Name: Anatomiczne badanie nerwów zagrożonych podczas małoinwazyjnej operacji palucha koślawego (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-02-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 4 s
Description: Poznaj metodę sekcji płaszczyznowej stopy w celu lokalizacji nerwów zagrożonych podczas małoinwazyjnej operacji palucha koślawego. Badanie to poprawia bezpieczeństwo chirurgiczne i precyzję zabiegów.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dziękujemy personelowi technicznemu Prosektorium Kampusu Bellvitge Uniwersytetu w Barcelonie za umiejętną pomoc. Dziękujemy Działowi Audiowizualnemu za pracę nad filmem zamieszczonym w ramach tej publikacji. Dziękujemy dawcom ciał z Wydziału Lekarskiego Uniwersytetu w Barcelonie.

To badanie zostało zatwierdzone przez instytucjonalny Komitet Etyczny (Comissió de Biočtica, UB). Zabiegi preparacyjne zostały przeprowadzone przez doświadczonego anatoma, specjalnie przeszkolonego w technice preparacji płaszczyzna po płaszczyźnie. Jest to niezbędny warunek wstępny, aby zapewnić pomyślny wynik eksperymentu.
1. Przygotowanie
<ol>
	<li>Wybierz próbki, które mają zostać włączone do badania. Używaj świeżo zamrożonych ludzkich stóp poniżej kolan.
	<ol>
		<li>Należy wykluczyć: wszelkiego rodzaju deformacje nogi, kostki lub stopy (ponieważ mogą one wpływać na przebieg nerwów i ostatecznie wpływać na wyniki badania), owrzodzenia, blizny lub wyraźne oznaki przebytych zabiegów chirurgicznych lub wszelkie inne stany, które mogłyby utrudnić lokalizację nerwów.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wybierz dziesięć niesparowanych stóp (pięć lewych i pięć prawych, amputowanych na poziomie dystalnej kości piszczelowej) z kaukaskich, świeżo mrożonych, nie wykrwawionych próbek; próbki obejmowały 5 mężczyzn i 5 kobiet o medianie wieku 80 (zakres, 53 - 95) lat.</li>
	<li>Rozmrażaj próbki, rozmrażając je w wodzie z kranu o temperaturze pokojowej przez 6-8 godzin. Nie używaj gorącej wody, ponieważ może to zmienić właściwości próbek.</li>
	<li>Przygotuj pole preparacji. Umieść próbkę na niesterylnej serwety chirurgicznej na stole sekcyjnym. Umieść próbkę w stabilnej pozycji, która umożliwia wygodny dostęp do obszaru sekcji; Najlepiej użyć podpory, która umożliwia przesuwanie próbki w razie potrzeby.</li>
	<li>Przygotuj narzędzia do preparacji do użycia wraz z kilkoma gazikami do oczyszczenia pola podczas procesu preparacji.</li>
</ol>
2. Sekcja
<ol>
	<li>Skalpelem naciąć tylko skórę, aby utworzyć okienko o wymiarach około 20 cm x 5 cm w środkowej części stopy, zorientowane wzdłużnie. Zacznij 15 cm proksymalnie do pierwszego stawu śródstopno-paliczkowego, a zakończ około 5 cm dystalnie.
	<ol>
		<li>Wypreparuj skórę bez naruszania tkanki podskórnej i unikania przemieszczenia struktur nerwowych. Używaj świeżych ostrzy skalpela dla każdej płaszczyzny.</li>
		<li>Nacięcia należy wykonywać z krawędzią tnącą skalpela skierowaną na zewnątrz, a nie skierowaną w stronę próbki. Jest to zgodne z jedną z zasad anatomicznego rozwarstwiania skóry płaszczyzna po płaszczyźnie. Na tym etapie użyj kleszczy zębatych, aby mocno przytrzymać skórę.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Usuń skórę zakrywającą obszar okna. W razie potrzeby użyj gazy do oczyszczenia pola preparacyjnego.</li>
