Name: Alternatywne metody in vitro do oznaczania integralności strukturalnej kapsydu wirusa (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 57 s
Description: Poznaj alternatywne metody in vitro do oceny integralności kapsydu wirusa norowego, w tym wiązanie aptamerów, dynamiczne rozpraszanie światła i mikroskopię elektronową. Techniki te umożliwiają rozróżnienie cząstek zakaźnych od niezakaźnych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez Inicjatywę Badań nad Rolnictwem i Żywnością Konkurencyjny Grant nr 2011-68003-30395 od Departamentu Rolnictwa Stanów Zjednoczonych, Narodowego Instytutu Żywności i Rolnictwa poprzez projekt NoroCORE. Finansowanie opłaty za otwarty dostęp zostało zapewnione przez Departament Rolnictwa Stanów Zjednoczonych. Chcielibyśmy podziękować Robertowi Atmarowi (Baylor College of Medicine, Houston, Teksas) za uprzejme dostarczenie nam oczyszczonych kapsydów oraz Valerie Lapham za jej pomoc przy obrazach TEM. Chcielibyśmy również podziękować Frankowi N. Barry'emu za pomoc w rozpoczęciu prezentowanych eksperymentów.

1. Test wiązania na płytce do oceny utraty struktury kapsydu norowirusa wyższego rzędu
UWAGA: Opublikowano bardzo podobny protokół ELASA do tego przedstawionego tutaj29, a podobne testy ELASA zostały wcześniej zgłoszone jako część artykułów naukowych w innych miejscach17,18,22.
<ol>
	<li>Obróbka cieplna ludzkiego norowirusa GII.4 Kapsydy Sydney
	<ol>
		<li>Otrzymać oczyszczone białko kapsydu głównego ludzkiego norowirusa (VP1) GII.4 Sydney (Accession: JX459908) złożone w kapsydy. 
		UWAGA: Kapsydy w badaniu uzyskano dzięki uprzejmości R. Atmara (Baylor College of Medicine, Houston, TX).</li>
		<li>Rozcieńczyć kapsydy do 50 μg/ml w 1x soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS, pH 7,2) do maksymalnej objętości 15 μl w pojedynczych probówkach PCR z nakrętką. Upewnij się, że probówka zawiera co najmniej 600 ng kapsydu. Upewnij się, że w każdej kombinacji ligandów terapeutycznych znajduje się 600 ng kapsydu.</li>
		<li>Rozgrzej termocykler do żądanej obróbki cieplnej. 
		UWAGA: Do celów niniejszego protokołu wybrano leczenie w temperaturze 68 °C przez różne czasy (0 - 25 min).</li>
		<li>Rozgrzej dodatkowy termocykler do 4 °C w celu natychmiastowego schłodzenia. Dodaj probówki z roztworem kapsydu do termocyklera na żądany czas. Natychmiast przenieść do wstępnie schłodzonego cyklera o temperaturze 4 °C na 5 minut po podgrzaniu.
		<ol>
			<li>Włączyć 95 °C na 5-minutowy zabieg jako kontrolę denaturowanego kapsydu. Włączyć niepoddanych działaniu substancji (23 °C) roztwór kapsydu jako kontrolę dodatnią. Włączyć PBS bez kapsydu jako dodatkową kontrolę ujemną.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Krótko odwirować w wirówce, aby wszystkie kropelki opadły na dno probówki i rozcieńczyć poddane działaniu kapsydu roztwory kapsydu w PBS do 3 μg/ml. Upewnij się, że jest co najmniej 200 μl rozcieńczonego, poddanego działaniu środka kapsydu (100 μl/basenik).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Nałóż 100 μl roztworu kapsydu do każdej studzienki, upewniając się, że są co najmniej dwie studzienki na zabieg. Dodatkowo dołącz 2 studzienki kontrolne ze 100 μl PBS dla każdego liganda; Zapewnia to absorbancję tła testu. Przykryj płytkę pokrywką, uszczelnij krawędzie folią parafinową w celu zmniejszenia parowania i pozostaw na noc w inkubatorze z wytrząsaniem w temperaturze 4 °C lub na 2 godziny w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Przygotować bufor blokujący, wytwarzając 5% odtłuszczonej suchej masy mlecznej (w/v) w PBS z 0,05% Tween 20 (PBST).</li>
	<li>Usunąć poddane działaniu kapsydu roztwory kapsydu z płytki. Dodać 200 μl/studzienkę buforu blokującego. Inkubować przez 2 godziny w temperaturze pokojowej lub przez noc, szczelnie zamknięty w temperaturze 4 °C.</li>
	<li>Przygotuj roztwory wiążące ligand dla biotynylowanego aptameru M6-218,29 i biotynylowanej syntetycznej grupy krwi HBGA A lub biotynylowanej grupy H.
	<ol>
		<li>Rozcieńczyć biotynylowany aptamer do 1 μM w wodzie wolnej od nukleaz. Upewnij się, że roztwór jest wystarczający na 200 μl łącznie na każdy zabieg. Rozcieńczyć wybrany biotynylowany HBGA do 30 μg/ml w buforze blokującym. Upewnij się, że roztwór jest wystarczający na 200 μl całkowitej objętości dla każdego zabiegu. 
		UWAGA: Aby zużyć mniej HBGA, można zastąpić 10 μg/ml HBGA w 0,25% odtłuszczonym mleku-PBST. Stężenia zarówno biotynylowanego M6-2, jak i HBGA zostały wcześniej zoptymalizowane i zgłoszone.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Usunąć bufor blokujący i przemyć płytki 3 razy 200 μl/basenik PBST. Poklep talerz do góry nogami na sterylnych ręcznikach papierowych, aby wysuszyć resztki wilgoci.</li>
	<li>Dodać 100 μl/studzienkę roztworów wiążących ligandy, upewniając się, że na kombinację ligandów do obróbki cieplnej przypadają 2 dołki. Inkubować płytkę przykrytą pokrywką na wytrząsarce orbitalnej z prędkością około 60 obr./min przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. 
	UWAGA: Należy pamiętać o dołączeniu 2 studzienek po 2 kapsydy niepoddane działaniu substancji i całkowicie zdenaturowanych kapsydów dla każdego liganda jako odpowiednio kontroli dodatniej i ujemnej. Dodatkowo dołącz 2 studzienki "bez kapsydu" dla każdego liganda jako kontrolkę tła płytki.</li>
	<li>Usunąć roztwory ligandów i przemyć studzienki 3 razy 200 μl/studzienkę PBST. Poklep talerz do góry nogami na sterylnych ręcznikach papierowych, aby wysuszyć resztki wilgoci.</li>
	<li>Dodać 100 μl/studzienkę roztworu 0,2 μg/ml peroksydazy streptawidynowo-chrzanowej w PBS. Inkubować przez 15 minut w temperaturze pokojowej, delikatnie wstrząsając na wytrząsarce orbitalnej. 
	UWAGA: Różne koniugaty streptawidyny i peroksydazy chrzanowej będą miały różne stężenia. Zapoznaj się z instrukcją obsługi, aby uzyskać idealny zakres stężeń dla aplikacji enzymu ELISA i upewnij się, że jest on optymalny.</li>
	<li>Usuń sprzężony roztwór. Przemyć 3 razy 200 μl/studzienkę PBST. Poklep talerz do góry nogami na sterylnych ręcznikach papierowych, aby wysuszyć resztki wilgoci.</li>
	<li>Dodać 100 μl/studzienkę substratu 3,3',5,5'-tetrametylobenzydyny (TMB) i pozostawić kolor do rozwinięcia się przez 5 - 15 minut. Obserwuj studzienki kontroli ujemnej dla dowolnego koloru i upewnij się, że stale rozwijasz się przez ten sam czas między powtórzonymi płytkami. Należy również pamiętać o zakresie absorbancji używanego czytnika płytek. 
	UWAGA: Czasy wywoływania mogą się różnić w zależności od jakości użytych ligandów/odczynników.</li>
	<li>Zatrzymać rozwój reakcji za pomocą 100 μL/studzienkę 1M kwasu fosforowego. Natychmiast odczytać płytkę przy 450 nm. Zapisz dane. 
	UWAGA: Wprowadzenie kwasu na ogół drastycznie spowalnia reakcję, ale nie zatrzymuje jej całkowicie. Nie pozostawiaj zamkniętej płytki na dłuższy czas przed odczytaniem absorbancji.</li>
</ol>
2. Analiza wyników testów na płytkach
<ol>
	<li>Zapisz surowe dane absorbancji w arkuszu kalkulacyjnym. Uzyskać średnie absorbancje dla każdej studzienki w parze z określonym traktowaniem i ligandem. Tych średnich należy używać we wszystkich kolejnych analizach. 
	UWAGA: Porównaj absorbancje obu studzienek, aby upewnić się, że żadna para studzienek nie ma znacząco rozbieżnych wartości.</li>
	<li>Aby przeanalizować bezwzględną integralność kapsydu (wszystkie wiązania), odejmij surową absorbancję kontroli "bez kapsydu" od każdej innej wartości absorbancji próbki. 
	UWAGA: Alternatywnie, utrata wiązania spowodowana utratą struktury wyższego rzędu (drugorzędnego, trzeciorzędowego, czwartorzędowego) może być analizowana bezpośrednio. Zamiast odejmować absorbancję kontroli ujemnej (bez kapsydu), należy odjąć wartość całkowicie zdenaturowanej kontroli kapsydu. To usuwa cały sygnał wiązania spowodowany niespecyficznym wiązaniem z aparatem, a także wiązaniem spowodowanym sekwencją kapsydu. HBGA i aptamer M6-2 wykazują niewielkie wiązanie z całkowicie zdenaturowanym kapsydem, więc obie metody dają podobne wyniki. Fałszywie dodatni sygnał przypisywany niespecyficznemu wiązaniu aptamerów musi być brany pod uwagę przy wyborze analizy, którą należy zastosować.</li>
	<li>W przypadku ujemnych lub denaturowanych absorbancji kontrolnych należy podzielić absorbancje poddane działaniu substancji przez odpowiednie dodatnie (bez poddawania działaniu substancji) absorbancje kontrolne i pomnożyć przez 100. Zapewnia to procentowy udział sygnału kapsydu poddanego działaniu środka w stosunku do nieleczonej kontroli.</li>
