Name: Protokoły ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 6 s
Description: Poznaj metody ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej. Protokoły te pomagają oceniać ryzyko ekspozycji człowieka na pestycydy i wspierają decyzje regulacyjne w ochronie zdrowia publicznego.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dziękujemy Khaliedowi Ahmedowi, Laney McKnight i Drew Pinnixowi za pomoc terenową i laboratoryjną, a także personelowi pomocniczemu Lake Wheeler Turfgrass Field Laboratory, w tym Dustinowi Corbettowi i Marty'emu Parishowi, za utrzymanie obszarów badawczych. Prace te były częściowo wspierane przez North Carolina State University Center for Turfgrass Environmental Research and Education.

<ol><li>Census of Agriculture: United States Summary and State Data [Internet]. , United States Department of Agriculture. Washington, DC, USA. Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.agcensus.usda.gov/Publications/2007/Full_Report/usv1.pdf">http://www.agcensus.usda.gov/Publications/2007/Full_Report/usv1.pdf</a> (2009).</li>
<li>Milesi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+and+modeling+the+biogeochemical+cycling+of+turf+grasses+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Manag%22%5BJournal%5D)">Mapping and modeling the biogeochemical cycling of turf grasses in the United States.</a> Environ. Manag. 36, 426-438 (2005).</li>
<li>Turgeon, A. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTurgeon%2C+AJ+%22Turfgrass+management%22">Turfgrass management</a>. , 8th ed, Pearson Education, Inc. Upper Saddle River, NJ, USA. (2008).</li>
<li>Cisar, J. L., Synder, R. H., Sartain, J. B., Borgert, C. J. <a target="_blank" href="http://usgatero.lib.msu.edu/v01/n13.pdf">Dislodgeable residues of chloropyrifos and isazofos and implications for golfer exposure.</a> Int. Turf. Soc. 9, 12-18 (2001).</li>
<li>Morgan, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+and+children%27s+exposure+to+2%2C4-D+from+multiple+sources+and+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Expos.+Sci.+Environ.+Epidemiol%22%5BJournal%5D)">Adult and children's exposure to 2,4-D from multiple sources and pathways.</a> J. Expos. Sci. Environ. Epidemiol. 18 (5), 486-494 (2008).</li>
<li>Overview of Risk assessment in the Pesticide Program [Internet]. , United States Environmental Protection Agency. Washington, DC, USA. Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.regulations.gov/document?D=EPA-HQ-OPPT-2009-0157-0003">https://www.regulations.gov/document?D=EPA-HQ-OPPT-2009-0157-0003</a> (2016).</li>
<li>OCSPP Harmonized Test Guidelines - Master List [Internet]. , United States Environmental Protection Agency. Washington, DC. USA. Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-11/documents/ocspp-testguidelines_masterlist-2015-11-19.pdf">https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-11/documents/ocspp-testguidelines_masterlist-2015-11-19.pdf</a> (2015).</li>
<li>Occupational and Residential Exposure Test Guidelines - OPPTS 875.1100 Dermal Exposure - Outdoor. , United States Environmental Protection Agency. Washington, DC, USA. Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.epa.gov/pesticide-science-and-assessing-pesticide-risks/overview-risk-assessment-pesticide-program">https://www.epa.gov/pesticide-science-and-assessing-pesticide-risks/overview-risk-assessment-pesticide-program</a> (1996).</li>
