September 4th, 2017
Ten protokół demonstruje indukcję choroby malformacji jamistych mózgu w modelu mysim i wykorzystuje mikrotomografię komputerową wzmocnioną kontrastem do pomiaru obciążenia zmianami. Metoda ta zwiększa wartość uznanych modeli mysich w celu zbadania podstaw molekularnych i potencjalnych terapii malformacji jamistych mózgu i innych chorób naczyń mózgowych.
Ogólnym celem tej procedury jest wywołanie malformacji jamistych mózgu u nowonarodzonych myszy i zmierzenie obciążenia chorobą za pomocą mikrotomografii komputerowej. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie chorób naczyń mózgowych, takie jak malformacje jamiste mózgu. Główną zaletą tej techniki jest to, że obciążenie chorobami jamistymi mózgu w modelach noworodków myszy można dokładnie i skutecznie określić w porównaniu z istniejącymi metodami.
Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ indukcja malformacji jamistych mózgu i etapy analizy mikro-CT są trudne do nauczenia, ponieważ wymagają doświadczenia i użycia zaawansowanego oprogramowania. Zacznij od rozpuszczenia 4-HT w 100% etanolu do stężenia 10 miligramów na mililitr. Przygotuj 30 mikrolitrów alaquadów, a następnie przechowuj w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza.
W dniu użycia rozcieńczyć alaquad w 4-HT w oleju kukurydzianym do 0,5 miligrama na mililitr. Następnie za pomocą strzykawki insulinowej wstrzyknąć śródżołądkowo 50 mikrolitrów 4-HT nowonarodzonym szczeniętom P1 w celu wywołania eksperymentalnych zmian CCM. Przygotowanie próbki należy rozpocząć od napełnienia 10-mililitrowej strzykawki wyposażonej w igłę o rozmiarze 29 trzema mililitrami 2% paraformaldehydu i PBS.
Następnie wykonaj obfitość wewnątrzsercową na eutenizowanym szczenię P8, wkładając igłę do komory serca myszy i powoli wstrzykując pełną objętość paraformaldehydu. Po użyciu nożyczek do oderwania głowy, usuń skórę z głowy i oderwij czaszkę za pomocą kleszczy, aby wypreparować cały mózg na 4% paraformaldehyd i PBS. Po naprawie mózgu przez noc w temperaturze 4 stopni Celsjusza.
Następnego dnia odłącz tylne mózgowie za pomocą kleszczy i spłucz roztworem PBS. Następnie inkubuj tylne mózgowie w roztworze jodu Lugola przez 48 godzin. Po inkubacji należy krótko wysuszyć tylne mózgowia na powietrzu, aby usunąć nadmiar roztworu jodu Lugola.
Następnie zapakuj poplamione jodem tylne mózgowie Lugola w probówkach do mikrowirówek o pojemności 0,65 mikrolitra i całkowicie uszczelnij plastikową folią parafinową, aby uniknąć kurczenia się tkanek. Umieść probówki mikrowirówkowe w pięciomililitrowych plastikowych probówkach z gąbkami, aby zapobiec ich przesuwaniu się podczas skanowania. Zamontuj pionowo rurkę zawierającą tylny mózg na aluminiowym uchwycie w systemie micro-CT.
Ustaw parametry skanowania. Użyj 540 projekcji i dwusekundowego czasu naświetlania przy warunkach źródłowych 50 kilowoltów i 10 watów, aby uzyskać zestawy danych tomograficznych. Wykresy radiowe ze skanu są rekonstruowane automatycznie przez sprzętowe oprogramowanie do rekonstrukcji projekcyjnej, dostarczane przez system mikro-CT, tworząc serię obrazów 16-bitowych wycinków osiowych.
Kontrast z jodem Lugola w mikrotomografii komputerowej dostatecznie wykrył zmiany CCM. Zeskanowane obrazy rentgenowskie zrekonstruowano w celu uzyskania obrazów 3D mózgu myszy, co pozwoliło na wizualizację całych zmian w miąższu mózgu, na różnych głębokościach i orientacjach, oraz ocenę struktury w lokalizacji 3D zmian w mózgu. Poniższa tabela przedstawia przykładową wydajność ilościową oznakowanych poszczególnych zmian.
Po opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się chorobami naczyniowymi do zbadania mechanizmów i opcji terapeutycznych malformacji jamistych mózgu w modelach mysich. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wywołać zmianę CCM w modelach mysich oraz jak uzyskać i przeanalizować obciążenie zmianami CCM za pomocą techniki mikro-CT.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten protokół demonstruje indukcję choroby zmian jasnych w mózgu u myszy noworodków i wykorzystuje mikro-TK do pomiaru obciążenia zmianami. Ta metoda poprawia zrozumienie podstawy molekularnej i potencjalnych terapii zmian jasnych w mózgu oraz innych chorób naczyń mózgowych.
Quantitative micro-CT imaging of cerebral cavernous malformations (CCMs) in genetically engineered mouse models enables precise assessment of lesion burden, supporting mechanistic de-risking and target validation in cerebrovascular disease research. This approach enhances predictive confidence for early-stage therapeutic hypothesis testing and informs portfolio triage by providing robust, reproducible lesion quantification. Integration of high-resolution imaging with genetic disease models positions this workflow as a critical inflection point for translational continuity in vascular biology pipelines.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling hypothesis-driven genetic manipulation and quantitative phenotyping in mouse models, supporting lead identification and translational biomarker alignment.