	<li>Aby oszacować stopień sygnału wiązania dla każdego ligandu, który można przypisać sekwencji kapsydu, należy odjąć kontrolę ujemną "bez kapsydu" od początkowych absorbancji i przyjąć skorygowaną absorbancję denaturowanego kapsydu. Podziel to przez skorygowaną absorbancję dodatniego sygnału kontrolnego i pomnóż przez 100. Daje to pozorny procent sygnału spowodowany wiązaniem liganda ze zdenaturowaną sekwencją kapsydu/kapsydu.</li>
</ol>
3. DLS do wykrywania agregacji wirusów po obróbce cieplnej
UWAGA: Poniższe kroki mogą być specyficzne dla używanego oprogramowania i instrumentu, ale mogą być dostosowane i zastosowane do podobnych urządzeń.
<ol>
	<li>Utwórz nowy rozmiar SOP w oprogramowaniu przyrządu DLS, korzystając z: Materiał = Białko, Dyspergator = PBS, Temperatura = 25 °C, Czas równowagi = 0 sekund, Typ ogniwa = kuweta jednorazowa (mała objętość, ZEN0040), Kąt pomiaru = 173° Rozproszenie wsteczne, Czas pomiaru = automatyczny, Liczba pomiarów = 3, Opóźnienie między pomiarami = 0 sekund, Przetwarzanie danych: Model analizy = Ogólnego przeznaczenia (normalna rozdzielczość). Użyj ustawień domyślnych dla wszystkich innych parametrów.</li>
	<li>Wybierz zieloną strzałkę uruchamiania w oprogramowaniu i nazwij przykład.</li>
	<li>Wykonaj kroki od 1.1.1 do 1.1.4 w celu obróbki cieplnej VLP.</li>
	<li>Rozcieńczyć VLP poddane obróbce cieplnej w stosunku 1:10 w 1x PBS do końcowego stężenia 5 μg/ml. (Opcjonalnie) Przefiltrować próbkę z porami o wielkości 1 μm, aby usunąć cząsteczki kurzu; DLS jest bardzo wrażliwy na kurz, ponieważ duże cząstki rozpraszają znacznie więcej światła niż małe.</li>
	<li>Przenieś 50 μl rozcieńczonych VLP do jednorazowej kuwety o małej objętości. Włóż kuwetę do sample komory przyrządu.</li>
	<li>Rozpocznij bieg i skorzystaj z zakładek "Correlogram", "Dopasowanie kumulantów" i "Porady ekspertów", aby ocenić jakość danych.
	<ol>
		<li>Podczas cyklu sprawdź, czy wartość wskaźnika polidyspersyjności jest mniejsza niż 0,3, co odpowiada pomiarowi jakości. W zakładce "Multi-view" upewnij się, że współczynnik korelacji jest stały i bliski, ale nie większy niż 1, w krótkim czasie, a później gwałtownie spada do 0, co jest charakterystyczne dla wielkości cząstek. Skorzystaj z zakładki "Porady eksperta", aby uzyskać informacje zwrotne na temat jakości danych podczas pomiarów.</li>
		<li>Po zakończeniu pomiaru sprawdź ponownie, czy wartość wskaźnika polidyspersyjności jest mniejsza niż 0,3. Upewnij się, że linia dopasowania kumulantów ściśle przylega do punktów danych na karcie "Dopasowanie kumulantów".</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przyjmuje się średnią średnicy cząstek Z podawaną dla każdego pomiaru jako wielkość cząstek w każdej próbce. Wykreślić średnicę w nm w funkcji temperatury w °C.</li>
</ol>
4. DLS do wykrywania agregacji wirusów w czasie rzeczywistym
UWAGA: Poniższe kroki mogą być specyficzne dla używanego oprogramowania i instrumentu, ale mogą być dostosowane i zastosowane do podobnych urządzeń.
<ol>
	<li>Utwórz nowy rozmiar SOP w oprogramowaniu przyrządu DLS za pomocą: Materiał = Białko, Dyspergator = PBS, Temperatura = zgodnie z życzeniem, Czas równowagi = 0 sekund, Typ ogniwa = kuweta kwarcowa, Kąt pomiaru = 173° Rozproszenie wsteczne, Czas pomiaru = automatyczny, Liczba pomiarów = 50 (może być zwiększona lub zmniejszona w zależności od szybkości agregacji), Opóźnienie między pomiarami = 0 sekund, Przetwarzanie danych: Model analizy = Wiele wąskich trybów (wysoka rozdzielczość). Użyj ustawień domyślnych dla wszystkich innych parametrów.</li>
	<li>Wybierz strzałkę uruchamiania w oprogramowaniu, aby otworzyć i nazwać nową próbkę i pozwolić instrumentowi osiągnąć równowagę temperatury.</li>
	<li>Zawiesić VLP w 1X PBS w probówce do mikrowirówki o stężeniu 5 μg/ml i objętości między 200 - 500 μL. Odwirować zawiesinę.</li>
	<li>Wiruj zawieszenie VLP przez 5 - 10 s w wirówce stołowej w celu odgazowania. Pomaga to zapobiegać tworzeniu się pęcherzyków podczas obróbki cieplnej, które zakłócają pomiary wielkości.</li>
	<li>Przenieś zawiesinę VLP do kuwety kwarcowej o małej objętości - unikaj pęcherzyków i powoli pipetuj przy ściance kuwety. Gdy przyrząd osiągnie równowagę temperaturową, włóż kuwetę do komory na próbkę.</li>
	<li>Odczekaj 10 sekund, aż temperatura próbki się zrównoważy, a następnie rozpocznij bieg. Uruchom stoper na początku biegu. Zatrzymaj minutnik na końcu pierwszego pomiaru. Potraktuj ten czas jako pierwszy punkt czasowy. Uzyskiwanie kolejnych punktów czasowych z czasów pomiarów zarejestrowanych przez oprogramowanie.</li>
	<li>Rozpocznij przebieg i monitoruj korelogram, dopasowanie dystrybucji i porady ekspertów, aby ocenić jakość danych. 
	UWAGA: PDI dla tych pomiarów niekoniecznie będzie mniejsze niż 0,3, ponieważ oczekuje się, że próbka będzie polidyspersyjna podczas agregacji.
	<ol>
		<li>Upewnij się, że współczynnik korelacji jest stały i bliski, ale nie większy niż 1 w krótkim czasie, i gwałtownie spada w jednym lub kilku późniejszych momentach, charakterystycznych dla wielkości cząstek.</li>
		<li>Upewnij się, że linia dopasowania rozkładu ściśle podąża za punktami danych.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przeanalizuj dane dotyczące rozmiaru.
	<ol>
		<li>Określ każdy punkt czasowy na podstawie różnicy czasu między każdym pomiarem a początkowym punktem czasowym. Nie wszystkie czasy pomiaru są dokładnie takie same.</li>
		<li>Korzystając z rozkładu intensywności, zapisz rozmiar pików z największymi obszarami dla każdego pomiaru/punktu czasowego.</li>
		<li>Wykreślić średnice pików w nm w funkcji czasu w min.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. Przygotowanie próbki TEM
<ol>
	<li>Uzyskać kratki z włókna węglowego (nikiel) przeznaczone do TEM. 
	UWAGA: Skonsultuj się z podstawową placówką w sprawie zalecanych odczynników i obchodzenia się z nimi do użytku z mikroskopem w placówce. Pamiętaj, aby przechowywać kratki w pudełku zawierającym środek osuszający lub komorze próżniowej, aby zminimalizować narażenie na wilgoć.</li>
	<li>Rozerwij kawałki bibuły filtracyjnej o wymiarach około 5 cm x 5 cm. Zaopatrz się w szklane szalki Petriego i odpowiednią samozamykającą się pęsetę odwrotną przeznaczoną do użytku w mikroskopii.</li>
	<li>Wytnij około 2,5 cm x 5 cm kawałek folii parafinowej. Umieść na blacie.</li>
	<li>Obróbka cieplna norowirusa GII.4 Kapsydy Sydney
	<ol>
		<li>Postępuj zgodnie z procedurą obróbki cieplnej dokładnie tak, jak opisano powyżej w krokach 1.1.1 - 1.1.5, z wyjątkiem: użyj 10 mM HEPES (pH 7,4) do obróbki zamiast PBS i nie rozcieńczaj dalej kapsydów po zabiegu (utrzymuj roztwór na poziomie 50 μg/ml). Odpipetować całą kroplę ~15 μl poddanego działaniu kapsydu na folię parafinową.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Chwyć krawędź siatki pęsetą, pozwalając im zamknąć się na krawędzi, aby przytrzymać siatkę, i umieść siatkę stroną węglową do dołu na kropli potraktowanego roztworu. Pozostawić do inkubacji na 10 minut, aby kapsyd mógł przyczepić się do siatki.
	<ol>
		<li>W zależności od czystości preparatu kapsydu, w razie potrzeby dodać popłuczyny 10 mM roztworu HEPES w postaci kropelek o objętości 10-15 μl umieszczonych w jednej linii za kroplą kapsydu poddanej działaniu kapsydu.</li>
		<li>Po 10 minutach podnieś siatkę z kroplą. Umieść siatkę prawie prostopadle do kawałka bibuły filtracyjnej, aby odprowadzić kroplę. Zbierz kroplę 10 - 15 μl buforu HEPES za pomocą siatki, przytrzymaj przez 30 sekund, a następnie odchwać kolejnym kawałkiem bibuły filtracyjnej do umycia.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Umieść 15 μl kropli 2% roztworu octanu uranylu na folii parafinowej w pustym miejscu.
	<ol>
		<li>Podnieś kroplę octanu uranylu za pomocą siatki i przytrzymaj przez 45 sekund. Odchować octan uranylu, upewniając się, że usunąłeś większość roztworu. Umieść siatkę stroną węglową do góry na kawałku bibuły filtracyjnej, uważając, aby siatka nie "przykleiła się" do wilgoci na pęsetze. Umieść bibułę filtracyjną z siatką na otwartej szklanej szalce Petriego. 
		UWAGA: Nie używaj plastikowych szalek Petriego, ponieważ siatki zostaną do nich przyciągnięte elektrostatycznie i przykleją się do naczynia.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Powtórz dla wszystkich zabiegów. Umieść połówki szalki Petriego wraz z kratkami w eksykatorze na noc do wyschnięcia przed obserwacją za pomocą TEM.</li>
	<li>Skonsultuj się z zakładem mikroskopowym w odpowiedniej instytucji w sprawie obserwacji przygotowanych siatek. Niektóre obiekty pozwalają użytkownikowi na przeszkolenie w zakresie obsługi przyrządu w jego placówce. Szczegółowe informacje na temat konfiguracji i obserwacji konkretnego mikroskopu wykraczają poza zakres tego artykułu.</li>
</ol>