<li>Fuller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+California+roller+for+measuring+transferable+residues+on+treated+turfgrass%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Environ.+Contam.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Modified California roller for measuring transferable residues on treated turfgrass.</a> Bull. Environ. Contam. Toxicol. 67 (6), 787-794 (2001).</li>
<li>Klonne, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+study+of+five+transferable+turf+residue+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Environ.+Contam.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Comparative study of five transferable turf residue methods.</a> Bull. Environ. Contam. Toxicol. 67 (6), 771-779 (2001).</li>
<li>Rosenheck, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+a+standardized+sampling+technique+for+pesticide+transferable+turf+residues%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Environ.+Contam.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Determination of a standardized sampling technique for pesticide transferable turf residues.</a> Bull. Environ. Contam. Toxicol. 67 (6), 780-786 (2001).</li>
<li>Welsh, A. Transferable turf residue following imidacloprid application. , Department of Pesticide Regulation - California Environmental Protection Agency. Sacramento, California, USA. Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.cdpr.ca.gov/docs/whs/pdf/hs1860.pdf">http://www.cdpr.ca.gov/docs/whs/pdf/hs1860.pdf</a> (2005).</li>
<li>Kim, D. S., Marshall, E. J. P., Brain, P., Caseley, J. C. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/230326621_Effects_of_crop_canopy_structure_on_herbicide_deposition_and_performance">Effects of crop canopy structure on herbicide deposition and performance.</a> Weed Res. 51 (3), 310-320 (2011).</li>
<li>Jeffries, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+influencing+dislodgeable+2%2C4-D+plant+residues+from+hybrid+bermudagrass+%28Cynodon+dactylon+L.+x+C.+transvaalensis.%29+athletic+fields%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Factors influencing dislodgeable 2,4-D plant residues from hybrid bermudagrass (Cynodon dactylon L. x C. transvaalensis.) athletic fields.</a> PLoS One. 11 (2), 1-16 (2016).</li>
<li>Sears, M. K., Bowhey, C., Braun, H., Stephenson, G. R. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/230210571_Dislodgeable_residues_and_persistence_of_diazinon_chlorpyrifos_and_isofenphos_following_their_application_to_turfgrass">Dislodgeable residues and persistence of diazinon, chloropyrifos and isofenphos following their application to turfgrass.</a> Pestic. Sci. 20 (3), 223-232 (1987).</li>
<li>Rasband, W. S. ImageJ. , U.S. National Institutes of Health. Bethesda, Maryland, USA. Available from:
 <a target="_blank" href="http://imagej.nih.gov/ij">http://imagej.nih.gov/ij</a> (2007).</li>
<li>Campillo, C., Prieto, M. H., Daza, C., Mońino, M. J., García, M. I. <a target="_blank" href="http://hortsci.ashspublications.org/content/43/6/1780.abstract">Using digital images to characterize canopy coverage and light interception in a processing tomato crop.</a> HortSci. 43 (6), 1780-1786 (2008).</li>
</ol>