	<li>Wykonaj staranną sekcję tkanki podskórnej, aby zidentyfikować nerwy grzbietowo-przyśrodkowe i grzbietowo-boczne pierwszego palca. Używaj kleszczy bez zębów i nowych ostrzy skalpela, aby uniknąć uszkodzenia napotkanych struktur. Nożyczki do tęczówki i periosteotomia są pomocne w postępach w rozwarstwianiu obszaru, w którym znajdują się nerwy (ale nadal nie są widoczne), ponieważ umożliwiają mniej agresywne rozwarstwienie i zapobiegają uszkodzeniu nerwów.</li>
	<li>Wypreparuj bliższą część okna, aby uniknąć przypadkowego przecięcia nerwów. Zidentyfikuj nerwy bez odłączania się od dolnej części tkanki podskórnej, aby zapobiec przemieszczeniu. Po zidentyfikowaniu każdego nerwu przeprowadź sekcję jego przebiegu aż do pierwszego stawu śródstopno-paliczkowego.</li>
	<li>Unieruchom nerwy w ich pierwotnej pozycji w stosunku do pierwszego stawu śródstopno-paliczkowego za pomocą igły, która przebije zarówno nerw, jak i pierwszą linię stawu śródstopno-paliczkowego.</li>
	<li>Wykonaj ręczną trakcję pierwszego palca u nogi tak, aby lokalizacja linii stawu była widoczna między głową pierwszej kości śródstopia a podstawą bliższego paliczka pierwszego palca. Igła musi najpierw nakłuć nerw, a następnie zostać wprowadzona do stawu śródstopno-paliczkowego. Ten krok zapewnia, że pozycja nerwu w stosunku do stawu będzie stabilna przez cały czas trwania badania.</li>
</ol>
3. Zamrażanie
<ol>
	<li>Zabezpiecz każdą próbkę folią bąbelkową i taśmą klejącą, aby uniknąć poparzenia na zimno. Uważaj podczas owijania, aby nie przesuwać igieł trzymających nerwy.</li>
	<li>Odpowiednio oznacz każdą próbkę.</li>
	<li>Wprowadzić próbki do zamrażarki w temperaturze od -17 °C do -20 °C.</li>
	<li>Odczekaj co najmniej 6 godzin (lub noc), aż próbki zamarzną, zanim wykonasz kolejny krok protokołu.</li>
</ol>
4. Piłowanie
<ol>
	<li>Sprawdź sprzęt do cięcia. Użyj piły diamentowej z systemem chłodzenia wodą.</li>
	<li>Przygotuj pole robocze, w którym po przekroju będą manipulowane próbki.</li>
	<li>Otwórz przepływ wody i rozpocznij obrót piły taśmowej. Dostosuj prędkość cięcia piły i przepływ wody do chłodzenia.</li>
	<li>Po zamrożeniu umieść próbkę na płycie piły. Dopasuj linię cięcia 1 cm do tyłu do stawu śródstopno-paliczkowego, ponieważ jest to punkt, w którym umieszcza się odpowiednie nacięcia chirurgiczne. Wykonaj sekcję natychmiast po wyjęciu próbki z zamrażarki, aby uniknąć rozmrożenia.</li>
	<li>Ustaw przepływ wody na minimum, aby chronić próbkę przed spaleniem z powodu tarcia piły taśmowej, unikając jednocześnie rozmrożenia próbki przez wodę i późniejszych zmian struktur anatomicznych.</li>
	<li>Po zakończeniu pierwszej sekcji wyrzuć przedni blok próbki (ten zawierający palce).</li>
	<li>Wykonaj drugą sekcję. Wykonaj cięcie równoległe, 1 cm za pierwszym, aby uzyskać blok o grubości 1 cm. Jest to standardowa grubość, ponieważ cieńsze sekcje mogą spowodować, że konstrukcje przesuną się z ich pierwotnej ścieżki.</li>
	<li>Wyrzuć resztę próbki lub zachowaj do dalszych badań. Próbki można ponownie zamrozić lub utrwalić przez zanurzenie w roztworach utrwalających.</li>
</ol>
5. Pomiary
<ol>
	<li>Umieść podzielony na sekcje blok płasko na stole roboczym, a goniometr płasko na powierzchni wyciętej próbki.</li>
	<li>Użyj standardowego goniometru, którego środek znajduje się w środku pierwszego trzonu śródstopia. Ustaw jedną z osi na przyśrodkowej granicy ścięgna prostownika długiego palca, grzbietowo.</li>
	<li>Zmierz położenie nerwów grzbietowo-przyśrodkowych i grzbietowo-bocznych pierwszego palca u nogi za pomocą drugiej osi goniometru.</li>
	<li>Ekstrapoluj pomiary na model zegarowy, w którym kula jest konturem pierwszego trzonu śródstopia.</li>
</ol>