<ol><li>Kirk, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((World+Health+Organization+estimates+of+the+global+and+regional+disease+burden+of+11+foodborne+bacterial%2C+protozoal%2C+and+viral+diseases%2C+2010%3A+A+data+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Med%22%5BJournal%5D)">World Health Organization estimates of the global and regional disease burden of 11 foodborne bacterial, protozoal, and viral diseases, 2010: A data synthesis.</a> PLOS Med. 12 (12), e1001920(2015).</li>
<li>Scharff, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Economic+burden+from+health+losses+due+to+foodborne+illness+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Food+Prot%22%5BJournal%5D)">Economic burden from health losses due to foodborne illness in the United States.</a> J. Food Prot. 75 (1), 123-131 (2012).</li>
<li>Lee, B. Y., Mcglone, S. M., Bailey, R. R., Zachary, S., Umscheid, C. A., Muder, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Economic+impact+of+outbreaks+of+norovirus+infection+in+hospitals%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Control+Hosp.+Epidemiol%22%5BJournal%5D)">Economic impact of outbreaks of norovirus infection in hospitals.</a> Infect. Control Hosp. Epidemiol. 32 (2), 191-193 (2011).</li>
<li>Law, J. W. -F., Ab Mutalib, N. -S., Chan, K. -G., Lee, L. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+methods+for+the+detection+of+foodborne+bacterial+pathogens%3A+principles%2C+applications%2C+advantages+and+limitations%5BTitle%5D)+AND+%22Front.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Rapid methods for the detection of foodborne bacterial pathogens: principles, applications, advantages and limitations.</a> Front. Microbiol. 5, 770(2015).</li>
<li>Jones, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enteric+bacteria+promote+human+and+mouse+norovirus+infection+of+B+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Enteric bacteria promote human and mouse norovirus infection of B cells.</a> Science. 346 (6210), 755-759 (2014).</li>
<li>Ettayebi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replication+of+human+noroviruses+in+stem+cell+-+derived+human+enteroids%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Replication of human noroviruses in stem cell - derived human enteroids.</a> Science. 5211, (2016).</li>
<li>Moore, M. D., Goulter, R. M., Jaykus, L. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+norovirus+as+a+foodborne+pathogen%3A+challenges+and+developments%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Food+Sci.+Technol%22%5BJournal%5D)">Human norovirus as a foodborne pathogen: challenges and developments.</a> Annu. Rev. Food Sci. Technol. 6 (1), 411-433 (2015).</li>
<li>Miura, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histo-blood+group+antigen-like+substances+of+human+enteric+bacteria+as+specific+adsorbents+for+human+noroviruses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Histo-blood group antigen-like substances of human enteric bacteria as specific adsorbents for human noroviruses.</a> J. Virol. 87 (17), 9441-9451 (2013).</li>
<li>Almand, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+norovirus+binding+to+select+bacteria+representative+of+the+human+gut+microbiota%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+One%22%5BJournal%5D)">Human norovirus binding to select bacteria representative of the human gut microbiota.</a> Plos One. 12 (3), e0173124(2017).</li>
<li>Rubio-del-Campo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noroviral+P-Particles+as+an+in+vitro+model+to+assess+the+interactions+of+noroviruses+with+probiotics%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Noroviral P-Particles as an in vitro model to assess the interactions of noroviruses with probiotics.</a> PLoS ONE. 9 (2), e89586(2014).</li>
<li>Hirneisen, K. A., Kniel, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+ELISA+attachment+and+infectivity+assays+for+murine+norovirus%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Comparison of ELISA attachment and infectivity assays for murine norovirus.</a> J. Virol. Methods. 186 (1-2), 14-20 (2012).</li>
<li>Dancho, B. A., Chen, H., Kingsley, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discrimination+between+infectious+and+non-infectious+human+norovirus+using+porcine+gastric+mucin%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Food+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Discrimination between infectious and non-infectious human norovirus using porcine gastric mucin.</a> Int. J. Food Microbiol. 155 (3), 222-226 (2012).</li>
<li>Li, X., Chen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+porcine+gastric+mucin+binding+assay+for+high-pressure-inactivation+studies+using+murine+norovirus+and+Tulane+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the porcine gastric mucin binding assay for high-pressure-inactivation studies using murine norovirus and Tulane virus.</a> Appl. Environ. Microbiol. 81 (2), 515-521 (2015).</li>
<li>Lou, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-pressure+inactivation+of+human+norovirus+virus-like+particles+provides+evidence+that+the+capsid+of+human+norovirus+is+highly+pressure+resistant%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">High-pressure inactivation of human norovirus virus-like particles provides evidence that the capsid of human norovirus is highly pressure resistant.</a> Appl. Environ. Microbiol. 78 (15), 5320-5327 (2012).</li>
<li>Wang, D., Tian, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+conditions+for+human+norovirus+measured+by+an+in+situ+capture-qRT-PCR+method%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Food+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Inactivation conditions for human norovirus measured by an in situ capture-qRT-PCR method.</a> Int. J. Food Microbiol. 172, 76-82 (2014).</li>
<li>Wang, D., Xu, S., Yang, D., Young, G. M., Tian, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+in+situ+capture+quantitative+%28real-time%29+reverse+transcription-PCR+method+as+an+alternative+approach+for+determining+inactivation+of+Tulane+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">New in situ capture quantitative (real-time) reverse transcription-PCR method as an alternative approach for determining inactivation of Tulane virus.</a> Appl. Environ. Microbiol. 80 (7), 2120-2124 (2014).</li>
<li>Moore, M. D., Bobay, B. G., Mertens, B., Jaykus, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+norovirus+aptamer+exhibits+high+degree+of+target+conformation-dependent+binding+similar+to+that+of+receptors+and+discriminates+particle+functionality%5BTitle%5D)+AND+%22mSphere%22%5BJournal%5D)">Human norovirus aptamer exhibits high degree of target conformation-dependent binding similar to that of receptors and discriminates particle functionality.</a> mSphere. 1 (6), e00298-e00216 (2016).</li>
<li>Moore, M. D., Escudero-Abarca, B. I., Suh, S. H., Jaykus, L. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+and+characterization+of+nucleic+acid+aptamers+targeting+the+capsid+P+domain+of+a+human+norovirus+GII.4+strain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Generation and characterization of nucleic acid aptamers targeting the capsid P domain of a human norovirus GII.4 strain.</a> J. Biotechnol. 209, 41-49 (2015).</li>
<li>Kitamoto, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-Reactivity+among+Several+Recombinant+Calicivirus+Virus-Like+Particles+%28VLPs%29+with+Monoclonal+Antibodies+Obtained+from+Mice+Immunized+Orally+with+One+Type+of+VLP%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Cross-Reactivity among Several Recombinant Calicivirus Virus-Like Particles (VLPs) with Monoclonal Antibodies Obtained from Mice Immunized Orally with One Type of VLP.</a> J. Clin. Microbiol. 40 (7), 2459-2465 (2002).</li>
<li>Giamberardino, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasensitive+norovirus+detection+using+DNA+aptasensor+technology%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Ultrasensitive norovirus detection using DNA aptasensor technology.</a> PloS one. 8 (11), e79087(2013).</li>
<li>Beier, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selection+of+a+DNA+aptamer+against+norovirus+capsid+protein+VP1%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiol.+Lett%22%5BJournal%5D)">Selection of a DNA aptamer against norovirus capsid protein VP1.</a> FEMS Microbiol. Lett. 351 (2), 162-169 (2014).</li>
<li>Escudero-Abarca, B. I., Suh, S. H., Moore, M. D., Dwivedi, H. P., Jaykus, L. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selection%2C+characterization+and+application+of+nucleic+acid+aptamers+for+the+capture+and+detection+of+human+norovirus+strains%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Selection, characterization and application of nucleic acid aptamers for the capture and detection of human norovirus strains.</a> PloS one. 9 (9), e106805(2014).</li>
<li>Bhattacharjee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DLS+and+zeta+potential+-+What+they+are+and+what+they+are+not%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+Control.+Release%22%5BJournal%5D)">DLS and zeta potential - What they are and what they are not?</a> Journal Control. Release. 235, 337-351 (2016).</li>
<li>Khodabandehloo, A., Chen, D. D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Particle+sizing+methods+for+the+detection+of+protein+aggregates+in+biopharmaceuticals%5BTitle%5D)+AND+%22Bioanalysis%22%5BJournal%5D)">Particle sizing methods for the detection of protein aggregates in biopharmaceuticals.</a> Bioanalysis. 9 (3), 313-326 (2017).</li>
<li>Mattle, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+virus+aggregation+on+inactivation+by+peracetic+acid+and+implications+for+other+disinfectants%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Sci.+Technol%22%5BJournal%5D)">Impact of virus aggregation on inactivation by peracetic acid and implications for other disinfectants.</a> Environ. Sci. Technol. 45, 7710-7717 (2011).</li>
<li>Samandoulgou, I., Fliss, I., Jean, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zeta+potential+and+aggregation+of+virus-like+particle+of+human+norovirus+and+feline+calicivirus+under+different+physicochemical+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Environ.+Virol%22%5BJournal%5D)">Zeta potential and aggregation of virus-like particle of human norovirus and feline calicivirus under different physicochemical conditions.</a> Food Environ. Virol. 7 (3), 249-260 (2015).</li>
<li>Mertens, B. S., Velev, O. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+matter+norovirus+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Soft matter norovirus interactions.</a> Soft Matter. 11, 8621-8631 (2015).</li>
<li>Panyukov, Y., Yudin, I., Drachev, V., Dobrov, E., Kurganov, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+study+of+amorphous+aggregation+of+tobacco+mosaic+virus+coat+protein+by+dynamic+light+scattering%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+Chem%22%5BJournal%5D)">The study of amorphous aggregation of tobacco mosaic virus coat protein by dynamic light scattering.</a> Biophys. Chem. 127 (1-2), 9-18 (2007).</li>
<li>Moore, M. D., Escudero-Abarca, B. I., Jaykus, L. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Enzyme-Linked+Aptamer+Sorbent+Assay+to+Evaluate+Aptamer+Binding%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">An Enzyme-Linked Aptamer Sorbent Assay to Evaluate Aptamer Binding.</a> Methods in Molecular Biology. 1575, 291-302 (2017).</li>
<li>Langlet, J., Gaboriaud, F., Gantzer, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+pH+on+plaque+forming+unit+counts+and+aggregation+of+MS2+bacteriophage%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Effects of pH on plaque forming unit counts and aggregation of MS2 bacteriophage.</a> J. Appl. Microbiol. 103, 1632-1638 (2007).</li>
<li>Manuel, C. S., Moore, M. D., Jaykus, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Destruction+of+the+Capsid+and+Genome+of+GII.4+Human+Norovirus+Occurs+during+Exposure+to+Metal+Alloys+Containing+Copper%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Destruction of the Capsid and Genome of GII.4 Human Norovirus Occurs during Exposure to Metal Alloys Containing Copper.</a> Appl. Environ. Microbiol. 81 (15), 4940-4946 (2015).</li>
<li>Warnes, S. L., Summersgill, E. N., Keevil, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+of+murine+norovirus+on+a+range+of+copper+alloy+surfaces+is+accompanied+by+loss+of+capsid+integrity%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Inactivation of murine norovirus on a range of copper alloy surfaces is accompanied by loss of capsid integrity.</a> Appl. Environ. Microbiol. , (2014).</li>
<li>Manuel, C., Moore, M. D., Jaykus, L. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+of+a+disinfectant+containing+silver+dihydrogen+citrate+against+GI.6+and+GII.4+human+norovirus%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Efficacy of a disinfectant containing silver dihydrogen citrate against GI.6 and GII.4 human norovirus.</a> J. Appl. Microbiol. 122 (1), 78-86 (2017).</li>
<li>Green, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Avidin+and+streptavidin%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Avidin and streptavidin.</a> Methods Enzymol. 184, 51-67 (1990).</li>
<li>Kingsley, D. H., Vincent, E. M., Meade, G. K., Watson, C. L., Fan, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+of+human+norovirus+using+chemical+sanitizers%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Food+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Inactivation of human norovirus using chemical sanitizers.</a> Int. J. Food Microbiol. 171, 94-99 (2014).</li>
<li>Tian, P., Yang, D., Quigley, C., Chou, M., Jiang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inactivation+of+the+Tulane+virus%2C+a+novel+surrogate+for+the+human+norovirus%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Food+Prot%22%5BJournal%5D)">Inactivation of the Tulane virus, a novel surrogate for the human norovirus.</a> J. Food Prot. 76 (4), 712-718 (2013).</li>
<li>Li, D., Baert, L., Van Coillie, E., Uyttendaele, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+studies+on+binding-based+RT-PCR+detection+of+infectious+noroviruses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Critical studies on binding-based RT-PCR detection of infectious noroviruses.</a> J. Virol. Methods. 177 (2), 153-159 (2011).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Opisany tutaj protokół i techniki umożliwiają ocenę integralności/funkcjonalności ludzkiego norowirusa kapsydu. Metody te mogą być wykorzystane do uzyskania mechanistycznego wglądu w efekty leczenia inaktywacją wirusa i mogą potencjalnie uzupełnić bardziej tradycyjne metody oceny inaktywacji, takie jak RT-qPCR lub test płytki nazębnej. Na przykład ocena chemicznej lub fizycznej inaktywacji za pomocą samego testu płytki miażdżycowej dostarcza miary stopnia inaktywacji wirusa, ale nie mechanizmu leżącego u podstaw tej inak...