Autorzy nie mają żadnych ujawnień do ujawnienia.

Agencje regulacyjne nie zidentyfikowały konkretnej metody ilościowego określania przenoszalnych pozostałości pestycydów z trawy darniowej. Badania te wspierają wykorzystanie różnych metod opartych na kryteriach specyficznych dla danego miejsca i procesu narażenia, ponieważ wszystkie one mają przydatność do oceny ryzyka dla ludzi. Jednak wszystkie mają ograniczenia, o których badacze powinni wiedzieć przed ich użyciem. Wreszcie, gatunek trawy darniowej nie jest parametrem wyboru miejsca obecnie podawanym w protokołach dot...

Trawy darniowe są uprawiane na ponad 16,3 miliona ha w sąsiednich Stanach Zjednoczonych (USA) — przekraczając łączny obszar nawadnianej kukurydzy zbożowej [(Zea mays L.) 2,5 miliona ha], soi [(Glycine max L.) 2,1 miliona ha] i bawełny [(Gossypium hirsutum L.) 0,9 miliona ha] — i są wykorzystywane przez społeczeństwo do użytkowania gruntów, w tym boisk sportowych, Trawniki komercyjne/mieszkalne, pola golfowe i parki1,2. Zapewniają one wiele pozytywnych cech społecznych, w tym kontrolę zapylenia, rozpraszanie ciepła, powierzchnie rekreacyjne i stabilizację gleby. Może jednak dojść do wtargnięcia szkodników, co wymaga użycia pestycydów w celu utrzymania murawy na akceptowalnym poziomie3.
Korony roślin w istniejących systemach traw darniowych przechwytują rozpylane pestycydy. Narażenie człowieka na pestycydy jest możliwe różnymi drogami, w tym przenoszeniem z roślinności poddanej działaniu środka bezpośrednio na ludzi, a także drogami pośrednimi, takimi jak przenoszenie na sprzęt do konserwacji, zwierzęta domowe i przedmioty rekreacyjne4,5. Aby rozwiać takie obawy, przed rejestracją i ponowną rejestracją pestycydów w USA należy przeprowadzić ocenę ryzyka narażenia ludzi na pestycydy, aby oszacować charakter i prawdopodobieństwo wystąpienia niekorzystnych skutków zdrowotnych po narażeniu na skażone media środowiskowe6. W ramach wytycznych dotyczących badań narażenia zawodowego i mieszkaniowego stosowanych obecnie przez USEPA, przeprowadza się testy rozpraszania pozostałości przenoszonych dolistnie (OPPTS 875.2100) w celu ilościowego określenia pozostałości pestycydów na powierzchniach poddanych działaniu środka, które mogą być przenoszone w wyniku różnych procesów na ludzką skórę/odzież lub wdychane7,8.
Poprzednie próby badawcze porównały kilka metod przenoszenia pozostałości pestycydów dolistnie, w tym wałek kalifornijski (przesuwanie rolki o znanej masie po bawełnianej tkaninie), sanki ciągnące (ciągnięcie stałego przedmiotu o znanej masie z przymocowanym do niego kawałkiem materiału), wałek z pianki poliuretanowej (przesuwanie rolki o znanej masie pokrytej pianką poliuretanową) i shuffling (mocowanie bawełnianej gazy do butów), które są przeprowadzane na znanym obszarze trawy darniowej poddanej działaniu pestycydów9,10,11,12. Spośród wyżej wymienionych metod, kalifornijskie podejścia oparte na rolkach zapewniają najbardziej powtarzalne podejście do ilościowego oznaczania pozostałości pestycydów przenoszonych przez liście; Jednak porównywalnie bardziej agresywne podejścia, takie jak tasowanie butów, mogą przenosić więcej pozostałości pestycydów, co jest również przydatne w ocenach ryzyka. Metody ręcznego wycierania zapewniają stosunkowo zwiększoną zdolność kontaktu z unikalnymi powierzchniami roślinności trawy darniowej poddanej obróbce. Metoda ta dostarcza bardziej odpowiednich danych dotyczących spożycia pestycydów niezwiązanych z dietą, ponieważ kontakt ręka-usta jest powszechnym procesem związanym z tą drogą narażenia.
Dynamika koron drzew trawy darniowej różni się znacznie między gatunkami i miejscami użytkowania. Gatunki zwykle różnią się pod względem pokroju i pory wzrostu, a także tekstury i gęstości ostrzy, co wpływa na przechwytywanie oprysków pestycydami i procesy fizjologiczne3,13. Dane wejściowe zarządzania mogą się znacznie różnić w zależności od lokacji użycia i w obrębie lokacji użycia w zależności od oczekiwań specyficznych dla lokacji. Na przykład trawa bermudzka (Cynodon spp.) jest wykorzystywana w dostosowanym klimacie jako pole golfowe, na którym zwykle nawadnia się i kosi >5 razy w tygodniu (zebrane ścinki) na wysokości od 0,3 do 0,4 cm, a także jako nienawadnianą roślinę okrywową, którą można kosić <1 razy w tygodniu (zwracane ścinki) na wysokości od 1,5 do 6,3 cm. Wcześniejsze badania wykazały, że przenoszone dolistne pozostałości pestycydów mogą się różnić w zależności od gatunku w obrębie miejsca użytkowania i mają na nie wpływ praktyki nawadniania i koszenia14,15. Ostatecznie, zmienność między systemami traw darniowych hamuje wdrożenie uniwersalnej metody ilościowego określania przepuszczalnych pozostałości pestycydów dolistnych. W związku z tym wybór metod w celu optymalizacji oceny ryzyka dla ludzi powinien obejmować kryteria specyficzne dla pestycydów, procesów, miejsc i gatunków. Celem pracy było scharakteryzowanie różnych metod stosowanych do ilościowego oznaczania przepuszczalnych pozostałości pestycydów w listach oraz wskazanie warunków, które powinny być brane pod uwagę przy wyborze metody do danego eksperymentu.