<ol><li>Perera, A. M., Mason, L., Stephens, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathogenesis+of+hallux+valgus%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bone+Joint+Surg%22%5BJournal%5D)">The pathogenesis of hallux valgus.</a> J Bone Joint Surg. 93 (17), 1650-1661 (2011).</li>
<li>Lucas, Y., Hernandez, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+moderate+hallux+valgus+by+percutaneous%2C+extra-articular+reverse-L+Chevron+%28PERC%29+osteotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Bone+Joint+J%22%5BJournal%5D)">Treatment of moderate hallux valgus by percutaneous, extra-articular reverse-L Chevron (PERC) osteotomy.</a> Bone Joint J. 98B (3), 365-373 (2016).</li>
<li>Malagelada, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1268773116304660">Increasing the safety of minimally invasive hallux surgery-An anatomical study introducing the clock method.</a> Foot Ankle Surg. , 10-14 (2016).</li>
<li>Golanó, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy+of+the+ankle+ligaments%3A+A+pictorial+essay%5BTitle%5D)+AND+%22Knee+Surg+Sports+Traumatol+Arthrosc%22%5BJournal%5D)">Anatomy of the ankle ligaments: A pictorial essay.</a> Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 18 (5), 557-569 (2010).</li>
<li>Dalmau-Pastor, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensor+apparatus+of+the+lesser+toes%3A+anatomy+with+clinical+implications--topical+review%5BTitle%5D)+AND+%22Foot+Ankle+Int%22%5BJournal%5D)">Extensor apparatus of the lesser toes: anatomy with clinical implications--topical review.</a> Foot Ankle Int. 35 (10), 957-969 (2014).</li>
<li>Dalmau-Pastor, M., Yasui, Y., Calder, J. D., Karlsson, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy+of+the+inferior+extensor+retinaculum+and+its+role+in+lateral+ankle+ligament+reconstruction+a+pictorial+essay%5BTitle%5D)+AND+%22Knee+Surg+Sports+Traumatol+Arthrosc%22%5BJournal%5D)">Anatomy of the inferior extensor retinaculum and its role in lateral ankle ligament reconstruction a pictorial essay.</a> Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 24 (4), 957-962 (2016).</li>
<li>Vesalius, A. <a target="_blank" href="http://www.vesaliusfabrica.com/en/original-fabrica/the-art-of-the-fabrica/newly-digitized-1543-edition.html">De humanis corporis fabrica libris septem</a>. , Basilea. (1543).</li>
<li>Dalmau-Pastor, M., Vega, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Letter+Regarding+Cadaveric+Analysis+of+the+Distal+Tibiofibular+Syndesmosis%5BTitle%5D)+AND+%22Foot+Ankle+Int%22%5BJournal%5D)">Letter Regarding Cadaveric Analysis of the Distal Tibiofibular Syndesmosis.</a> Foot Ankle Int. 38 (3), 343-345 (2017).</li>
<li>Caraballo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+Structures+of+the+Lateral+Wall+of+the+Maxillary+Sinus%3A+A+Vascular+Labeling+Technique%5BTitle%5D)+AND+%22Implant+Dent%22%5BJournal%5D)">Vascular Structures of the Lateral Wall of the Maxillary Sinus: A Vascular Labeling Technique.</a> Implant Dent. 26 (1), 153-157 (2017).</li>
<li>Golanó, P., Vega, J., Pérez-Carro, L., Götzens, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ankle+Anatomy+for+the+Arthroscopist.+Part+I%3A+The+Portals%5BTitle%5D)+AND+%22Foot+Ankle+Clin%22%5BJournal%5D)">Ankle Anatomy for the Arthroscopist. Part I: The Portals.</a> Foot Ankle Clin. 11 (2), 253-273 (2006).</li>
<li>Golanó, P., Vega, J., Pérez-Carro, L., Götzens, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ankle+Anatomy+for+the+Arthroscopist.+Part+II%3A+Role+of+the+Ankle+Ligaments+in+Soft+Tissue+Impingement%5BTitle%5D)+AND+%22Foot+Ankle+Clin%22%5BJournal%5D)">Ankle Anatomy for the Arthroscopist. Part II: Role of the Ankle Ligaments in Soft Tissue Impingement.</a> Foot Ankle Clin. 11 (2), 275-296 (2006).</li>
</ol>

Autorzy nie mają konkurencyjnych interesów finansowych związanych z tym badaniem lub mających na nie wpływ.

