1 marca 2017
Ten artykuł opisuje metodę ilościowego określania dynamicznego schnięcia i właściwości mechanicznych warstwy rogowej naskórka poprzez pomiar przestrzennie rozdzielczych przemieszczeń suszenia w płaszczyźnie kolistych próbek tkanek przylegających do podłoża elastomerowego. Technika ta może być wykorzystana do pomiaru, w jaki sposób różne zabiegi chemiczne zmieniają właściwości suszenia i mechaniczne tkanek.
Ogólnym celem tej metody jest ilościowe określenie dynamicznej sztywności mechanicznej i narastania naprężeń suszących w próbkach ex vivo ludzkiej warstwy rogowej naskórka, po różnych zabiegach chemicznych. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie biomechaniki i nauk kosmetycznych, takie jak wpływ na skład warstwy rogowej naskórka lub traktowanie tkanki skórnej za pomocą środków higieny osobistej, jej właściwości mechaniczne i dynamiczne zachowanie podczas suszenia. Główną zaletą tej techniki jest to, że stanowi szybszą alternatywę dla innych metod oceny mechanicznej, wymaga znacznie mniej tkanki skórnej i zapewnia bardziej fizjologicznie istotne suszenie, zapobiegając parowaniu od spodu próbki.
Aby przygotować szkiełka nakrywkowe pokryte elastomerem, należy najpierw przygotować utwardzacz Sylgard 184 z substancjami stałymi w stosunku podstawy do utwardzacza 55 do jednego, aż do uzyskania jednorodnej konsystencji. W sumie potrzeba sześciu gramów. Następnie odgazuj roztwór.
Następnie użyj roztworu, aby pokryć szkiełka nakrywkowe na powlekarce wirowej. Za pomocą pipety o szerokim otworze upuść jeden mililitr mieszaniny centralnie na szkiełko nakrywkowe. Następnie obracaj szkiełko nakrywkowe z prędkością 2 000 obr./min przez 60 sekund.
W ten sposób należy wykonać pięć lub sześć powlekanych szkiełek nakrywkowych. Aby utwardzić szkiełka nakrywkowe, przechowuj je w piekarniku o temperaturze 60 stopni Celsjusza przez 12 godzin. Następnego dnia zmierz grubość folii elastomerowych.
Użyj żyletki, aby podnieść jedną krawędź folii elastomerowej z szkiełka nakrywkowego. Następnie użyj nieusuwalnego markera, aby zaznaczyć górną stronę folii elastomerowej i oznaczyć obrobione szkiełko nakrywkowe pod spodem. Teraz, za pomocą odwróconego mikroskopu, zmierz wysokość Z między płaszczyznami ogniskowymi znaków, aby zmierzyć grubość folii.
Postępuj zgodnie ze standardowymi procedurami, aby przygotować tkankę SC. Aby pobrać próbki, weź stemple o średnicy sześciu milimetrów z SC. Na próbkach umieść znak na środku najbardziej wysuniętej powierzchni za pomocą nieusuwalnego markera. Następnie należy osadzić fluorescencyjne kulki znacznikowe na powierzchni SC, unosząc próbki w 15 mililitrach wody, zawierającej około 90 mikrolitrów koncentratu kulek.
Używaj delikatnego mieszania przez 30 minut i dostosuj stężenie kulek w razie potrzeby. Po zabiegu zanurz każdą próbkę w wodzie, aby zamontować ją na elastomerze. Umieścić powlekane szkiełko nakrywkowe pod płytkim kątem, 15 do 30 stopni pod SC z elastomerem skierowanym w stronę dolnej strony SC. Następnie wyjmij szkiełko nakrywkowe z wody z przymocowanym SC powyżej, płynnie laminując w ten sposób próbkę SC bez zmarszczek i uwięzionego powietrza.
Następnie wysuszyć zamontowane próbki w warunkach otoczenia przez około godzinę. Po wysuszeniu przenieść próbki do hermetycznie zamkniętej komory zawierającej naczynie z wodą. Pozostawić próbki do wyrównania z wilgotnością przez 24 godziny.
Następnego dnia umieść próbkę w komorze perfuzyjnej w celu przedłużonej sesji obrazowania. Umieść komorę perfuzyjną na podłożu i uszczelnij krawędzie komory perfuzyjnej do elastomeru za pomocą smaru próżniowego. Następnie rejestruj obrazy fluorescencyjne i w świetle przechodzącym z polem widzenia wystarczająco dużym, aby uchwycić pełną próbkę SC.