<table><tbody><tr><td>General</strong</td><td>>---</td><td>---</td><td></td></tr><tr><td>Rękawice nitrylowe</td><td>Dowolne</td><td></td> chłodnice NA <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Farba do murawy</td><td>Dowolna</td><td>NA</td> Sprzęt do pomiaru terenu Dowolna NA <td></td></tr><tr><td>Odzież ochronna na stopy</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Whatman 3 MM Chr Bibuła chromatograficzna</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-716-3E</td><td></td></tr><tr><td><silna>Nazwa</td><td>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td></td></tr><tr><td>Ball roll</td><td>------</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rura PVC (5 cm średnica wewnętrzna)</td><td>Home Depot</td><td>531137</td><td></td></tr><tr><td>Piła do metalu do cięcia PCV</td><td>Dowolna</td><td>Kolano NA</td><td></td></tr><tr><td>90&deg (średnica wewnętrzna 5 cm)</td><td>Home Depot</td><td>RCE-2000-S</td><td></td></tr><tr><td>Łącznik trójnikowy (średnica wewnętrzna 5 cm)</td><td>Home Depot</td><td>PVC024001600HD</td><td></td></tr><tr><td>klej PVC</td><td>Dowolna</td><td>śruba</td> do drewna NA <td></td></tr><tr><td>(średnica 0,6 cm na 7 cm długość)</td><td>Piłka nożna Home Depot</td><td>801366</td><td></td></tr><tr><td>rozmiar 4</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Manometr</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Ręczna pompa powietrza</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki do tkanin</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Scott Rags-In-A-Box</td><td>Taśma klejąca Uline</td><td>S-12809</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Dowolna</td><td>zamykana</td> szklana łódź NA <td></td></tr><tr><td>8 uncji</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><<tr><td>silny>Nazwa</silny></td><td><mocny>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td></td></tr><tr><td>Chusteczka do rąk</mocna></td><td>---</td><td>---</td><td></td></tr><tr><td>100% bawełniane rękawice inspekcyjne o dużej gramaturze</td><td>Uline</td><td>S-19284</td><td></td></tr><tr><td>Aparat cyfrowy</td><td>Dowolne</td> oprogramowanie <td>NA</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>National Institutes of Health</td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td><td></td></tr><tr><td>Cyfrowa waga o wadze do 400 g</td><td>Dowolny</td><td></td> stoper NA <td></td></tr><tr><td></td><td>Dowolna</td><td>plastikowa</td> wiaderko NA <td></td></tr><tr><td>(średnica 23 cm)</td><td>Home Depot</td><td>209313</td><td></td></tr><tr><td>16 uncji zamykany szklany słoik</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><<tr><td>silny>Nazwa</silny><</td><td>silny>Firma</silny></td><td><silny>Numer katalogowy</silny></td><td></td></tr><tr><td><mocny>Zmodyfikowany wałek kalifornijski</strong</td><td>>---</td><td>---Metalowy</td><td></td></tr> <tr><td>przewód (średnica 1,25 cm i długość 1,8 m)</td><td>Home Depot</td><td>101543</td><td></td></tr><tr><td>rura PVC (średnica wewnętrzna 10 cm)</td><td>Home Depot</td><td>531103</td><td></td></tr><tr><td>Piasek + pręt, aby doprowadzić wałek do 14,5 kg</td><td>Dowolna</td> wtyczka PVC <td>NA</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Home Depot</td><td>33403D</td><td></td></tr><tr><td>Arkusz pianki poliuretanowej (o grubości 1,25 cm) do pokrycia rury PVC</td><td>Dowolna</td><td>plastik</td> malarski NA <td></td></tr><tr><td>6 mm</td><td>Dowolna</td><td></td> płyta z pleksi NA <td></td></tr><tr><td>(107 cm długości na 76 cm szerokości i 0,6 cm grubości)</td><td>Dowolne</td><td>NA</td><td></td></tr><tr>Dowolne<td>zaciski przegubowe</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Metalowe gwoździe (o długości od 10 do 15 cm) do mocowania ramy do podłoża</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Prześcieradła 100% bawełny (>200 nici)</td><td>Dowolna</td><td></td> pęseta NA <td></td></tr><tr><td></td><td>Dowolny</td><td></td> zamykany szklany słoik NA <td></td></tr><tr><td>32 uncje</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><<tr><td>silna>Nazwa</td><td>Company<</td><td>strong>Numer katalogowy</td><td></td></tr><tr><td>kolekcja rdzeni roślinności trawy darniowej</td><td>---</td><td>---</td><td></td></tr> <tr><td>Nóż do kubków na polu golfowym z dźwignią</td> Par <td>Aide Product Company</td><td>1001-1</td><td></td></tr><tr><td>Nóż</td><td>Dowolna</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Fiskars Nożyczki do ziół</td><td>Home Depot</td><td>96086966J</td><td></td></tr><tr><td>Plastikowy pojemnik na zatyczkę do murawy</td><td>Dowolny</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