Podstawą metody zastosowanej w tym badaniu jest połączenie anatomii przekrojowej i anatomicznej sekcji płaszczyzna po płaszczyźnie, tak jak było to praktykowane historycznie7. Wymaga to nie tylko wiedzy anatomicznej, ale także specjalistycznego treningu w zakresie czasochłonnej techniki, która w dużej mierze opiera się na umiejętnościach sekcjonariusza. W związku z tym niektóre obrazy anatomiczne zawarte w podręcznikach anatomicznych lub pracach naukowych, zwłaszcza w dziedzinie chirurgii ortopedy...

Paluch koślawy to powszechna patologia dotykająca pierwszego palca u nogi, w której paliczek bliższy jest odchylony bocznie, podczas gdy pierwsza kość śródstopia jest odchylona przyśrodkowo1. Przezskórne lub minimalnie inwazyjne techniki chirurgiczne (MIS) w przypadku palucha koślawego były jednymi z pierwszych opisanych w tej dyscyplinie, a liczne badania donoszą o ich korzyściach, ale także o ryzyku2. Korekcja palucha koślawego MIS polega na osteotomii wykonywanej przez małe nacięcia przy użyciu specjalnych narzędzi chirurgicznych. Biorąc pod uwagę, że nie wykonuje się otwartych sekcji, ryzyko uszkodzenia struktur nerwowo-naczyniowych jest wyższe niż w przypadku ich identyfikacji podczas operacji otwartej. Ponadto, jak w każdym zabiegu chirurgicznym, ułożenie pacjenta i chirurga wokół stołu operacyjnego jest dalekie od pozycji anatomicznej przedstawionej w klasycznych książkach anatomicznych lub opracowaniach.
Struktury neurologiczne zagrożone podczas operacji palucha koślawego to nerw grzbietowo-przyśrodkowy dużego palca u nogi, gałąź powierzchownego nerwu strzałkowego oraz nerw grzbietowo-boczny dużego palca u nogi, gałąź głębokiego nerwu strzałkowego. Celem pracy jest opisanie położenia tych nerwów w odniesieniu do nacięć stosowanych w chirurgii palucha koślawego i zilustrowanie go nową metodą łatwo odtwarzalną w warunkach chirurgicznych. Ponadto opisano bezpieczny portal do stosowania narzędzi przezskórnych.
Gruntowna wiedza anatomiczna jest niezbędna w każdej dziedzinie chirurgicznej, zwłaszcza podczas minimalnie inwazyjnych zabiegów. Rozwój nowych technik chirurgicznych i obrazowania wymaga nowego zrozumienia zarówno dwuwymiarowej, jak i trójwymiarowej lokalizacji anatomicznych punktów orientacyjnych. Wcześniej zgłoszone techniki sekcji anatomicznej zostały opracowane przez nasz zespół w celu przezwyciężenia ograniczeń klasycznych technik preparacji3,4,5,6 i tutaj są stosowane do odtworzenia nacięć skóry i portali wejściowych instrumentów odpowiadających procedurom MIS stosowanym w leczeniu patologii palucha koślawego (HV) i sztywnego (HR). Metoda ta ma zatem zastosowanie do tych technik chirurgicznych, które ewoluowały od tradycyjnej chirurgii otwartej do MIS3,4,5,6.

<table><tbody><tr><td>Adson Kleszcze preparacyjne nieząbkowane</td><td>Bontempi</td><td>BD-31</td><td></td></tr><tr><td>Adson Kleszcze preparacyjne zębate</td><td>Bontempi</td><td>BD-30</td><td></td></tr><tr><td>Rękojeść do skalpela chirurgicznego n&ordm; 4</td><td>Swann-Morton</td><td>4</td><td></td></tr><tr><td>Ostrza do skalpeli chirurgicznych n&ordm; 24</td><td>Swann-Morton</td><td>24</td><td>Ad libitum</td></tr><tr><td>Iris - zakrzywione</td><td>Bontempi</td><td>FG-2</td><td></td></tr><tr><td>Periostotome P-24</td><td>Bontempi</td><td>718-24G</td><td></td></tr><tr><td>Domięśniowe sterylne igły 23G</td><td>Totclinic</td><td>23</td><td>Ad libitum</td></tr><tr><td>Goniometr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rękawiczki</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td> lateksoweAd libitum<td>Gaziki</td><td>Ad libitum</td></tr><tr><td>Niesterylna serweta</td><td></td><td></td><td></td>chirurgiczna</tr><tr><td>Piła</td><td>EXAKT Advanced Technologies GmbH</td><td>EXAKT 312 Piła</td><td></td> patologiczna</tr></tbody></table>

anatomiczne badanie nerwów zagrożonych podczas małoinwazyjnej operacji palucha koślawego