Ludzki norowirus jest odpowiedzialny za znaczne obciążenie zdrowia publicznego na całym świecie, powodując około 685 milionów chorób i 212 000 zgonów rocznie1, co kosztuje miliardy dolarów2,3. Obecnie wykrywanie i kwantyfikacja norowirusów obejmuje amplifikację genomu i/lub platformy oparte na ligandach. Ta pierwsza opcja jest ogólnie preferowana, ponieważ jest bardziej czuła, dostarcza informacji ilościowych i ma ogólnie mniejsze ryzyko wyników fałszywie dodatnich4. Najpowszechniejszą techniką amplifikacji genomu w wykrywaniu i kwantyfikacji norowirusów jest ilościowa reakcja łańcuchowa polimerazy z odwrotną transkryptazą (RT-qPCR). Ponieważ sam RT-qPCR jest ukierunkowany na niewielki segment ludzkiego genomu norowirusa i amplifikuje go, nie jest w stanie rozróżnić cząstek zakaźnych i niezakaźnych, ponieważ wolne genomowe RNA, uszkodzone kapsydy zawierające genomy i kapsydy ze śmiertelnie zmutowanymi/skróconymi genomami mogą być nadal amplifikowane przez RT-qPCR. Chociaż niedawno zgłoszono dwie nowe techniki hodowli in vitro dla ludzkiego norowirusa5,6, obie nadal opierają się na RT-qPCR do kwantyfikacji wirusa i nie są jeszcze wykonalnymi metodami do rutynowych testów klinicznych/środowiskowych dla ludzkich norowirusów. W związku z tym RT-qPCR pozostaje złotym standardem w testach klinicznych/środowiskowych.
Inne metody in vitro zostały opracowane w celu lepszego oszacowania statusu zakaźności cząsteczek norowirusa. Metody te można ogólnie sklasyfikować jako te, które dotyczą integralności kapsydu norowirusa i te, które oceniają integralność genomu. Pierwsze podejście jest bardziej popularne. Powszechnie stosowaną metodą jest wstępne leczenie RNazą przed ekstrakcją genomowego RNA wirusa, jednak nie uwzględnia to cząstek wirusa, które pozostają nienaruszone, ale nie mają zdolności wiązania receptorów/kofaktorów gospodarza, a także cząstek wirusa, które uległy śmiertelnej mutacji lub mają skrócone lub marginalnie uszkodzone genomy7. Integralność kapsydu można również ocenić na podstawie zdolności wirusa do wiązania się z ludzkimi koreceptorami/kofaktorami norowirusa, które są węglowodanami znanymi jako antygeny grup krwi (HBGA). HBGA są obecne w komórkach nabłonka jelitowego gospodarza jako część glikoprotein lub glikolipidów (wśród wielu innych tkanek) i mogą być wydzielane w płynach ustrojowych, takich jak ślina. Wykazano również, że bakterie jelitowe zawierające na swojej powierzchni substancje podobne do HBGA wiążą ludzkiego norowirusa8,9,10, a takie interakcje mogą sprzyjać infekcji norowirusem5. Podstawowa koncepcja wykorzystania wiązania HBGA polega na tym, że tylko cząsteczki wirusa zdolne do wiązania domniemanego receptora / kofaktora byłyby zdolne do infekowania komórek. Liczne badania sugerują, że wiązanie HBGA na podstawie koralików poprzedzające amplifikację kwasu nukleinowego jest obiecującą metodą dyskryminacji zakaźności11,12,13,14,15,16. Głównym wyzwaniem związanym z HBGA jest to, że żaden pojedynczy typ HBGA nie jest w stanie związać wszystkich ludzkich genotypów norowirusa. Aby temu zaradzić, mucyna żołądkowa świń, która zawiera HBGA, została użyta zamiast oczyszczonych węglowodanów HBGA w interesie łatwości syntezy, spójności i obniżenia kosztów.
Niedawna publikacja Moore'a i wsp.17 wprowadził zestaw nowych technik szacowania integralności ludzkiego kapsydu norowirusa. Zamiast HBGA, Moore i wsp.17 zbadał wiązanie szeroko reaktywnego aptamera kwasu nukleinowego (M6-2)18 i szeroko reaktywnego przeciwciała monoklonalnego (NS14)19 z poddanymi obróbce termicznej kapsydami norowirusa z Sydney (cząstkami wirusopodobnymi lub VLP) i porównał to z wiązaniem z syntetycznymi HBGA. Aptamery kwasów nukleinowych to krótkie (~20 - 80 nt) jednoniciowe kwasy nukleinowe (ssDNA lub RNA), które w wyniku swojej sekwencji składają się w unikalne trójwymiarowe struktury i wiążą cel. Ponieważ są to kwasy nukleinowe, są mniej kosztowne; łatwo syntetyzowany chemicznie, oczyszczany i modyfikowany; i stabilny na ciepło. Istnieje kilka doniesień o aptamerach generowanych przeciwko norowirusom, a niektóre z nich wykazują szeroką reaktywność na różne szczepy18,20,21,22. Na przykład Moore i wsp.17 wykazał, że aptamer M6-2 wiąże się z oczyszczonymi, złożonymi ludzkimi kapsydami norowirusa (VLP) i zachowuje się podobnie do HBGA w zależności od kapsydu wirusa, aby utrzymać strukturę białka wyższego rzędu (np. drugorzędową i trzeciorzędową) do wystąpienia wiązania. Z drugiej strony, znaczna część wiązania norowirusa VLP z przeciwciałem NS14 pozostała po całkowitej denaturacji kapsydów. Ocena wiązania norowirusa w badaniu Moore'a i wsp.17 został wykonany przy użyciu prostej, opartej na płytce metody podobnej do ELISA, z wyjątkiem tego, że aptamery są używane zamiast przeciwciał (stąd metoda została nazwana ELASA). Ta wysokoprzepustowa metoda eksperymentalna została wykorzystana do oceny wpływu różnych metod leczenia na kapsyd norowirusa, co jest cenne dla zrozumienia mechanizmu inaktywacji wirusa po ekspozycji na fizyczne lub chemiczne czynniki stresogenne. Jednak jedną z wad tej metody jest mniejsza czułość i brak tolerancji dla zanieczyszczeń związanych z matrycą na wyższych poziomach, które powodują niespecyficzne wiązanie przez aptamery.
Moore et al.17 użył innej metody, dynamicznego rozpraszania światła (DLS), do monitorowania agregacji cząstek wirusa w odpowiedzi na obróbkę cieplną. DLS jest powszechnie używany do oceny wielkości zawiesin nanocząstek i został rozszerzony na białka23,24 i wirusy25,26,27. Intensywność światła rozproszonego przez cząstki w roztworze zmienia się w funkcji wielkości cząstek, co pozwala na obliczenie współczynnika dyfuzji, a następnie średnicy cząstek przy użyciu dobrze znanych wzorów. Technika DLS pozwala na rozróżnienie średnicy hydrodynamicznej rozproszonych cząstek aż do nanoskali, co pozwala na wykrywanie rozproszonych wirusów, pojedynczych białek kapsydu lub dimerów oraz agregatów wirusów na podstawie size27. Agregacja wirusa, reprezentowana przez wzrost wielkości cząstek, wskazuje na utratę integralności kapsydu. Gdy kapsyd ulega denaturacji, a jego struktura zostaje zakłócona, pozostałości hydrofobowe zostają odsłonięte i powodują sklejanie się cząstek i tworzenie agregatów. DLS może być używany do pomiaru wielkości cząstek po określonym traktowaniu lub kinetyki agregacji w czasie rzeczywistym17,28. Metoda ta ma tę zaletę, że umożliwia obserwację zachowania kapsydu w roztworze, ale wymaga wysokich stężeń oczyszczonego kapsydu, który może nie być w pełni reprezentatywny dla wirusa w jego naturalnym stanie.
Ostatnia metoda wykorzystana przez Moore'a i wsp.17 to transmisyjna mikroskopia elektronowa (TEM). Chociaż metoda ta nie jest czuła i nie daje danych ilościowych, pozwala na wizualizację wpływu różnych zabiegów na strukturę kapsydu wirusa. Chociaż nie jest to jeszcze idealne rozwiązanie w warunkach klinicznych/środowiskowych, zastosowanie tych metod w połączeniu jest cenne w zrozumieniu inaktywacji ludzkiego norowirusa. Celem tego artykułu jest przedstawienie szczegółowych protokołów dla metod przygotowania testu wiązania na płytkach (ELASA), DLS i TEM stosowanych do badania wpływu obróbki cieplnej na kapsyd norowirusa w kontekście wpływu leczenia na integralność kapsydu, jak przedstawiono w Moore i wsp.17.