protokoły ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej

Protocols for Quantifying Transferable Pesticide Residues in Turfgrass Systems

Korony roślin w istniejących systemach traw darniowych mogą przechwycić znaczną ilość rozpylonych pestycydów, które mogą być przenoszone różnymi drogami na ludzi. Z tego powodu do rejestracji i ponownej rejestracji przez Agencję Ochrony Środowiska Stanów Zjednoczonych (USEPA) wymagane są eksperymenty z pozostałościami pestycydów, które można przekazać. Chociaż takie eksperymenty są wymagane, wymagana jest ograniczona specyficzność w odniesieniu do podejścia eksperymentalnego. Przedstawiono podejścia eksperymentalne stosowane do oceny przenoszenia pestycydów na ludzi, w tym wycieranie rąk bawełnianymi rękawiczkami, zmodyfikowany wałek kalifornijski (przesuwanie wałka o znanej masie po tkaninie bawełnianej) i toczenie piłki nożnej (piłka owinięta paskiem sorbentu) po trzech traktowanych gatunkach traw darniowych (pełzająca trawa gięta, hybrydowa trawa bermudzka i kostrzewa wysoka utrzymywana odpowiednio na wysokości 0,4, 5 i 9 cm). Zmodyfikowany walec kalifornijski jest obecnie najszerzej stosowanym podejściem i najlepiej nadaje się do stosowania na niskich wysokościach koszenia ze względu na swoją powtarzalność i dużą powierzchnię pobierania próbek. Rolka piłki nożnej jest mniej agresywnym podejściem do transferu; Jednak naśladuje bardzo powszechne zjawisko w najpopularniejszym sporcie międzynarodowym i ma wiele implikacji dla narażenia na pestycydy niedietetyczne w wyniku kontaktu z ustami. Dodatkowo podejście to można dostosować do innych aktywności sportowych z ograniczoną modyfikacją. Wycieranie ręczne jest najlepszym podejściem do przenoszenia pestycydów na wyższych wysokościach koszenia, ponieważ podejścia oparte na rolkach mogą nakładać ostrza; Jest to jednak bardziej subiektywne ze względu na bardziej zmienne ciśnienie próbkowania. Przedstawiono użyteczność tych metod w odniesieniu do różnych gatunków traw darniowych oraz omówiono dodatkowe kwestie dotyczące prowadzenia badań nad przenoszonymi pozostałościami pestycydów w systemach traw darniowych.

Opierając się na wcześniejszych badaniach porównujących transferowalne metody oznaczania pozostałości pestycydów w obrębie jednego systemu trawnika oraz systemy trawników w obrębie jednej transferowalnej metody oznaczania pozostałości pestycydów, przeprowadzono badanie polowe (rozpoczęte 24 maja 2016 r. w Raleigh, Karolina Północna, USA) w celu porównania metod w różnych systemach trawników. W skrócie, ilościowo oznaczono transfer 2,4-D, szerkokrotniego herbicydu powszechnie stosowanego w...

Eksperymenty z pozostałościami pestycydów w systemach trawiastych są integralnymi składnikami oceny ryzyka dla ludzi. Eksperymentalne podejścia do pomiaru pozostałości zbywalnych powinny być dostosowane do interakcji człowieka będącej przedmiotem zainteresowania oraz dynamiki systemu traw darniowych. Przedstawiono trzy protokoły dotyczące pozostałości pestycydów i omówiono ich przydatność w trzech systemach traw darniowych.

Protokoły ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej

Plant canopies in established turfgrass systems can intercept an appreciable amount of sprayed pesticides, which can be transferred through various routes ...