An Anatomical Study of Nerves at Risk During Minimally Invasive Hallux Valgus Surgery

Rosnąca popularność minimalnie inwazyjnych procedur chirurgicznych (MIS) sprawia, że konieczne jest tworzenie nowych odniesień anatomicznych, aby pomóc w trójwymiarowej orientacji i lokalizacji struktur, które nie są bezpośrednio widoczne dla chirurga. Jest to szczególnie ważne w przypadku zagrożonych struktur, takich jak nerwy lub naczynia krwionośne. Optymalizacja obchodzenia się ze zwłokami i połączenie wielu technik kompensują ograniczoną dostępność odpowiednich próbek. Opisany protokół łączy anatomiczną sekcję płaszczyzna po płaszczyźnie i anatomię przekrojową świeżo zamrożonych próbek, aby pomóc zlokalizować odpowiednie struktury, takie jak nerwy, tętnice, żyły oraz prawidłowo ustawić wrota podczas zabiegów MIS. Obraz tych struktur w podręcznikach anatomii może różnić się od tego, co spotyka się w dziedzinie chirurgii; Z tego powodu potrzebne są nowe badania anatomiczne o orientacji chirurgicznej. Jest to jednak technika złożona, czasochłonna, wymagająca specjalistycznego treningu. Wzorce anatomiczne opisane za pomocą tak zwanej "metody zegarowej" zapewniają chirurgowi łatwy i powtarzalny system do lokalizowania drogi zagrożonych nerwów w procedurach MIS palucha koślawego. Model ten można ekstrapolować na wiele innych małoinwazyjnych zabiegów chirurgicznych.

Stosując metodę zegarową, nerwy grzbietowo-przyśrodkowy i grzbietowo-boczny znajdowały się konsekwentnie między godziną 10 a 2 (Rycina 1). Nerw grzbietowo-przyśrodkowy znajdował się średnio 26,2° przyśrodkowo względem brzegu przyśrodkowego m. EHL, co odpowiada strefie między godziną 12 a 2 w prawej stopie oraz między godziną 10 a 12 w lewej stopie. Nerw grzbietowo-boczny znajdował się średnio 32,3° bocznie względem brzegu przyśrodkowego m. EHL, co odpowiada s...

Minimalnie inwazyjne procedury chirurgiczne (MIS) polegają na anatomicznych odniesieniach do lokalizacji struktur nie widocznych bezpośrednio dla chirurga. Manuskrypt ten opisuje połączoną metodę preparacji płaszczyzna po płaszczyźnie i anatomii przekrojowej świeżo zamrożonych próbek w celu zlokalizowania zagrożonych struktur podczas procedur MIS.

Anatomiczne badanie nerwów zagrożonych podczas małoinwazyjnej operacji palucha koślawego

The growing popularity of minimally invasive surgical (MIS) procedures makes it necessary that new anatomical references arise, to aid in tridimensional ...

