RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/55306-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Ten protokół opisuje użycie wymazów z miski olejowej i analizy osadu w systemach danio pręgowanego, co prowadzi do zwiększenia wykrywalności w porównaniu do samego użycia wartowników do wykrywania patogenów, takich jak Aeromonas hydrophila, Mycobacterium spp. i Pseudocapillaria tomentosa. Zaproponowano również system monitorowania jaj P. tomentosa w kwarantannie.
Ogólnym celem tej techniki pobierania próbek jest zmniejszenie liczby ryb wykorzystywanych do monitorowania stanu zdrowia oraz optymalizacja obrotu, kosztów i czułości wykrywania patogenów, w tym podczas kontroli importu w kwarantannie. Technika ta pomaga określić statut zdrowotny kolonii schronienia. Ta metoda jest przydatnym narzędziem podczas odczytywania lub oceny skuteczności leczenia.
Jedną z głównych zalet tej techniki jest kontrola i klasyfikacja importów przebywających w kwarantannie. Wzmacnia on plan bioasekuracji obiektu wodnego. Aby rozpocząć protokół, wyjmij czysty ośmiolitrowy zbiornik z systemu recyrkulacyjnego.
Napełnij zbiornik około ośmioma litrami wody pochodzącej ze studzienek. Dodaj dwie ceramiczne kulki lub kostki gąbkowe biomediów z systemów do przesiewania. Następnie dodaj jedną, aby zrobić Danio rerio na litr, używając ryb typu dzikiego o dominującym tle genetycznym w obiekcie, na przykład A B. Wybierz co najmniej sześć ryb.
Karm ryby raz dziennie. Zmieniaj diety, aby upewnić się, że wartowniki są narażone na wszystkie diety stosowane w obiekcie dla danio pręgowanego. Aby przeprowadzić podmianę wody, przenieś wartowniki w biopożywkach do tymczasowego zbiornika.
Całkowicie opróżnij zbiornik wartowniczy i wyczyść go. Napełnij zbiornik wartowniczy tylko wodą ze studzienki i umieść strażniki i biomedia z powrotem. Po wystawieniu wartowników na działanie wody miejskiej przez cztery miesiące, należy poddać ryby eutanazji za pomocą zatwierdzonej metody, takiej jak zanurzenie w roztworze 2-fenoksyetanolu w przypadku przedawkowania.
Aby potwierdzić śmierć, odczekaj dziesięć minut po ustaniu ruchu wieczka. Chwyć zwłoki kleszczami i zamroź je w całości w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza w zidentyfikowanym pojemniku. Przygotuj sterylny suchy wacik z plastikowym trzonkiem i załóż rękawiczki.
Zlokalizuj powierzchnię do wymazania. Wybierz powierzchnię studzienki o niskim przepływie, ścianę studzienki na powierzchni wody i usuń wszelkie przedmioty uniemożliwiające łatwy dostęp do powierzchni. Następnie wyjmij wacik, zdejmując opakowanie zewnętrzne i wystawij sterylną bawełnianą końcówkę na działanie powietrza.
Przetrzyj ścianę studzienki na głębokości od pięciu do 10 centymetrów, aby wchłonąć wodę i biofilm na poziomie powierzchni wody studzienki. Następnie schowaj wacik z powrotem lub rozbij końcówkę w sterylnej probówce wirówkowej. Oznacz próbkę i wyślij ją do testu PCR lub zamroź w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza.
Aby przeprowadzić analizę osadu za pomocą mikroskopii, użyj 60-mililitrowej strzykawki, aby zassać osad na dnie studzienki. Podziel próbkę na 15-mililitrowe probówki. Przykręć nakrętki i oznacz rurki.
Odwiruj 15-mililitrowe probówki przy 175 do 250 razy większej grawitacji przez dziesięć minut w wirówce z wahadłowymi wiadrami. Zdekantować probówki. Po dekantacji zachowaj osady.
Następnie przygotuj roztwór nasycony cukrem, mieszając 227 gramów cukru pudru i 177 mililitrów gorącej wody za pomocą mieszadła magnetycznego. Napełnij rurki do połowy roztworem nasyconym cukrem. Zakręć nakrętki i dokładnie wymieszaj osad z roztworem.
