-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
Elektroforeza kapilarna Separacja izoform przeciwciał monoklonalnych za pomocą neutralnej kapilary
Elektroforeza kapilarna Separacja izoform przeciwciał monoklonalnych za pomocą neutralnej kapilary
JoVE Journal
Biochemistry
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biochemistry
Capillary Electrophoresis Separation of Monoclonal Antibody Isoforms Using a Neutral Capillary

Elektroforeza kapilarna Separacja izoform przeciwciał monoklonalnych za pomocą neutralnej kapilary

Full Text
13,241 Views
14:53 min
January 16, 2017

DOI: 10.3791/55082-v

Carlos Eduardo Espinosa-de la Garza*1, Rodolfo Daniel Salazar-Flores*1, Néstor Octavio Pérez1, Luis Francisco Flores-Ortiz1, Emilio Medina-Rivero1

1Unidad de Investigación y Desarrollo, Probiomed S.A. de C.V.

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Tutaj prezentujemy kompleksowy protokół elektroforezy strefy kapilarnej do oceny wewnętrznej fizykochemicznej heterogeniczności przeciwciał monoklonalnych jako atrybutu jakości.

Obecnie technika elektroforezy komórek kapilarnych stanowi jeden z najbardziej rozczynnych i czułych stanów do analizy biomolekuł, takich jak przeciwciała jednookrężnicowe. Jednak pomyślne wdrożenie tej techniki zależy od wiedzy i umiejętności analityka na krytycznych etapach przygotowywania próbki i systemu. Ten samouczek ma na celu przeprowadzenie udanej analizy, naprawdę szczegółowe wyjaśnienie przygotowania roztworu i próbek, przygotowanie systemu elektroforezy kapilarnej, konfigurację metody przyrządów oraz podejmowanie decyzji i przetwarzanie danych.

Ogólnie rzecz biorąc, protokół ten może być wykorzystywany do rozwoju i doskonalenia umiejętności personelu zaangażowanego w przygotowanie laboratoriów chemii analitycznej. Zważyć ilość HPMC, aby uzyskać końcowe stężenie 0,05 procent w 100 mililecierach. Ponieważ HPMC jest podstawowym elastycznym polimerem, w pierwszym kroku wlej bounder do szklanej zlewki i powoli dodawaj 80 mililitrów wody, aby zdesegregować proszek.

Następnie spłucz tackę zwilżającą wodą, aby usunąć ślady proszku. Dodaj pozostałych regentów jak zwykle i wymieszaj roztwór. Dostosuj wartość pH do 4,8 za pomocą 50 procent kwasu kwasowego.

I pozwól, aby roztwór ustabilizował się przez pięć minut. Następnie w razie potrzeby dostosuj PH. Dodaj wodę, aby uzupełnić końcową objętość 100 mililitrów.

Przefiltruj przygotowany roztwór BG przez membranę neutrofilową i wlej do szklanej butelki. Na koniec odpowiednio oznacz szklaną butelkę i przechowuj w lodówce. Aby przygotować próbkę, w pierwszym kroku dodaj 162 mikrolitry śladowego roztworu buforowego do 1,5 mililitrowej probówki.

Następnie dodać 18 mikrolitrów wcześniej przygotowanej próbki map w stężeniu 10 miligramów na mililitr. W trzecim kroku dodaj 20 mikrolitrów wcześniej przygotowanego jednoprocentowego roztworu histaminy, aby uzyskać końcową objętość próbki 200 mikrolitrów. W następnym kroku przygotuj próbkę przez pięć sekund.

I wirować przez pięć sekund. Zassać całkowitą objętość próbki. I dozować w górę do mikrofiolki, aby uniknąć wprowadzania pęcherzyków.

Na koniec należy zakryć fiolkę i przechowywać w lodówce. Wyłącz przyrząd CE, naciskając wyłącznik zasilania. I otwórz drzwi wejściowe.

