaj robaki potraktowane światłem w ciemności.
Później sprawdź, czy nie ma nieprawidłowych morfologii lub zachowań u dorosłego potomstwa F2. Przeprowadzono przesiewowe badanie genetyczne przy użyciu opisanej techniki dla 60 płytek F1, odpowiadających 120 mutagenizowanym genomom haploidalnym. Osiem z 60 płytek F1 z robakami F2 wykazywało widoczne fenotypy, takie jak przysadzisty kształt ciała, nieskoordynowane ruchy lub śmiertelność dorosłych.
Potomstwo tych robaków F2 zachowało te obserwowalne fenotypy. Liczba widocznych mutantów na tym ekranie sugeruje, że szczep i konfiguracja działają prawidłowo dla mutagenezy optogenetycznej. Procedurę mutagenezy można przeprowadzić w ciągu godziny.
Ciesz się szybką i bezpieczną metodą mutagenezy.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia protokół mutagenezy wykorzystujący genetycznie kodowaną histone-miniSOG w celu indukowania dziedzicznych mutacji w całym genomie w sposób zależny od światła niebieskiego. Metoda ta jest prosta, szybka i wolna od toksycznych substancji chemicznych, co czyni ją idealną do forward genetic screening oraz integracji transgenów.
Optogenetyczna randomowa mutageneza z wykorzystaniem histone-miniSOG u C. elegans umożliwia szybką, dziedziczną modyfikację genomu bez użycia niebezpiecznych chemikaliów, co usprawnia wczesne etapy procesów badawczych. Podejście to wspiera wysokoprzepustowe przesiewanie genetyczne oraz integrację transgenów, zmniejszając bariery operacyjne i zwiększając elastyczność portfolio. Bezpieczeństwo i prostota tej metody czynią ją skalowalnym narzędziem do genomiki funkcjonalnej oraz walidacji celów w badaniach przedklinicznych.
Ta metoda mutagenezy optogenetycznej integruje się z wczesnymi etapami odkrywania i walidacji celu, wspierając identyfikację związków wiodących oraz rozwój modeli przedklinicznych.