Umieść probówki w obrotowych wiadrach wirówki i napełnij je do góry roztworem nasyconym cukrem. Delikatnie umieść jedną szklankę nakrywkową na wierzchu każdej probówki, tak aby stykała się z roztworem nasyconym cukrem. Należy pamiętać, że cztery probówki na każdą próbkę o pojemności 60 mililitrów są na wypadek, gdyby niektóre szkła nakrywkowe spadły i pękły podczas wirowania.
Po zakończeniu wirowania podnieś szkiełko nakrywkowe i umieść je na szklanym szkiełku, a następnie oznacz szkiełko ołówkiem lub markerem. W przypadku wystąpienia zbyt wielu pęknięć szkła nakrywkowego, napełnij większość probówki roztworem nasyconym cukrem i odwiruj probówkę. Napełnij do góry roztworem nasyconym cukrem, a następnie delikatnie ustaw szklankę nakrywkową i odczekaj 30 minut.
Poszukaj jaj pseudocapillaria tomentosa pod mikroskopem. Zidentyfikuj wtyczki bipolarne przy powiększeniu 400X. Aby przebadać importowane zwierzęta w kwarantannie pod kątem jaj P.tomentosa, umieść samca i samicę Danio rerio w zbiorniku i dodaj tacę tarłową w zbiorniku, ale użyj jej tutaj do zbierania kału.
Po tygodniu wyjmij urządzenie hodowlane i zbierz zebrany osad w urządzeniu hodowlanym, jak opisano wcześniej. Zassać osad z dna zbiornika lub studzienki za pomocą 60-mililitrowej strzykawki i przenieść próbkę do 60-mililitrowej probówki. Zamknij rurkę zakręcaną górną częścią i oznacz rurkę.
Wyrzucić strzykawkę. Wstrząśnij 60-mililitrową tubką i przenieś 15 mililitrów do 15-mililitrowej tubki. Zamknij rurkę zakręcaną górną częścią i oznacz rurkę.
Odwiruj 15-mililitrową probówkę przy 175 do 250 razy większej grawitacji przez dziesięć minut w wirówce z wahadłowymi wiadrami. Zdekantować probówki i utrzymać osad w probówce. Wyjmij wacik, zdejmując opakowanie zewnętrzne i wystawij sterylną bawełnianą końcówkę na działanie powietrza.
Wymaz osad w probówce przez 15 sekund. Schowaj wacik z powrotem lub rozbij końcówkę w sterylnej probówce wirówkowej. Oznacz próbkę.
Zamrozić w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza i wysłać do testu PCR. Stosując metodę wymazu z miski olejowej na 115 badanych rybach, Mycobaterium chelonae wykryto w pięciu procentach, a Mycobaterium haemophilum wykryto w trzech procentach próbek i były to jedyne zidentyfikowane gatunki chorobotwórcze. Z tych samych systemów 49 wymazów z miski olejowej ujawniło obecność pięciu gatunków Mycobaterii.
Iloraz szans pokazuje, że technika wymazu z miski olejowej jest cenną alternatywą dla wyłącznego stosowania strażników do badań przesiewowych danio pręgowanego na obecność prątków. Próbki środowiskowe wykorzystano również do badań przesiewowych na obecność Aeromonas hydrophila, które wykryto w próbkach ryb, szlamu i powierzchni, co potwierdza zdolność proponowanych technik do badania biotopu ryb. Mycobacterium chelonae i Mycobacterium fortuitum są częściej wykrywane za pomocą PCR w wymazach z miski olejowej niż w próbce ryb.
Po opanowaniu pobieranie próbek zajmuje tylko kilka minut, a wykrycie jaj pseudocapillaria tomentosa można przeprowadzić w ciągu godziny. Ta technika sprawia, że badania przesiewowe w środowisku są kluczową częścią rutynowego programu monitorowania stanu zdrowia. Metody te mogą pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie patologii ryb, takie jak związek między biofilmem bakteryjnym a infekcją bakteryjną.
Related Videos
10:45
Related Videos
15.2K Views
10:38
Related Videos
11K Views
08:33
Related Videos
11.8K Views
07:00
Related Videos
11.3K Views
07:49
Related Videos
11.6K Views
07:06
Related Videos
6.6K Views
09:42
Related Videos
4.5K Views
08:36
Related Videos
2.4K Views
06:25
Related Videos
2.2K Views
02:52
Related Videos
2.1K Views