Umieść nowe ruchome wycieranie pod blokiem interfejsu. Przepłucz elektrody przez blok interfejsu wodą za pomocą butelki do mycia. Pozwól, aby woda kapała przez otwory i dokładnie wysusz blok interfejsu.

Ostrożnie usuń nadmiar wody z elektrod za pomocą chusteczki. Uważaj, aby nie znaleźć się w elektrodach podczas tej procedury. Wyjmij chusteczkę z systemu przytrzymywania próbki.

Oczyść powierzchnię tacek na próbki nową, zwilżoną wodą, nieruchomą chusteczką. I powierzchnia tac buforowych. Przesuń tacki buforowe do góry, podnieś system przytrzymywania próbki i wyczyść ich powierzchnię za pomocą chusteczki.

Przesuń tace buforowe z powrotem na miejsce. Następnie dokładnie wyczyść blok interfejsu. Wyczyść listwa zaciskową i obudowę lampy UV.

Na koniec wypróbuj system przed użyciem. Opłucz dźwignie otwierania wodą za pomocą butelki do mycia. Dokładnie oczyść ich powierzchnię nową, nieruchomą chusteczką, aby usunąć kurz i nagromadzone sole.

Na koniec wypróbuj je przed instalacją. Wyczyść dwa końce światłowodowego za pomocą zwilżonej wodą ściereczki z mikrofibry i potwierdź lampkę między końcami. Usuń nową neutralną kapilę z opakowania.

Zabierz teraz jeden koniec rurki ochronnej kapilary na stół roboczy. Rozwiń i wyprostuj plastikową rurkę, a następnie ostrożnie wyciągnij kapilatę z rurki. Przyklej kartkę papieru do stołu warsztatowego z następującymi znakami pomiaru.

Dopasuj okienko kapilarne do znaczników pomiaru od punktu zerowego do centymetrów w następujący sposób: Następnie przymocuj końce kapilary do stołu warsztatowego za pomocą taśmy. Zaznacz końce kapilary dwa milimetry poza znacznikami pomiaru. Odetnij nasadkę ochronną na końcu kapilary najbardziej oddalonym od okna.

I zanurz koniec kapilary w fiolce CE wypełnionej wodą, aby uniknąć trwałego uszkodzenia wewnętrznej powłoki kapilary. Wyjąć kapilarę z fiolki i ostrożnie włożyć ten koniec do strony wylotowej wkładu. Gdy kapilara pojawi się po drugiej stronie, pociągnij to, co jest konieczne, aż okienko kapilarne zostanie wyśrodkowane do okienka wkładu w następujący sposób.

Następnie obróć wkład i włóż zatyczkę przysłony do okienka wkładu, naciskając, aby zatrzasnąć się na swoim miejscu. Uważaj, aby nie złamać okienka kapilarnego podczas tej procedury. Upewnij się, że światło przechodzi przez okno, gdy jest wystawione na działanie szerokiego źródła światła.

Wprowadzić kapilarę do wstępnie uformowanej rurki chłodziwa z fabrycznie zainstalowanymi rurkami, nie dzikimi i o-ringiem. Przepchnij kapilarę przez rurkę, aż kapilara pojawi się po drugiej stronie. Następnie włóż koniec rurki po stronie wylotowej wkładu i dokręć nakrętki przewodów.

Włóż końcówkę wlotu kapilary do strony wlotowej wkładu. Gdy kapilara pojawi się po drugiej stronie, pociągnij w razie potrzeby. Następnie włóż koniec rurki po stronie wlotowej wkładu i dokręć nakrętki przewodu.

Odetnij nasadkę ochronną na końcu kapilary znajdującym się najbliżej okna. I zainstaluj zaciski ustalające ogniwa na końcach kapilary, dociskając, aby zatrzasnąć się na miejscu w następujący sposób. Wytnij końce kapilar poniżej linii odniesienia na wydłużonych kapilarnie płytkach.

Pamiętaj, aby sprawdzić końce kapilar za pomocą szkła powiększającego. Jeśli końce kapilarne nie są gładkie, wypoleruj je za pomocą kamienia cleven. Umieść o-ring przysłony w niebieskim otworze przysłony.

