11 czerwca 2017
Ogólnym celem tej procedury eksperymentalnej jest ocena wpływu środków znieczulających na mózg noworodka w klinicznie istotnym modelu translacyjnym prosiąt. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie neurotoksyczności wywołanej znieczuleniem, takie jak sposób zachodzenia toksyczności i zmiany rozwojowe, które towarzyszą takiej toksyczności. Główną zaletą tej techniki jest to, że zapewnia ona translacyjnie istotny model zwierzęcy do badania neurotoksyczności rozwojowej wywołanej znieczuleniem, w której fizjologiczna homeostaza jest utrzymywana przez cały okres eksperymentów.
Podczas indukcji znieczulenia i przez cały czas trwania zabiegu należy monitorować: pulsoksymetrię, nieinwazyjne ciśnienie krwi, elektrokardiografię i temperaturę. Najważniejszym krokiem podczas tej procedury jest utrzymanie fizjologicznej homeostazy. Obejmuje to monitorowanie, zarządzanie temperaturą, wentylację mechaniczną i analizę biochemiczną krwi.
Aby przygotować prosię do operacji, najpierw umieść obwodowy cewnik dożylny o rozmiarze 24 w żyle ucha brzeżnego. Ogrzej prosię podgrzanym wymuszonym powietrzem. Monitoruj jego temperaturę za pomocą termometru doodbytniczego i w sposób ciągły podawaj płyn izotoniczny zawierający dekstrozę w tempie konserwacji.
Następnie umieść prosię w pozycji grzbietowej leżącej w celu intubacji tchawicy. Następnie spryskaj struny głosowe 0,5 mililitra 2% lidokainy, aby zapobiec skurczom podczas intubacji, a następnie wsuń trzymilimetrową rurkę tchawicy z mankietem do tchawicy. Zabezpiecz rurkę, a następnie sprawdź, czy nie ma obustronnych dźwięków oddechu za pomocą osłuchiwania klatki piersiowej za pomocą stetoskopu i sprawdź, czy nie ma trwałego końcowego dwutlenku węgla w oddechu.
Następnie nałóż maść okulistyczną na oczy. Tuż przed rozpoczęciem operacji należy podać antybiotyk o szerokim spektrum działania przez obwodową linię dożylną, aby zapobiec zakażeniu miejsca operowanego. Teraz wysterylizuj obie pachwiny za pomocą co najmniej dwóch peelingów z chlorheksydyną, aby zapewnić odpowiednie sterylne pole.
Poproś personel chirurgii o noszenie czepek, masek, rękawiczek i ochrony oczu. Następnie udrapuj zwierzę. Na początek zbadaj palpacyjnie tętno udowe w zgięciu pachwinowym.
A następnie za pomocą skalpela wykonaj powierzchowne 1,5-centymetrowe nacięcie czaszkowo-ogonowe. Następnie wykonaj rozwarstwienie między dwiema głowami mięśnia gracilis. Teraz zlokalizuj pęczek nerwowo-naczyniowy kości udowej.
Zazwyczaj znajduje się między dwoma mięśniami. Następnie za pomocą pętli naczyniowych lub jedwabnych opasek odizoluj tętnicę na bliższym i dalszym końcu. Następnie, za pomocą pętli na bliższym końcu, pociągnij tętnicę do poziomu skóry dystalnie i nałóż nacisk na proksymalny krawat, aby przerwać przepływ krwi.
Utrzymując przyczepność, użyj nożyczek do tenotomii, aby wykonać małą arteriotomię. Następnie wsuń cewnik lub rurkę polietylenową bezpośrednio do naczynia. Należy natychmiast zaobserwować powrót krwi.
Teraz natychmiast podłącz i zabezpiecz cewnik podłączony do przetwornika ciśnienia. Następnie przykryj ukończone nacięcie sterylną gazą i przepłucz cewnik zwykłą solą fizjologiczną. Przez cały czas ekspozycji na środek znieczulający monitoruj parametry życiowe prosiąt
.Szukaj perturbacji, które mogą wskazywać na niedociśnienie, arytmię, hipotermię lub hipertermię lub niedotlenienie. Co najmniej raz na godzinę podczas eksperymentu należy pobrać próbkę krwi tętniczej z cewnika do tętnicy udowej. Następnie użyj zautomatyzowanego systemu analizy, aby pobrać wartości krwi z próbki.
Po odpowiedniej ekspozycji na środek znieczulający należy usunąć cewnik do tętnicy udowej i ostrożnie zawiązać proksymalny szew jedwabny naczyniowy, aby trwale zamknąć tętnicę udową i zapobiec krwawieniu. Następnie przepłucz nacięcie 10 do 20 mililitrami soli fizjologicznej, aby zapobiec infekcji. Po potwierdzeniu całkowitej hemostazy zamknij nacięcie za pomocą jedwabnego szwu 3-0 w prostym przerywanym wzorze.
Teraz naciekaj ranę bupiwakainą i epinefryną w celu kontroli bólu. Następnie pokryj nacięcie sterylnym chirurgicznym klejem do skóry, odstaw znieczulenie i pozwól prosięciu się obudzić. Przebadano 40 prosiąt płci męskiej.
Pomiędzy grupą kontrolną a eksperymentalną nie stwierdzono istotnej różnicy w odniesieniu do ich wieku czy masy ciała. Wszyscy byli kompleksowo monitorowani podczas zabiegu i wszyscy dobrze go tolerowali. Średnie wyniki laboratoryjne uzyskane podczas eksperymentów w grupie izofluranów ilustrują wewnętrzną spójność i odtwarzalność procedury.
Spójność zaobserwowano w ciągu dwóch lat z danymi zebranymi od różnych operatorów. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak używać fizjologicznie odpowiedniego translacyjnego modelu prosiąt, aby odpowiedzieć na prawie każde przedkliniczne pytanie dotyczące badań pediatrycznych. Nie zapominaj, że praca ze środkami znieczulającymi może być niebezpieczna, a podczas wykonywania tej procedury należy zawsze podejmować środki ostrożności, takie jak odpowiednie oczyszczanie gazów znieczulających.
Niniejsze badanie analizuje wpływ środków znieczulających na mózg noworodka z wykorzystaniem klinicznie istotnego modelu prosięcia. Celem badań jest zrozumienie indukowanej przez anestezję neurotoksyczności rozwojowej oraz jej implikacji dla anestezjologii pediatrycznej.
Model prosiąt stanowi istotny translacyjnie system do oceny neurotoksyczności rozwojowej indukowanej anestetykami, wypełniając krytyczną lukę w przedklinicznej ocenie bezpieczeństwa pediatrycznego. Dzięki utrzymaniu homeostazy fizjologicznej w trakcie eksperymentów, model ten umożliwia wiarygodne badanie mechanizmów wpływu środków znieczulających na rozwijający się mózg. Wspiera to predykcyjne ograniczanie ryzyka we wczesnej fazie odkrywania leków poprzez wyjaśnianie szlaków biologicznych powiązanych z wynikami neurorozwojowymi, co dostarcza informacji niezbędnych do podejmowania decyzji o kontynuacji lub przerwaniu prac nad związkami aktywnymi w obrębie OUN.
Metoda ta integruje się z wczesnymi etapami procesów odkrywania leków, umożliwiając testowanie hipotez dotyczących związków anestetycznych w fizjologicznie stabilnym modelu noworodkowym, co bezpośrednio wspiera identyfikację wiodących kandydatów na leki poprzez mechanistyczne ograniczanie ryzyka.