Ogólnym celem niniejszych protokołów jest ilościowe określenie pozostałości pestycydów przenoszących się z drzew na roślinność trawiastą. Metody te mogą pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania dotyczące bezpieczeństwa publicznego w kontekście stosowania pestycydów, a także w podejmowaniu decyzji regulacyjnych i optymalizacji praktyk użytkowników w dziedzinie agrochemii. Protokoły te posiadają unikalne cechy, które sprawiają, że są one w różnym stopniu odpowiednie dla różnych systemów trawiastych.Badacze powinni zrozumieć to zagadnienie przed przystąpieniem do eksperymentów, aby jak najdokładniej przewidzieć ekspozycję ludzi na pestycydy. Wybór przenoszalnego protokołu badania pozostałości pestycydów powinien obejmować drogę narażenia oraz interesujące badacza systemy trawników, aby najlepiej określić potencjalną ekspozycję ludzi. Dzięki temu możliwe będzie podejmowanie świadomych decyzji opartych na rzetelnych badaniach w zakresie stosowania pestycydów w systemach trawników.W przypadku tych protokołów działki doświadczalne powinny obejmować alejki o szerokości od połowy do jednego metra wzdłuż ich granic, aby umożliwić przemieszczanie się i pobieranie próbek. Aby pobrać próbki pozostałości z roślin za pomocą ręcznych wymazów, należy najpierw zestandaryzować obszar wymazu, korzystając z powierzchni testowej. Przygotuj 10% roztwór zielonego barwnika spożywczego oraz 1% roztwór niejonowego surfaktantu.Następnie rozpyl roztwór na nieporowatą powierzchnię. Teraz, używając bawełnianych rękawiczek, dociśnij palce do nieporowatej powierzchni. Następnie wykonaj zdjęcie cyfrowe i użyj programu do analizy obrazu, aby obliczyć powierzchnię styku na podstawie braku zielonego barwnika spożywczego w tym obszarze.Na podstawie powierzchni kontaktu dłoni z powierzchnią oblicz nacisk potrzebny do przetarcia tej samej powierzchni z użyciem dwóch kilopaskali. Następnie skalibruj nacisk przecierania za pomocą wagi cyfrowej. Przymocuj darń do wagi i dociśnij z wymaganą siłą, która zazwyczaj wynosi od 150 do 300 gramów.Następnie należy skalibrować prędkość przecierania. Odmierz 30 centymetrów darni i dostosuj prędkość przecierania tak, aby pokonanie tego dystansu zajęło około jednej sekundy. W ten sposób technika przecierania zostaje ustandaryzowana.Przed pobraniem próbki należy wyznaczyć obszar próbkowania, zaznaczając jego obrys farbą do trawy. Następnie należy przetrzeć obszar próbkowania bawełnianą rękawiczką założoną na rękawiczkę nitrylową. Przecieranie należy prowadzić przez 30 sekund, wykonując ruchy posuwisto-zwrotne, zmieniając kierunki prostopadle.Następnie powtórz ten proces na tym samym obszarze, używając drugiej bawełnianej rękawiczki. Po zakończeniu przecierania zamroź rękawiczkę do pobierania próbek w ciągu trzech godzin. Następnie przechowuj bawełniane rękawiczki w szklanym słoiku na lodzie lub w suchym lodzie.Na podstawie wstępnych prób pobrania próbek z obszaru o powierzchni 420 cm² uznano, że konieczne są dwie pary rękawic do pobierania próbek. W przypadku pobierania próbek z większego obszaru mogą być potrzebne dodatkowe rękawice. Procedura ta wymaga udziału trzech osób.Wałek ma 10 centymetrów średnicy, 61 metrów długości i waży 14,5 kilograma. Wałek jest otoczony pianką poliuretanową o grubości 1,2 centymetra. Przed użyciem należy owinąć piankę folią plastikową.Wałek jest toczony w ramie o szerokości 62 cm i długości 91 cm. Do ramy należy przymocować za pomocą zacisków bawełnianą tkaninę o wymiarach 70 na 99 cm i gęstości splotu co najmniej 200 nici na cal. W ten sposób tkanina bawełniana styka się z obszarem pobierania próbek darni.Następnie ramę mocuje się do podłoża za pomocą metalowych gwoździ. Następnie należy delikatnie przetoczyć wałek po materiale w przód i w tył pięć razy. Należy zachować prędkość toczenia 1.6 kilometers per hour.Po zakończeniu rolowania przez jedną osobę, dwie kolejne podnoszą ramkę z podłoża. Gdy arkusz jest przymocowany do ramki, trzecia osoba powinna delikatnie usunąć wszelkie zanieczyszczenia z bawełny. Następnie należy zdjąć arkusz z