<table><tbody><tr><td>Test wiązania oparty na płytce do oceny utraty struktury kapsydu norowirusa wyższego rzędu</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>96-well, średnio wiążąca płytka EIA z polistyrenu</td><td>Fisher (Costar)</td><td>07-200-36</td><td></td></tr><tr><td>Pokrywka do płytki 96-dołkowej</td><td>Thermo Fisher</td><td>3098</td><td></td></tr><tr><td>Folia parafinowa (Parafilm)</td><td>Thermo Fisher</td><td>PM999</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS (pH 7,2)</td><td>Life Technologies</td><td>20012-050</td><td></td></tr><tr><td>Polisorbat 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9416</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS (pH 7,2) + 0,05% Polisorbat 20</td><td>N/A</td><td>NIE DOTYCZY</td><td></td></tr><tr><td>Oczyszczony, zmontowany ludzki norowirus GII.4 kapsydy</td><td>N/A</td> N<td>/A</td><td></td></tr><tr><td>Indywidualne probówki PCR 0,2 ml</td><td>Genesee Scientific</td><td>22-154G</td><td></td></tr><tr><td>2 termocyklery</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td></td>1861096</tr><tr><td>Mini wirówka stołowa</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-006-901</td><td></td></tr><tr><td>Odtłuszczone mleko w suchej masie</td><td>Thermo Fisher</td><td>LP0031B</td> Syntetyczny disacharyd histo-grupy krwi typu A<td></td></tr><tr><td>, biotynylowany</td><td>Glycotech</td><td>01-017</td><td></td></tr><tr><td>Biotynylowany aptamer M6-2 (stężenie podstawowe 100 &mikro; M w wodzie wolnej od nukleaz): 5'-/5Biosg/AGTATACGTATTACCTGCAGCTGGGAAGAGGTGTCCGGTAAATGCAGGGTCAGCCCGGAGAGCGATATCTCGGAGATCTTGC -3'</td><td>Integrated DNA Technologies</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>koniugat streptawidyny-peroksydazy chrzanowej (ocena ELISA), Używamy Life Technologies SNN2004</td><td>Life Technologies</td><td>SNN2004</td><td></td></tr><tr><td>substratu 3,3',5,5'-tetrametylobenzydyny (TMB), temperatura pokojowa</td><td>Thermo Fisher</td><td>50-76-00</td><td></td></tr><tr><td>1 M kwas fosforowy</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Czytnik mikropłytek zdolny do odczytu 450 nm</td><td>Tecan</td><td>Infinite m200 Pro</td><td></td></tr><tr><td>Nazwa</td><td>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td>Uwagi</td></tr><tr><td>Analiza wyników testów płytkowych</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microsoft Excel lub podobny program</td><td>Nie dotyczy</td><td></td> <td>Nie dotyczy</td></tr><tr><td>Nazwa<</td><td>strong>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td>Komentarze</td></tr><tr><td>Eksperymenty z dynamicznym rozpraszaniem światła</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zetasizer ZSP lub podobny przyrząd do analizy wielkości cząstek</td><td>Malvern Instruments</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Fisher Scientifc</td><td>02-215-365</td><td></td></tr><tr><td>Kuweta kwarcowa</td><td>Hellma</td><td>104-002-10-40</td><td></td></tr><tr><td>Kuweta jednorazowa o małej pojemności (w celu zmniejszenia zużycia VLP)</td><td>Malvern Instruments</td><td>ZEN0040</td><td></td></tr><tr><td>Nazwa</td><td>Firma</td><td>Numer katalogowy</td><td>Komentarze</td></tr><tr><td>Transmisyjna mikroskopia elektronowa Przygotowanie próbki</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Siatki mikroskopii elektronowej niklu z folią węglową</td><td>Ladd Research</td><td>10880-100</td><td></td></tr><tr><td>Pęseta do samozamykającej się mikroskopii elektronowej z odwróconym</td> ekranem <td>Ted Pella</td><td>5372-NM</td><td></td></tr><tr><td>Bibuła filtracyjna jakościowa</td><td>Sigma-Aldrich (Whatman)</td><td>WHA1002055</td><td></td></tr><tr><td>Szkło szalki Petriego</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>BR455743</td><td></td></tr><tr><td>100 mM roztwór HEPES (pH 7,2)</td><td>N/A</td><td>N/D</td><td></td></tr><tr><td>2% octan uranylu</td><td>N/A</td><td>N/D</td><td></td></tr></tbody></table>