Hallux valgus to bardzo powszechna patologia dotycząca palucha. Pierwsza kość śródstopia jest odchylona przyśrodkowo, podczas gdy paluch jest odchylony bocznie. Małoinwazyjna korekta chirurgiczna obejmuje osteotomie wykonywane przez niewielkie nacięcia o szerokości mniej niż pięć milimetrów, zlokalizowane po stronie przyśrodkowej i grzbietowej stopy.Pozwala to na wprowadzenie instrumentów widocznych tutaj, jednak nie umożliwia wizualizacji wąskich struktur naczyniowych napotykanych podczas wykonywania nacięcia, co ma miejsce w przypadku chirurgii otwartej. Z tego powodu przeprowadziliśmy badanie anatomiczne, aby ocenić położenie nerwu w odniesieniu do tego nacięcia. Gruntowna wiedza anatomiczna jest niezbędna w każdej dziedzinie chirurgii, a w szczególności podczas procedur małoinwazyjnych.W przypadku operacji hallux valgus zagrożone są nerw grzbietowo-przyśrodkowy palucha (gałąź nerwu strzałkowego powierzchownego) oraz nerw grzbietowo-boczny palucha (gałąź nerwu strzałkowego głębokiego). Celem niniejszego badania była ocena położenia nerwów w odniesieniu do nacięć chirurgicznych oraz ponowna weryfikacja tych zależności przy użyciu nowej, łatwej do zapamiętania dla chirurga metody. Aby z zachowaniem dokładności przeprowadzić badanie anatomiczne, niezbędne jest przeszkolenie w zakresie sekcji anatomicznej.Używamy wyłącznie świeżo zamrożonych preparatów, które przed rozpoczęciem procesu sekcji rozmrażamy w wodzie w temperaturze pokojowej przez osiem godzin. Sekcję przeprowadzamy techniką anatomicznej dyssekcji warstwa po warstwie, z zachowaniem wszystkich napotkanych struktur. Do przeprowadzenia tego badania anatomicznego niezbędny jest następujący materiał: rękawiczki lateksowe, rękojeść nr 4 z ostrzami nr 24, pęseta z ząbkami do manipulowania skórą, pęseta bezzębna do tkanek wewnętrznych, periotom (taki, jak stosowany w stomatologii), nożyczki irydowe, igły do fiksacji nerwów, standardowy goniometr do wykonywania pomiarów oraz gaziki do oczyszczania pola podczas procesu sekcji.Przeprowadzamy badanie tego obszaru, ponieważ to tutaj znajdują się nacięcia stosowane w małoinwazyjnych zabiegach chirurgicznych leczenia hallux valgus. Przyśrodkowe nacięcie w obrębie pierwszego stawu śródstopno-paliczkowego, wykonywane w celu resekcji kości i ostotomii, naraża na uszkodzenie nerw grzbietowy przyśrodkowy palucha. Nacięcie grzbietowe w dystalnej części pierwszej przyśrodkowej przestrzeni śródstopia, wykonywane w celu tenotomii mięśnia przywodziciela palucha, naraża na uszkodzenie nerwu grzbietowo-bocznego palucha.Pierwszym krokiem badania jest wypreparowanie i zlokalizowanie odpowiednich struktur neurologicznych oraz ich unieruchomienie, aby nie przemieściły się podczas wykonywania przekroju czołowego. Disekcję rozpoczyna się od nacięcia obejmującego wyłącznie skórę, bez naruszania tkanki podskórnej. Skórę usuwa się, odsłaniając tkankę tłuszczową podskórną; bardzo ważne jest, aby pozostawić ją nienaruszoną, by uniknąć zmiany położenia nerwów, ponieważ nerwy skórne znajdują się wewnątrz tej tkanki.Jeśli lokalizacja nerwu budzi wątpliwości, bardzo przydatne są nożyczki tęczówkowe, ponieważ pozwalają one go zlokalizować bez nadmiernej dyssekcji obszaru. Jest to grzbietowy nerw przyśrodkowy pierwszego palca, który rozgałęzia się w tym obszarze. Ponieważ żyły znajdują się bardziej powierzchownie niż nerwy, można je usunąć bez ryzyka wpłynięcia na wyniki badania.Po zlokalizowaniu nerwu grzbietowego przyśrodkowego rozpoczniemy preparację w celu odnalezienia nerwu grzbietowego bocznego pierwszego palca, który