ramki i złożyć go do wewnątrz w taki sposób, aby obszary kontaktu z próbką stykały się ze sobą.Przechowywać arkusz w lodzie. Musi on zostać zamrożony w ciągu trzech godzin. Po pobraniu próbki należy zdjąć plastik z wałka.Następnie należy oczyścić sprzęt do pobierania próbek 50% roztworem amoniaku w wodzie, a następnie wypłukać go wodą. Przed ponownym użyciem należy pozostawić narzędzia do wyschnięcia. Procedurę tę można przeprowadzić samodzielnie; wymaga ona ramy do wałka do piłek nożnych, wykonanej z rury PVC.Aby wykonać wałek z piłką, napompuj piłkę nożną do ciśnienia 24 kilopascals, tak aby była stosunkowo płaska. Następnie zamocuj piłkę do wałka, zabezpieczając ją śrubami ciesielskimi po przeciwnych stronach. Piłka powinna obracać się symetrycznie i nie powinna przemieszczać się pod wpływem lekkiego nacisku.Po upewnieniu się, że jest stabilna, owiń kulę pasem sorpcyjnym o szerokości 5 cm i długości 130 cm. Owinięty obszar powinien być wyrównany z uchwytem wałka. Przymocuj pas do kuli za pomocą kawałków taśmy klejącej o powierzchni około 2,5 cm².Aby pobrać próbkę, należy przetoczyć kulę przez 3.7 metrów trawy ze stałą prędkością, uważając, aby nie nadepnąć na żaden obszar pobierania, z którego nie pobrano jeszcze próbki. W zależności od wymiarów działki konieczne może być wykonanie kilku równoległych przejazdów. Badania wstępne powinny pomóc w określeniu odpowiedniego dystansu przetoczenia kuli, aby nie przekroczyć pojemności absorpcyjnej paska.Po przetoczeniu kuleczki należy wyjąć pasek sorbentu i złożyć go do wewnątrz tak, aby strona z próbką stykała się ze sobą. Następnie należy przenieść go do szklanego słoika w lodzie i zamrozić w ciągu trzech godzin od pobrania. Pobierz rdzeń darni w celu kontroli jakości próbkowania.Najpierw wyznacz obszar do pobrania próbki za pomocą wycinaka do dołków golfowych, zagłębiając go w glebie na głębokość od pięciu do siedmiu i pół centymetrów. Następnie wsuń długi nóż pod kątem w glebę i wyjmij rdzeń z ziemi. Staraj się zapobiegać kontaktowi z pobieraną roślinnością, w tym za pomocą noża używanego do jej zbierania.Następnie ostrożnie usuń dolną warstwę gleby z próbki rdzeniowej za pomocą nożyczek. Po czym delikatnie umieść wkład w pojemniku na próbki w taki sposób, aby źdźbła trawy nie stykały się ze ściankami pojemnika. Krople wilgoci z korony roślin mogą zawierać pozostałości pestycydów, które w przypadku wstrząśnięcia rdzeniem mogą przedostać się z roślinności do gleby, szczególnie w godzinach porannych.Z tego powodu badacze powinni zachować szczególną ostrożność podczas pobierania i późniejszego obchodzenia się z próbkami. Działki traw trawnikowych zostały potraktowane herbicydem przeciwko chwastom szerokolistnym 2, 4-D w dawce jednego kilograma substancji czynnej na hektar. Poddano zabiegowi trzy gatunki traw trawnikowych, a w przypadku każdego z nich zastosowano trzy opisane metody pobierania próbek.Próbki pobierano w czterech punktach czasowych po zastosowaniu herbicydu, a następnie porównano je z masą zastosowanego herbicydu. Pierwsze punkty czasowe pobierania próbek przypadały bezpośrednio po aplikacji oraz jedną godzinę po aplikacji. Następnie pobieranie próbek przeprowadzono jeden dzień po zastosowaniu herbicydu, a na koniec trzy dni po zastosowaniu herbicydu.Stwierdzono, że wycieranie dłonią spowodowało usunięcie największej proporcji naniesionego 2, 4-D. Z kolei pobieranie próbek metodą toczenia kulek zazwyczaj powodowało usunięcie najmniejszej ilości herbicydu. Ze względu na zróżnicowaną dynamikę okrywy roślinnej, różne gatunki traw darńowych przeniosły odmienne ilości herbicydu.W szczególności, przy zastosowaniu metod pobierania próbek za pomocą wałka, oba gatunki traw o grubszych liściach uwolniły mniej herbicydu. Może to wynikać częściowo z ograniczonego kontaktu materiału sorbentu z trawą, spowodowanego kładzeniem się źdźbeł trawy. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dobrą wiedzę na temat przeprowadzania różnych protokołów ilościowego oznaczania transferowalnych pozostałości pestycydów w systemach trawnikowych.