I włóż go ostrożnie za pomocą narzędzia do wkładania o-ringów. Na koniec zainstaluj fiolki CE wypełnione wodą w obudowie wkładu i natychmiast umieść wkład w opakowaniu z końcami kapilar włożonymi do fiolek i przechowuj w lodówce. Dostosuj objętość pipety.

Dodaj odpowiednią ilość wody do wlotu bufora o współrzędnych tacy A1, B1 i F6. A do tacy wylotowej bufora współrzędne A1, B1, C1, E6 i F6. Dodaj HCl 0,1 normalną do tacy wlotowej bufora o współrzędnych C1 i E6. I dodaj BGE do koryta wlotowego bufora o współrzędnych D1 i E6. I do tacy wylotowej bufora współrzędna D1. Na koniec zakryj wszystkie fiolki CE w tacach wlotowych i wylotowych buforu. Podczas zabiegu należy unikać zwilżania nasadek fiolek, aby zapobiec wyciekowi węgla. Otwórz przednie drzwiczki instrumentu CE.

Najpierw zainstaluj detektor UV i zabezpiecz go, obracając zgodnie z ruchem wskazówek zegara. Podnieś drzwi wewnętrzne i zainstaluj dźwignie otwierające, wciskając je do bloku interfejsu. Włóż światłowodowy do zacisku i obróć zgodnie z ruchem wskazówek zegara.

I podłącz drugi koniec do czujnika. Z światłowodowym należy obchodzić się ostrożnie, ponieważ zginanie może spowodować jego pęknięcie. Umieścić tackę na próbkę w systemie do przechowywania próbki i zatrzasnąć ją na swoim miejscu.

Postępując zgodnie z tą samą procedurą, umieścić tacki buforowe w układzie do przechowywania próbki. Podnieś listwę zaciskową i umieść wkład kapilarny w bloku interfejsu. Naciśnij clamp listwa zaciskowa na obu końcach i dokręć pokrętła, obracając zgodnie z ruchem wskazówek zegara.

Zamknij drzwi wewnętrzne i zamknij drzwi przednie. Na koniec włącz instrument CE, naciskając wyłącznik zasilania. Utwórz metodę instrumentu kondycjonującego.

Skonfiguruj parametry personelu stanu początkowego, w tym napięcie, kartridż i temperaturę przechowywania próbki oraz ustawienia wyzwalania. Wybierz dwa tysiące czternaście jako długość fali akwizycji. Zadeklaruj czynności, które mają być wykonane przez urządzenie, konfigurując parametry w zaprogramowanych w czasie komórkach.

W tym szczegółowe ustawienia dla każdego etapu płukania, wtryskiwania i separacji. Przeprowadź tę procedurę, aby utworzyć metody kondycjonowania i wyłączania przyrządu. Następnym krokiem jest utworzenie nowej sekwencji.

Zaprogramować kapilarnę do kondycjonowania za pomocą metody kondycjonowania. Jeśli kapilar jest używany po raz pierwszy, zaprogramuj cztery powtórzenia. W przeciwnym razie zaprogramuj dwa powtórzenia.

Następnie zaprogramuj próbki do analizy przy użyciu uruchomionej metody. Na koniec zaprogramuj kapilarę do przechowywania metodą wyłączania. Analiza elektroforezy komórek kapilarnych jest zakończona w ciągu 30 minut.

Pierwszy wynik odpowiadał standardowi internalistycznemu histaminy jako miary wydajności systemu adeque. Po tym następują charakterystyczne podstawowe, główne i kwaśne formy lodu monoklonalnego anthiberi ebaluacytu. Cała separacja przebiega pod stałym prądem o natężeniu około 30 mikroamperów.