znajduje się w pierwszej przestrzeni międzyśródstopnej. Należy zauważyć, że technikę sekcji anatomicznej wykonuje się zazwyczaj tak, aby ostrze nie było skierowane w stronę preparatu, lecz na zewnątrz. Pozwala to na usunięcie części tkanki bez uszkadzania struktur leżących głębiej, w tym przypadku żyły, która zostaje ostatecznie usunięta.Jest to podstawa prawdziwej anatomicznej dyssekcji warstwa po warstwie. Gaziki służą do oczyszczania części obszaru preparacji, zwłaszcza gdy krew utrudnia wizualizację struktur. Ponownie, nożyczki irydowe są przydatne w sytuacjach, gdy dyssekcja za pomocą ostrza tnącego mogłaby narazić na uszkodzenie struktur, które chcemy zlokalizować.Periotom jest przydatny do usunięcia tkanki tłuszczowej, która zazwyczaj otacza nerwy, co umożliwia ich prawidłową identyfikację. Na koniec identyfikuje się nerw grzbietowo-boczny pierwszego palca. Disekcję kontynuuje się aż do miejsca, w którym nerw dociera do stawu śródstopno-paliczkowego.Po zidentyfikowaniu nerwu grzbietowo-bocznego pierwszego palca, przystępuje się do unieruchomienia nerwów za pomocą igieł. Trakcja palca pomaga w precyzyjnym zlokalizowaniu linii stawowej. Następnie nerw zostaje unieruchomiony igłą umieszczoną wewnątrzstawowo, aby zapobiec jego przemieszczeniu.Nerw grzbietowy przyśrodkowy zostaje unieruchomiony igłą; ten sam proces powtórzyto w przypadku nerwu grzbietowego bocznego. W ten sposób nerwy są utrwalone przez podskórną tkankę tłuszczową oraz igłę, co zapobiega ich przemieszczaniu się podczas procesów mrożenia i cięcia. Próbka zostaje zabezpieczona folią plastikową, aby zapobiec odmrożeniom.Następnie próbkę mrozi się w temperaturze -17°C przez minimum sześć godzin. Przed przystąpieniem do procesu cięcia, zamrożony preparat jest sekcjonowany za pomocą piły diamentowej, z chłodzeniem wodnym w celu uniknięcia przypalenia struktur wskutek tarcia. Przekrój czołowy wykonuje się bezpośrednio za stawem śródstopia palca, ponieważ jest to obszar, w którym wykonuje się nacięcia chirurgiczne.Piła umożliwia wykonywanie przekrojów o dowolnie małej grubości, a w tym przypadku, aby uniknąć przemieszczenia struktur, wykonuje się przekroje o grubości jednego centymetra. Po przygotowaniu przekroju dokonuje się pomiarów za pomocą standardowego goniometru, a następnie ekstrapoluje je do metody zegarowej (Clock Method), w której sferę stanowi obrys trzonu pierwszej kości śródstopia. Metoda zegarowa była wcześniej stosowana w innych stawach, takich jak barkowe czy kolanowe, jednak jest to pierwszy przypadek jej zastosowania w chirurgii stopy.Grzbietową gałąź przyśrodkową nerwu stopy stwierdzono średnio 26,2 stopnia przyśrodkowo względem przyśrodniej krawędzi mięśnia EHL. Stosując metodę zegarową, grzbietową gałąź przyśrodkową znaleziono we wszystkich przypadkach między godziną 12 a 2, co odpowiada odpowiednio 0 i 60 stopniom w prawej stopie, oraz między godziną 10 a 12 w lewej stopie, co odpowiada 300 i 360 stopniom, po stronie grzbietowo-przyśrodkowej pierwszego palca. Grzbietowa gałąź boczna znajdowała się średnio 32,3 stopnia bocznie względem przyśrodniej krawędzi mięśnia EHL.Nerw grzbietowo-boczny został zlokalizowany we wszystkich przypadkach między godziną 10 a 12 w prawej stopie oraz między godziną 12 a 2 w lewej stopie, po bocznej stronie grzbietowej pierwszego palca. Nerwy grzbietowo-przyśrodkowy i grzbietowo-boczny pierwszego palca są konsekwentnie znajdowane między godziną 10 a 2. Jest to strefa bezpieczna, w której można wykonywać nacięcia podczas małoinwazyjnych procedur leczenia Hallux valgus bez ryzyka.