alternatywne metody in vitro do oznaczania integralności strukturalnej kapsydu wirusa

Alternative In Vitro Methods for the Determination of Viral Capsid Structural Integrity

Ludzki norowirus powoduje znaczne straty w zdrowiu publicznym i gospodarce na całym świecie. Pojawiające się postępy w uprawie in vitro nie mają jeszcze zastosowania do rutynowego wykrywania wirusa. Obecne techniki wykrywania i kwantyfikacji, które opierają się głównie na amplifikacji kwasów nukleinowych, nie rozróżniają zakaźnych i niezakaźnych cząstek wirusa. Celem niniejszego artykułu jest przedstawienie szczegółowych informacji na temat najnowszych postępów w technikach stosowanych łącznie w celu uzyskania dalszych informacji na temat statusu zakaźności cząstek wirusa. Jedna z technik polega na ocenie wiązania aptameru ssDNA norowirusa z kapsydami. Aptamery mają tę zaletę, że są łatwe do syntezy i modyfikacji, a także niedrogie i stabilne. Inna technika, dynamiczne rozpraszanie światła (DLS), ma tę zaletę, że obserwuje zachowanie kapsydu w roztworze. Mikroskopia elektronowa pozwala na wizualizację integralności strukturalnej kapsydów wirusa. Chociaż jest obiecująca, każda technika ma pewne wady, takie jak niespecyficzne wiązanie aptamerów z dodatnio naładowanymi cząsteczkami z matryc próbek, wymóg oczyszczonego kapsydu dla DLS i słaba czułość dla mikroskopii elektronowej. Niemniej jednak, gdy techniki te są stosowane łącznie, uzyskane dane dostarczają bardziej wyczerpujących informacji na temat integralności kapsydu norowirusa, które można wykorzystać do wnioskowania o zakaźności, informacji, które są niezbędne do dokładnej oceny metod inaktywacji lub interpretacji wykrywania wirusa. W tym artykule przedstawiono protokoły stosowania tych metod do rozróżniania zakaźnych cząstek ludzkiego norowirusa.

Integralność strukturalna kapsydów ludzkiego norowirusa GII.4 Sydney (VLP) została oceniona przy użyciu kilku nowych metod przedstawionych przez Moore et al.17. Po pierwsze, przeprowadzono eksperyment, w którym porównano integralność kapsydów w zależności od ich zdolności do wiązania domniemanego receptora/kofaktora (HBGA) lub aptameru ssDNA (M6-2) (Rycina 1). Przedstawione wyniki zostały wcześniej opublikowane przez Moore <em...

Rutynowe metody wykrywania wykorzystujące amplifikację genomu wirusa są ograniczone przez ich niezdolność do odróżnienia cząsteczek zakaźnych od niezakaźnych. Celem tego artykułu jest przedstawienie szczegółowych protokołów alternatywnych metod wspomagających dyskryminację zakaźnych cząstek norowirusa za pomocą wiązania aptamerów, dynamicznego rozpraszania światła i transmisyjnej mikroskopii elektronowej.

Alternatywne metody in vitro do oznaczania integralności strukturalnej kapsydu wirusa

Human norovirus exacts considerable public health and economic losses worldwide. Emerging in vitro cultivation advances are not yet applicable for routine ...