Po przeprowadzeniu eksperymentu wyeksportuj surowe dane z oprogramowania do pobierania i zaimportuj je za pomocą oprogramowania do przetwarzania. Procentową zawartość każdej formy lodu uzyskuje się po pionowym zintegrowaniu profilu elektrofarogramu z linią kropli. Tutaj przedstawiliśmy szczegółowy przewodnik krok po kroku, aby przeprowadzić analizę aktywności monoklonalnej, która została wygenerowana przez elektroforezę komórek kapilarnych.

Wraz z kilkoma zaleceniami mającymi na celu złagodzenie potencjalnych problemów, obecny protokół ma tę zaletę, że można go łatwo dostosować do analizy innych białek, biorąc pod uwagę krótkie modyfikacje parametrów przewodności i pH.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: elektroforeza kapilarna przeciwciało monoklonalne izoformy HPMC roztwór buforowy przygotowanie próbki instrument CE

Related Videos

Chromatografia powinowactwa oparta na DFE: technika oczyszczania przeciwciał monoklonalnych 2F5 z surowej próbki przy użyciu warunków elucji opartych na wysokiej sile jonowej

03:41

Chromatografia powinowactwa oparta na DFE: technika oczyszczania przeciwciał monoklonalnych 2F5 z surowej próbki przy użyciu warunków elucji opartych na wysokiej sile jonowej

Related Videos

1.5K Views

Technika chromatografii powinowactwa do oczyszczania przeciwciał monoklonalnych

03:03

Technika chromatografii powinowactwa do oczyszczania przeciwciał monoklonalnych

Related Videos

971 Views

Test immunologiczny elektroforezy kapilarnej do wykrywania biomarkerów białkowych

07:32

Test immunologiczny elektroforezy kapilarnej do wykrywania biomarkerów białkowych

Related Videos

619 Views

Procedura i kluczowe strategie optymalizacyjne dla zautomatyzowanej metody immunologicznego opartego na elektroforetycznych naczyniach włosowatych

09:32

Procedura i kluczowe strategie optymalizacyjne dla zautomatyzowanej metody immunologicznego opartego na elektroforetycznych naczyniach włosowatych

Related Videos

11.4K Views

Wytwarzanie dyskryminujących ludzkich przeciwciał monoklonalnych z rzadkich limfocytów B specyficznych dla antygenu B krążących we krwi

13:14

Wytwarzanie dyskryminujących ludzkich przeciwciał monoklonalnych z rzadkich limfocytów B specyficznych dla antygenu B krążących we krwi

Related Videos

11K Views

Wysoce czułe i ilościowe wykrywanie białek i ich izoform metodą kapilarnego ogniskowania izoelektrycznego

07:58

Wysoce czułe i ilościowe wykrywanie białek i ich izoform metodą kapilarnego ogniskowania izoelektrycznego

Related Videos

7.1K Views

Oczyszczanie i analiza przeciwciała monoklonalnego z komórek jajnika chomika chińskiego przy użyciu zautomatyzowanego systemu mikrobioreaktora

10:50

Oczyszczanie i analiza przeciwciała monoklonalnego z komórek jajnika chomika chińskiego przy użyciu zautomatyzowanego systemu mikrobioreaktora

Related Videos

15.3K Views

Chromatografia jonowymienna (IEX) sprzężona z wielokątowym rozpraszaniem światła (MALS) w celu separacji i charakterystyki białek

10:41

Chromatografia jonowymienna (IEX) sprzężona z wielokątowym rozpraszaniem światła (MALS) w celu separacji i charakterystyki białek

Related Videos

18.7K Views

Elektroforeza kapilarna bez osłonki – spektrometria mas do profilowania metabolicznego próbek biologicznych

07:46

Elektroforeza kapilarna bez osłonki – spektrometria mas do profilowania metabolicznego próbek biologicznych

Related Videos

12.2K Views

Charakterystyka wielopodjednostkowych kompleksów białkowych ludzkiego MxA przy użyciu niedenaturującej elektroforezy żelowej poliakryloamidu

08:55

Charakterystyka wielopodjednostkowych kompleksów białkowych ludzkiego MxA przy użyciu niedenaturującej elektroforezy żelowej poliakryloamidu

Related Videos

10.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code