an-anatomical-study-nerves-at-risk-during-minimally-invasive-hallux

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Opisano tutaj model zwierzęcy Spared Nerve Injury jako mysi model obwodowego bólu neuropatycznego po częściowej denerwacji nerwu kulszowego poprzez uszkodzenie gałęzi nerwu piszczelowego i wspólnego strzałkowego, przy zachowaniu nienaruszonego nerwu podszywkowego. Modyfikację behawioralną wynikającą z allodynii mechanicznej ilościowo określono za pomocą włókien von Freya.

Model Spared Nerve Injury (SNI) indukowanej allodynii mechanicznej u myszy

Opracowaliśmy metodę uszkodzenia nerwów, aby wiarygodnie badać reinerwację mięśni, a tym samym regenerację połączeń nerwowo-mięśniowych u myszy. Technika ta polega na uszkodzeniu wspólnego nerwu strzałkowego za pomocą prostej i wysoce powtarzalnej operacji.  Renerwacja mięśni jest następnie oceniana poprzez całkowite zamontowanie mięśnia prostownika długiego palca.

Metoda uszkodzenia nerwu strzałkowego: wiarygodny test do identyfikacji i testowania czynników naprawiających połączenia nerwowo-mięśniowe

Celem badania jest zilustrowanie technicznej procedury przeszczepu tłuszczu wzbogaconego frakcją naczyniową zrębu (SVF) jako nowatorskiego leczenia objawowego nerwiaka końcowego. Technika ta zapewnia korzyści zarówno w zakresie bariery mechanicznej, jak i działania biologicznego na poziomie komórkowym przez przetworzony i skoncentrowany SVF.

Przeszczep tłuszczu wzbogacony we frakcję naczyniową zrębu w leczeniu objawowego nerwiaka końcowego

Zmodyfikowana operacja to uproszczona metoda dla modelu uszkodzenia nerwu oszczędzonego u myszy lub szczura, która wymaga tylko jednego podwiązania i jednego cięcia, aby uszkodzić zarówno wspólne nerwy strzałkowe, jak i łydkowe.

Zmodyfikowany model chirurgii oszczędzonego uszkodzenia nerwu bólu neuropatycznego u myszy

Częściowe podwiązanie nerwu kulszowego wywołuje długotrwały przewlekły ból neuropatyczny, charakteryzujący się przesadnymi reakcjami na bodźce termiczne i mechaniczne. Ten mysi model bólu neuropatycznego jest powszechnie stosowany do badania innowacyjnych terapii leczenia bólu. W tym artykule szczegółowo opisano procedurę chirurgiczną w celu poprawy standaryzacji i odtwarzalności.

Częściowe podwiązanie nerwu kulszowego: mysi model przewlekłego bólu neuropatycznego w celu zbadania antynocyceptywnego działania nowych terapii

Ten protokół opisuje model transpozycji nerwiaka piszczelowego, który pociąga za sobą uszkodzenie nerwu piszczelowego z późniejszą transpozycją końca nerwu proksymalnego w kierunku podskórnej pozycji przedpiszczelowej lub bocznej. Testy behawioralne bólu nerwiaka i hiperalgezji podeszwowej określa się ilościowo przy użyciu monofili von Freya.

Chirurgia i testy behawioralne w modelu transpozycji nerwiaka piszczelowego u szczurów

Tutaj opisujemy procedurę chirurgiczną przeprowadzania operacji Regenerative Peripheral Nerve Interface (RPNI) w leczeniu bólu neuropatycznego po amputacji w kontekście międzynarodowego, randomizowanego badania kontrolowanego (RCT) (ClinicalTrials.gov, NCT05009394). RCT porównuje RPNI z dwiema innymi technikami chirurgicznymi, a mianowicie celowanym unerwieniem mięśni (TMR) i wycięciem nerwiaka połączonego z transpozycją domięśniową.

Regeneracyjny interfejs nerwów obwodowych: protokół chirurgiczny dla randomizowanego kontrolowanego badania w bólu po amputacji

Protokół ten przedstawia powtarzalny model szczura wykorzystujący nerwy czuciowe do naśladowania bólu neuromimy u człowieka oraz oceny zabiegów chirurgicznych, oferując cenne narzędzie do badań nad neuromią translacyjną.

Nowy chirurgiczny model gryzonia do badania opcji leczenia bólu nerwiaka z wykorzystaniem ukierunkowanej renerwacji mięśni przez nerw odpiszczelowy

Sprawdzona technika szczepienia pierwotnych inwazyjnych ksenoprzeszczepów raka ortotopowego pęcherza moczowego wymaga laparotomii i mobilizacji pęcherza. Procedura ta powoduje znaczną zachorowalność u myszy, jest technicznie trudna i czasochłonna. W związku z tym opracowaliśmy wysoce precyzyjne, przezskórne podejście wykorzystujące kontrolę ultrasonograficzną.

Małoinwazyjne założenie mysich ortotopowych ksenoprzeszczepów pęcherza moczowego

Tutaj prezentujemy protokół enkapsulacji komórek katabolicznych, które zużywają lipidy do produkcji ciepła w tkance tłuszczowej w jamie brzusznej i zwiększają rozpraszanie energii u otyłych myszy.

Enkapsulacja termogenicznych preadipocytów do przeszczepu do magazynów tkanki tłuszczowej

Poznaj metodę sekcji płaszczyznowej stopy w celu lokalizacji nerwów zagrożonych podczas małoinwazyjnej operacji palucha koślawego. Badanie to poprawia bezpieczeństwo chirurgiczne i precyzję zabiegów.

Anatomiczne badanie nerwów zagrożonych podczas małoinwazyjnej operacji palucha koślawego

Przeglądaj więcej filmów