Ogólnym celem tych metod jest pogłębienie wiedzy na temat wpływu zastosowanej kuracji na zakaźność lub integralność kapsydu ludzkiego norowirusa. Metoda ta może pomóc w udzieleniu odpowiedzi na kluczowe pytania w dziedzinie inaktywacji wirusów bezotoczkowych, takie jak to, co dzieje się ze zdolnością kapsydu wirusowego do zakażania komórki po określonej kuracji.Główną zaletą tych metod jest to, że mogą one dostarczyć dodatkowych informacji mechanistycznych na temat działania danej terapii na wirusa. Chociaż metoda ta pozwala na poznanie strategii inaktywacji ludzkiego norowirusa, może ona zostać zastosowana również w przypadku innych wirusów bezotoczkowych, takich jak rhinowirus czy wirus zapalenia wątroby A.W pierwszej kolejności należy rozcieńczyć oczyszczone główne białko kapsydu ludzkiego norowirusa, zmontowane w kapsydy, do stężenia 50 µg/mL w 1X roztworze soli fizjologicznej z buforem fosforanowym. W poszczególnych zatykanych probówkach do PCR należy użyć maksymalnej objętości 15 µL.Należy upewnić się, że probówka zawiera co najmniej 600 nanogramów kapsydu i że na każdą kombinację ligandu traktującego przypada 600 nanogramów kapsydu. Następnie należy rozgrzać termocykler do pożądanej temperatury obróbki termicznej. Potem należy rozgrzać dodatkowy termocykler do czterech stopni Celsius dla natychmiastowego schłodzenia.Umieść probówki z roztworem kapsydu w termocyklerze na wymagany czas. Po podgrzaniu niezwłocznie przenieś probówki do schłodzonego do 4 °C cyklera na pięć minut. Krótko wiruj probówki w wirówce, aby wszystkie kropelki osadziły się na dnie probówki.Rozcieńcz roztwory traktowanych kapsydów oraz PBS do stężenia 3 µg/mL. Upewnij się, że dysponujesz co najmniej 200 µL rozcieńczonego traktowanego kapsydu. Następnie nanieś 100 µL roztworu kapsydu do każdego dołka, dbając o to, aby dla każdej próby przygotować co najmniej dwa dołki. Dodatkowo, dla każdego liganda uwzględnij dwa dołki kontrolne z 100 µL PBS. Pozwoli to na wyznaczenie absorbancji tła testu. Przykryj płytkę pokrywą i uszczelnij krawędzie folią parafinową, aby ograniczyć parowanie. Pozostaw płytkę na noc w inkubatorze z wytrząsaniem w temperaturze 4 °C lub na dwie godziny w temperaturze pokojowej.Po inkubacji należy usunąć z płytki roztwory kapsydów poddanych działaniu preparatów. Następnie do każdego dołka należy dodać 200 µL buforu blokującego. Inkubować przez dwie godziny w temperaturze pokojowej lub w szczelnie zamkniętym pojemniku w temperaturze 4 °C przez noc.W międzyczasie rozcieńczyć biotynilowany aptamer do stężenia 1 µM w wodzie wolnej od nukleaz. Należy upewnić się, że przygotowano wystarczającą ilość roztworu, aby uzyskać łącznie 200 µL dla każdej serii badawczej.Należy również rozcieńczyć wybrany biotynylatowy HPGA do stężenia 30 µL/mL w buforze blokującym. Ponownie należy upewnić się, że przygotowano wystarczającą ilość roztworu, aby uzyskać całkowitą objętość 200 µL dla każdej serii badawczej.Po inkubacji należy usunąć bufor blokujący i trzykrotnie przemyć płytkę, używając 200 µL PBST na dołek. Osuszyć płytkę, odkładając ją do góry dnem na sterylnym ręczniku papierowym w celu usunięcia pozostałej wilgoci. Następnie, aplikując 100 µL roztworów wiążących ligand na dołek i zapewniając dwa dołki dla każdej kombinacji obróbki termicznej i ligandu, inkubować przykrytą płytkę na wytrząsarce orbitalnej przy prędkości około 60 RPM przez jedną godzinę w temperaturze pokojowej.Po wypłukaniu dołków zgodnie z opisem w protokole tekstowym, należy dodać do każdego dołka 100 µL streptawidyny znakowanej peroksydazą chrzanową w stężeniu 0,2 µg/mL w PBS.Inkubować przez 15 minut w temperaturze pokojowej przy łagodnym wstrząsaniu na wytrząsarce orbitalnej przed ponownym przemyciem dołków. Następnie, po kolejnym przemyciu, dodać 100 µL substratu TMB do każdego dołka i pozostawić do rozwoju barwy przez okres od 5 do 15 minut. Obserwować pojawienie się barwy w dołkach.Należy zadbać o zachowanie jednakowego czasu wywoływania dla wszystkich płyt powtórzeń oraz uwzględnić zakres absorbancji używanego czytnika płytek. Reakcję wywoływania należy zatrzymać, dodając 100 µL 1 M kwasu fosforowego do każdej studzienki. Następnie należy niezwłocznie odczytać płytkę przy 450 nm.Utwórz nową standardową procedurę operacyjną dla rozmiaru w oprogramowaniu instrumentu DLS, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Następnie wybierz zieloną strzałkę uruchamiania w oprogramowaniu i nadaj nazwę próbce.Rozcieńcz poddane obróbce termicznej cząstki wirusopodobne (VLP) w stosunku 1:10 w 1X PBS, aby uzyskać końcowe stężenie 5 µg/mL. Następnie przefiltruj próbkę przez filtr o rozmiarze porów 1 µm w celu usunięcia cząsteczek kurzu. Metoda DLS jest bardzo czuła na obecność kurzu, ponieważ duże cząstki rozpraszają znacznie więcej światła niż cząstki małe. Przenieś 50 µL rozcieńczonych VLP do jednorazowej kuwety o małej objętości. Włóż kuwetę do komory pomiarowej urządzenia. Rozpocznij pomiar i skorzystaj z zakładek dopasowania kumulantów korelogramu oraz porad eksperckich w celu oceny jakości danych. Podczas pomiaru sprawdź, czy wskaźnik polidyspersyjności wynosi mniej niż 0,3, co świadczy o wysokiej jakości pomiaru.W zakładce Multiview należy upewnić się, że współczynnik korelacji jest stały i bliski jedności (ale nie przekracza jej) w krótkim czasie, a następnie gwałtownie spada do zera w późniejszym czasie, co jest charakterystyczne dla wielkości cząstek. W celu uzyskania informacji zwrotnej na temat jakości danych podczas pomiarów należy korzystać z zakładki expert advice. Po zakończeniu pomiaru należy ponownie sprawdzić, czy wskaźnik polidyspersyjności jest mniejszy niż 0,3.Upewnij się, że linia dopasowania kumulantów ściśle pokrywa się z punktami danych w zakładce dopasowania kumulantów. Utwórz nową standardową procedurę operacyjną rozmiaru w oprogramowaniu instrumentu DLS, zgodnie ze szczegółowym opisem w protokole tekstowym. Wybierz strzałkę uruchamiania w oprogramowaniu, aby otworzyć i nazwać nową próbkę, a następnie poczekaj, aż instrument osiągnie równowagę temperaturową.Przenieś zawiesinę VLP do kwarcowej kuwety o małej objętości, unikając tworzenia pęcherzyków powietrza i pipetując powoli wzdłuż ścianki kuwety. Po osiągnięciu równowagi termicznej przez instrument, włóż kuwetę do komory pomiarowej. Po odczekaniu 10 sekund w celu wyrównania temperatury próbki, rozpocznij pomiar i jednocześnie uruchom stoper.Zatrzymaj stoper po zakończeniu pierwszego pomiaru. Przyjmij tę wartość jako pierwszy punkt czasowy. Kolejne punkty czasowe uzyskaj z czasów pomiarów zarejestrowanych przez oprogramowanie.Przeprowadzić obróbkę termiczną w sposób opisany wcześniej, z wyjątkiem zastąpienia PBS 10 millimolar HEPES, pH 7,4 oraz z pominięciem dalszego rozcieńczania kapsydów po obróbce. Następnie pipetą nanieść całą 15 mikrolitr kroplę roztworu obrobionych kapsydów na folię parafinową. Chwycić krawędź siatki pęsetą, zamykając ją na brzegu w celu utrzymania siatki, a następnie umieścić siatkę stroną węglową do dołu na kropli obrobionego roztworu.Inkubować siatkę przez 10 minut, aby kapsyd mógł przytwierdzić się do jej powierzchni. W zależności od czystości preparatu kapsydu, przeprowadzić płukanie roztworem HEPES, nakładając od 10 do 15 µL w formie kropli umieszczonych w linii za kroplą z kapsydem. Po 10 minutach pobrać siatkę wraz z kroplą.Umieść siatkę niemal prostopadle do kawałka papieru filtracyjnego, aby odprowadzić kropelkę. Następnie użyj siatki, aby pobrać kropelkę 10 do 15 µL buforu HEPES i przytrzymaj ją przez 30 sekund. Po 30 sekundach płukania odprowadź ciecz za pomocą kolejnego kawałka papieru filtracyjnego.Następnie nanieś 15 µL kropli dwóch procentowego roztworu octanu uranylu na wolny obszar folii parafinowej. Dotknij kropli octanu uranylu siatką i przytrzymaj ją przez 45 sekund. Następnie odciągnij nadmiar octanu uranylu, upewniając się, że usunięto większość roztworu.Umieść siatkę stroną węglową do góry na fragmencie papieru filtrującego, uważając, aby siatka nie przykleiła się do wilgoci na pincecie. Następnie umieść papier filtrujący z siatką w otwartej szklanej płytce Petriego. Po powtórzeniu tego procesu dla wszystkich prób, umieść połówki płytek Petriego z siatkami w eksykatorze na noc w celu wysuszenia przed obserwacją za pomocą TEM.Poniższy wykres przedstawia spadek zdolności wiązania kapsydów ludzkiego norowirusa w czasie podczas obróbki w temperaturze 68°C. Jak widać, wiązanie HPGA jest pierwszym sygnałem, który całkowicie zanika. W tym punkcie przyjmuje się, że zdecydowana większość kapsydów w roztworze utraciła zdolność wiązania HPGAs komórek gospodarza, a w konsekwencji nie mogą one zostać zinternalizowane do wnętrza komórki.Wiązanie aptameru odzwierciedla wiązanie HBGA, choć do usunięcia sygnału wymagana jest nieco intensywniejsza obróbka termiczna. Przedstawiono tutaj krzywą współczynnika korelacji DLS reprezentatywną dla danych dobrej jakości. W czasie bliskim zeru korelogram jest stały, a jego wartość jest bliska jedności, lecz pozostaje poniżej niej.Następnie gwałtownie spada do zera w czasie charakterystycznym dla rozmiaru cząstek. Wynikom wielkości otrzymanym w tym eksperymencie można prawdopodobnie zaufać. Przeciwnie, ta krzywa współczynnika korelacji jest reprezentatywna dla danych słabej jakości.Korelogram rozpoczyna się od wartości powyżej jeden i stopniowo spada do zera. Wyników z tego eksperymentu nie należy wykorzystywać. W tym przypadku dane dotyczące wielkości cząsteczek wykazują wyraźny profil agregacji dla kapsydów traktowanych w temperaturze 68 °C, przy czym superagregaty tworzą się po około 20 minutach.Czas, w którym dochodzi do superagregacji, jest charakterystyczny dla podatności VLP na dane działanie. Rysunek ten przedstawia wyniki TEM dla obróbki termicznej kapsydów ludzkiego norowirusa. W tym przypadku kapsydy poddawano działaniu temperatur od 60 do 80 °C, patrząc od lewej do prawej.Jak widać, morfologia kapsydu wyraźnie zmienia się pod wpływem obróbki, gdyż kapsydy ulegają agregacji i denaturacji. Podobne zjawisko odnotowano w przypadku kapsydów poddanych działaniu temperatury 68 °C przez czas od 0 do 25 minut.Po opanowaniu, techniki te można przeprowadzić w czasie od 1 do 24 godzin, pod warunkiem ich prawidłowego wykonania.Po opracowaniu technika ta zapewniła badaczom w dziedzinie wirulogii żywności dodatkową możliwość zbadania mechanizmów i efektów inaktywacji kapsydu ludzkich norowirusów. Po przeprowadzeniu tej procedury można zastosować inne metody, takie jak RT-PCR w czasie rzeczywistym z obróbką wstępną RNazą lub bez niej, SDS-PAGE kapsydów wirusowych oraz testy płytek z hodowalnymi wirusami zastępczymi, aby uzyskać pełniejszy obraz redukcji wirusów po danym traktowaniu. Po obejrzeniu tego filmu powinni Państwo posiadać dobrą wiedzę na temat wykorzystania wiązania ligandów, dynamicznego rozpraszania światła oraz transmisyjnej mikroskopii elektronowej w celu uzyskania dalszych informacji mechanistycznych na temat wpływu procesu inaktywacji na kapsyd ludzkiego norowirusa.Należy pamiętać, że praca z niektórymi z użytych odczynników może być niebezpieczna, dlatego podczas wykonywania tej procedury zawsze należy przestrzegać środków ostrożności, takich jak stosowanie środków ochrony indywidualnej oraz przestrzeganie najlepszych praktyk bezpieczeństwa laboratoryjnego.