protocols-for-quantifying-transferable-pesticide-residues-turfgrass

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

Ten artykuł opisuje projekt, budowę i funkcję obiektu o powierzchni 1 000m2 zawierającego 24 indywidualne działki polowe o powierzchni 33,6m2 wyposażone do pomiaru całkowitej objętości spływu z czasem i pobierania podpróbek spływu w wybranych odstępach czasu w celu ilościowego określenia składników chemicznych w wodzie spływającej z symulowanych trawników domowych.

Projekt i budowa Zakładu Badań Spływów Miejskich

Lizymetria terenowa i pobieranie próbek wody porowej pozwalają badaczom ocenić los substancji chemicznych stosowanych w glebach i ustalonej roślinności. Celem tego protokołu jest zademonstrowanie, w jaki sposób zainstalować wymagane oprzyrządowanie i pobrać próbki do analizy chemicznej podczas zintegrowanych eksperymentów z lizymetrią polową i pobieraniem próbek wody porowej.

Zintegrowana lizymetria polowa i pobieranie próbek wody porowej w celu oceny mobilności chemicznej w glebach i zastanej roślinności

Przedstawiono solidne i elastyczne podejście do potwierdzania odporności na herbicydy w populacjach chwastów. Protokół ten pozwala na określenie poziomów odporności na herbicydy i zastosowanie ich do szerokiej gamy gatunków chwastów i herbicydów z niewielkimi dostosowaniami.

Protokoły solidnych testów odporności na herbicydy u różnych gatunków chwastów

Ten manuskrypt opisuje, jak tempo metabolizmu herbicydów może być skutecznie określone ilościowo za pomocą wyciętych liści z chwastów dwuliściennych, zmniejszając w ten sposób zmienność i usuwając wszelkie możliwe zakłócające efekty pobierania lub translokacji herbicydów, zwykle obserwowane w testach na całej roślinie.

Pomiar tempa metabolizmu herbicydów w chwastach dwuskrzydłowych za pomocą testu wyciętych liści

Przedstawiono protokół dotyczący charakterystyki i zastosowania pięciu różnych pasywnych urządzeń do próbkowania.

Charakterystyka i zastosowanie próbników pasywnych do monitorowania pestycydów w wodzie

Ten artykuł podsumowuje cechy projektu i skuteczność systemów uzdatniania, które oczyszczają wodę deszczową z miast i spływy irygacyjne z rolnictwa w celu usunięcia pestycydów i innych zanieczyszczeń związanych z toksycznością dla środowiska wodnego.

Roślinne systemy uzdatniania do usuwania zanieczyszczeń związanych z toksycznością wód powierzchniowych w rolnictwie i spływach miejskich

Produkty na bazie glifosatu (GBP) są najpopularniejszymi herbicydami o szerokim spektrum działania na świecie. W tym artykule przedstawiamy ogólne wytyczne dotyczące ilościowego określania wpływu GBP na mikrobiomy, od eksperymentów terenowych po analizy bioinformatyczne.

Kwantyfikacja potencjalnego wpływu produktów na bazie glifosatu na mikrobiomy

Prezentowany tutaj jest protokół do określania absorpcji, translokacji i dystrybucji imidakloprydu w pszenicy w warunkach hydroponicznych przy użyciu chromatografii cieczowej z tandemową spektrometrią mas (LC-MS-MS). Wyniki pokazały, że imidaklopryd może być wchłaniany przez pszenicę, a imidaklopryd wykryto zarówno w korzeniach, jak i liściach pszenicy.

Oznaczanie absorpcji, translokacji i dystrybucji imidakloprydu w pszenicy

Obecny protokół opisuje wykorzystanie mrówczanu amonu do podziału faz w QuEChERS, wraz z chromatografią gazową i spektrometrią mas, do skutecznego określania pozostałości pestycydów chloroorganicznych w próbce gleby.

Analiza pestycydów chloroorganicznych w próbce gleby za pomocą zmodyfikowanego podejścia QuEChERS z wykorzystaniem mrówczanu amonu

Protokół opisuje nową metodę oceny całkowitej cytotoksyczności metabolitów triazolowych pestycydów w roślinach.

Ocena cytotoksyczności metabolitów typowych pestycydów triazolowych w roślinach

Niniejszy protokół opisuje analizę wieloklasowych pozostałości pestycydów w odmianach awokado przy użyciu metody Qu ick-Easy-Ch eap-E effective-R ugged-S afe (QuEChERS) z mrówczanem amonu, a następnie chromatografii gazowej i tandemowej spektrometrii mas.

Oznaczanie 45 pestycydów w odmianach awokado metodą QuEChERS i chromatografią gazową ze spektrometrią mas w tandemie

Poznaj metody ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej. Protokoły te pomagają oceniać ryzyko ekspozycji człowieka na pestycydy i wspierają decyzje regulacyjne w ochronie zdrowia publicznego.

Protokoły ilościowego oznaczania przenoszalnych pozostałości pestycydów w systemach trawy darniowej

Przeglądaj więcej filmów