Przez następne 16 godzin rób zdjęcie co 10 minut. W dygestorium chemicznym załaduj małą plastikową nakrętkę z jednym mililitrem silanu. Przenieść nakrętkę do szczelnie zamkniętego pojemnika z jednym szkiełkiem nakrywkowym wyłożonym elastomerem, bez bezpośredniego kontaktu.
Pozwól im inkubować w temperaturze pokojowej przez pięć godzin. Czekając, przygotuj 20 mililitrów roztworu kulek zgodnie z protokołem tekstowym, a następnie wlej go do 10-centymetrowego naczynia. Po pięciu godzinach powoli umieść silanowane podłoża elastomerem do dołu w roztworze kulki.
Załaduj dwa substraty do każdego naczynia i pozwól substratom reagować z kulkami przez 45 minut. Później za pomocą pęsety usuń podłoża i opłucz je w wodzie destylowanej, aby usunąć niezwiązane koraliki. Następnie wysusz je pod delikatnym strumieniem sprężonego powietrza i przechowuj w szczelnym, nieprzezroczystym pudełku.
Stosując wcześniej opisaną technikę, próbki SC należy przenieść na poddane działaniu środka podłoże w kąpieli wodnej. Natychmiast po zamontowaniu SC nałóż na niego pięciomikrolitrową kroplę nierozcieńczonego roztworu kulki markera fluorescencyjnego. Następnie pozostaw SC do wyschnięcia na 60 minut.
Teraz zmierz grubość SC za pomocą mikroskopu z subiektywną soczewką 40x w komorze perfuzyjnej. Zmierz grubość SC w czasie, używając akcesorium do zdalnego ustawiania ostrości, aby zarejestrować różnicę wysokości Z między dwiema warstwami koralików. Jedna warstwa znajduje się na granicy faz podłoża SC, a druga na wierzchu SC. Za pomocą opisanych technik przygotowano próbkę SC i pokryto ją koralikami fluorescencyjnymi.
Po 16 godzinach suszenia, przy wilgotności względnej 25%, zmierzono przemieszczenia. Ze względu na kołową symetrię próbek, przemieszczenia te były uśredniane azymutalnie. Podczas suszenia przemieszczenia azymutalne pozostają niewielkie.
Promieniowe profile przemieszczeń zwiększały się jednak monotonicznie od środka do krawędzi i rosły w wielkości, aż do osiągnięcia równowagi. Profile rejestrowane w odstępach 30-minutowych pokazują ewolucję przemieszczeń w płaszczyźnie w czasie. Średnia grubość SC zmniejszyła się podczas suszenia, głównie w ciągu pierwszych dwóch godzin.
Dynamika suszenia została następnie przeanalizowana poprzez dopasowanie profili przemieszczeń do liniowego, sprężystego modelu kurczliwości przy użyciu podejścia minimalnej metodą najmniejszych kwadratów. Z modelu wyodrębniono umowne naprężenie suszenia, a także moduł sprężystości. Oba parametry gwałtownie wzrosły w ciągu pierwszych dwóch godzin suszenia.
Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o całkowitym przyklejeniu próbek do podłoża. Po tej procedurze można wykonać inne metody, takie jak barwienie lipidów, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania, takie jak to, w jaki sposób poszczególne zabiegi kosmetyczne zmieniają skład lipidowy tkanek.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje metodę ilościowego oznaczania dynamicznej sztywności mechanicznej oraz właściwości schnięcia ludzkiego stratum corneum. Poprzez pomiar przemieszczeń podczas schnięcia próbek tkanki w płaszczyźnie na podłożu elastomerowym, technika ta pozwala ocenić, w jaki sposób zabiegi chemiczne wpływają na właściwości tkanki.
Metoda ta umożliwia szybką, istotną fizjologicznie ocenę właściwości mechanicznych warstwy rogiej w warunkach wysychania, co wspiera wczesną ewaluację formulacji kosmetycznych i produktów do pielęgnacji osobistej. Poprzez kwantyfikację dynamicznych zmian naprężeń związanych z wysychaniem oraz modułu sprężystości, dostarcza ona prognostycznych informacji na temat funkcji barierowej i odporności tkanki, co ułatwia podejmowanie decyzji o kontynuacji lub przerwaniu prac w procesach rozwoju produktu. Podejście wysokoprzepustowe, wymagające niewielkiej ilości tkanki, zwiększa wydajność przesiewową i zmniejsza zależność od tradycyjnych testów mechanicznych.
Metoda ta wpisuje się w wczesne etapy procesów badawczych, w których wpływ formulacji na biomechanikę skóry jest oceniany przed optymalizacją wiodących związków, stanowiąc pomost pomiędzy screeningiem molekularnym a funkcjonalną oceną tkanki.