alternative-vitro-methods-for-determination-viral-capsid-structural

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologia i infekcje

Alternatywne in vitro metody do badania integralności strukturalnej kapsydu wirusowego

Przedstawiamy dwukolorowy test fluorescencyjny in vitro, służący do wizualizacji fuzji pojedynczych cząsteczek wirusa z płynną dwuwarstwą docelową. Poprzez znakowanie cząsteczek wirusowych fluoroforami, które różnicowo barwią błonę wirusa oraz jego wnętrze, jesteśmy w stanie monitorować kinetykę hemifuzji i tworzenia się porów.

Metoda pomiaru kinetyki fuzji wirusowej na poziomie pojedynczych cząsteczek

Opisujemy proces izolacji wysokiej czystości DNA nukleokapsydu herpeswirusa z zainfekowanych komórek. Końcowe DNA odzyskane z roztworu charakteryzuje się wysokim stężeniem i czystością, co czyni je idealnym do sekwencjonowania wysokoprzepustowego, reakcji PCR o wysokiej wierności oraz transfekcji w celu otrzymania nowych rekombinantów wirusowych.

Przygotowanie viralnego DNA z nukleokapsydów

Odsłonięcie (uncoating) jest kluczowym etapem wczesnej fazy cyklu życiowego HIV-1 i definiuje się je jako rozpad otoczki kapsydu oraz uwolnienie wirusowego kompleksu rybonukleoproteinowego (vRNP). W niniejszej pracy prezentujemy techniki izolacji nienaruszonych rdzeni z wirionów HIV-1 oraz metody ilościowego oznaczania ich odsłaniania in vitro.

In vitro rozpakowywanie rdzeni HIV-1

Opisano prosty, wydajny i niezawodny sposób synchronizacji dostarczania wielu komponentów wirusowych do komórek roślinnych za pomocą przejściowej ekspresji pośredniczonej przez Agrobacterium. Podejście to umożliwia badanie replikacji i enkapsydacji, a następnie ponowne składanie komponentów niewirusowych in vitro w pozbawione genomu optyczne „duchy” wirusowe (viral ghosts), odpowiednie do zastosowań biomedycznych.

Prosta i niezawodna metoda in vivo oraz in vitro do badania składania wirusów

Dołączanie wirionów do powierzchni jest wymogiem do obrazowania pojedynczego wirionu za pomocą obrazowania fluorescencyjnego w superrozdzielczości lub mikroskopii sił atomowych (AFM). W tym miejscu demonstrujemy metodę przygotowania próbki do kontrolowanej adhezji wirionów do powierzchni szklanych, odpowiednią do stosowania w obrazowaniu AFM i fluorescencji o wysokiej rozdzielczości.

Przygotowanie próbki do mikroskopii sił atomowych pojedynczego wirionu i obrazowania fluorescencyjnego w superrozdzielczości

Tutaj prezentujemy protokół, który bada konkretne etapy wejścia wirusa w celu identyfikacji i oceny nowych środków przeciwwirusowych.

Testy wczesnego wnikania wirusa w celu identyfikacji i oceny związków przeciwwirusowych

Pierwszym krokiem w cyklu życia arenawirusa jest dołączenie cząsteczek wirusa do komórek gospodarza. Przedstawiamy ilościowy test oparty na (q)RT-PCR do ultraczułego wykrywania i ilościowego oznaczania zdarzeń związanych z przyłączeniem arenawirusa.

Bardzo czuły test do pomiaru przyłączenia komórki arenawirusa

Demontaż rdzeni wirusa grypy A podczas wnikania wirusa do komórek gospodarza jest procesem wieloetapowym. Opisujemy metodę in vitro do analizy wczesnych etapów odsłaniania się wirusa. W tym podejściu wirowanie w gradionym tempie służy do biochemicznej analizy etapów, które inicjują odwarstwianie w określonych warunkach.

In vitro Demontaż kapsydów wirusa grypy A przez wirowanie gradientowe

Metoda korelacyjnej mikroskopii elektronów świetlnych (CLEM) jest stosowana do obrazowania indukowanych wirusem struktur wewnątrzkomórkowych za pomocą mikroskopii elektronowej (EM) w komórkach, które zostały wcześniej wybrane przez mikroskopię świetlną (LM). LM i EM są łączone jako hybrydowe podejście do obrazowania w celu uzyskania zintegrowanego obrazu interakcji wirus-gospodarz.

Korelacyjna mikroskopia świetlno-elektronowa (CLEM) do śledzenia i obrazowania struktur związanych z białkami wirusowymi w komórkach unieruchomionych kriogenicznie

Tutaj opisane są protokoły przygotowania zestawów wirusów odpowiednich do analizy ciekłego EM i krio-EM w nanoskali przy użyciu transmisyjnej mikroskopii elektronowej.

Postęp w obrazowaniu w wysokiej rozdzielczości zespołów wirusów w cieczach i lodzie

Poznaj alternatywne metody in vitro do oceny integralności kapsydu wirusa norowego, w tym wiązanie aptamerów, dynamiczne rozpraszanie światła i mikroskopię elektronową. Techniki te umożliwiają rozróżnienie cząstek zakaźnych od niezakaźnych.

Alternatywne metody in vitro do oznaczania integralności strukturalnej kapsydu wirusa

Przeglądaj więcej filmów