Name: Wytwarzanie i charakterystyka rusztowań z włókien modyfikowanych przez Griffithsin w celu zapobiegania infekcjom przenoszonym drogą płciową (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 21 s
Description: Poznaj metodę wytwarzania i modyfikacji powierzchniowej włókien PLGA białkiem Griffithsin w celu zapobiegania infekcjom HIV-1. Technika ta maksymalizuje aktywność przeciwwirusową poprzez lokalizację białka na powierzchni rusztowania.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Jesteśmy wdzięczni Funduszowi Dziedzictwa Żydowskiego za Doskonałość za sfinansowanie tych badań. Dziękujemy dr Stuartowi Williamsowi II za hojne udostępnienie systemu elektroprzędzalnego. Dziękujemy również dr Kennethowi Palmerowi za dostarczenie nam Griffithsina. Dodatkowo dziękujemy dr Nobuyuki Matoba i jego laboratorium za przeszkolenie nas w pracy GRFT ELISA.

1. Przygotowanie i produkcja rusztowania z włókien elektroprzędzonych
UWAGA: Wszystkie prace z rozpuszczalnikami lub roztworami polimerów powinny być wykonywane w dygestoriach chemicznych. Przed rozpoczęciem protokołu należy zapoznać się z kartą charakterystyki każdego odczynnika.
<ol>
	<li>Aby elektrowirować 3 ml 15% w/w roztworu polimeru PLGA, odważ 720 mg 50:50 poli(kwasu mlekowo-ko-glikolowego) (PLGA; 0,55 do 0,75 dL/g, 31-57 kDa) do 10 ml fiolki scyntylacyjnej. Objętość roztworu jest oparta na typowej wielkości partii stosowanej w bieżących badaniach. 
	UWAGA: Masę polimeru, którą należy dodać do danej objętości rozpuszczalnika, należy obliczyć, określając najpierw gęstość rozpuszczalnika użytego do rozpuszczenia polimeru. Gęstość rozpuszczalnika Heksafluoro-2-propanol (HFIP) wynosi 1,59 g/ml. Zatem masa rozpuszczalnika, w oparciu o potrzebną objętość 3,0 ml HFIP, wynosi 4,8 g (3,0 ml x 1,59 g/ml). W przypadku 15% w/w frakcji PLGA do HFIP, 720 mg PLGA należy dodać do 3,0 ml HFIP (0,15 x 4,800 mg = 720 mg). Zaletą stosowania polimeru/roztworu % w/w, a nie % w/v, jest to, że zapewnia to określoną masę roztworu końcowego. Ta zdefiniowana masa umożliwia dokładniejszą wymianę rozpuszczalnika w przypadku odparowania rozpuszczalnika na etapie 1.3.</li>
	<li>Dodać 3,0 ml HFIP do szklanej fiolki scyntylacyjnej zawierającej PLGA (z kroku 1.1) za pomocą szklanej pipety serologicznej. Przykryć fiolkę folią z tworzywa sztucznego, a następnie zmierzyć i zanotować masę fiolki.</li>
	<li>Zawiesinę polimerową inkubować przez noc w temperaturze 37 °C, aby zapewnić całkowite rozpuszczenie polimeru. Jeśli jakikolwiek rozpuszczalnik odparuje, zmniejszając masę fiolki, należy dodawać HFIP do momentu, aż fiolka osiągnie swoją pierwotną masę w kroku 1.2.</li>
	<li>Po inkubacji przygotuj aparat do elektroprzędzenia (<silna klasa="xfig">Rysunek 2A). Chociaż można użyć trzpienia o dowolnym rozmiarze, tutaj jako kolektor zastosowano obrotowy trzpień ze stali nierdzewnej o średnicy zewnętrznej 25 mm. 
	UWAGA: Większa średnica trzpienia zmniejszy grubość włókna, przy tej samej objętości roztworu do elektroprzędzenia.</li>
	<li>Odessać roztwór polimeru do strzykawki o pojemności 3 ml.</li>
	<li>Podłącz końcówkę igły o rozmiarze 18 i średnicy 1/2 cala do strzykawki i dozuj nadmiar roztworu (zwykle 0,25 ml), aby usunąć pustą przestrzeń w końcówce igły.</li>
	<li>Umieścić strzykawkę na pompie strzykawkowej i ustawić natężenie przepływu instrumentu na 2,0 ml/h, 
	UWAGA: To natężenie przepływu zostało wcześniej zoptymalizowane w oparciu o lepkość polimeru dla tego preparatu.</li>
	<li>Podłącz źródło zasilania do igły strzykawki i elektrowiruj roztwór polimeru pod napięciem +27 kV. Odległość między igłą a kolektorem powinna być ustawiona na około 25 cm (<silna klasa="xfig">Rysunek 2B). 
	UWAGA: W procesie elektroprzędzenia powstaje para rozpuszczalnika. Użyj dygestoria lub zamkniętego urządzenia (<silna klasa="xfig">Rysunek 2), aby usunąć szkodliwą parę.</li>
	<li>Gdy cały roztwór zostanie elektrowirowany, wyłącz źródło zasilania i pozwól trzpieniu wirować przez dodatkowe 30 minut, aby całkowicie odparować rozpuszczalnik.</li>
	<li>Wyłącz obracający się kolektor trzpienia i użyj żyletki, aby odciąć włókno z trzpienia. Użyj ostrza, aby delikatnie oderwać włókno od trzpienia.</li>
	<li>Zbierz elektroprzędzone włókno PLGA na oznakowaną szalkę Petriego i umieść na noc w eksykatorze, aby usunąć resztki rozpuszczalnika.</li>
</ol>
2. Modyfikacja powierzchni włókien za pomocą GRFT
<ol>
	<li>Przygotować roztwory soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS) i kwasu 2-(N-morfolino)etanosulfonowego (bufor MES). Przygotować PBS, rozpuszczając 8 g NaCl, 0,2 g KCl, 1,44 g Na2HPO4 i 0,24 g KH2PO4 w 1 l ultraczystej wody. Podobnie, rozpuść 19,52 g MES (wolny kwas, MW 195,2) i 29,22 g NaCl w 1 l ultraczystej wody, aby przygotować bufor MES. Upewnij się, że końcowe pH każdego roztworu wynosi odpowiednio 7,2 - 7,5 i 5,0 - 6,0 - 6,0 za pomocą pH-metru.</li>
	<li>Przygotuj indywidualne roztwory robocze EDC (2 mM) i NHS (5 mM).
	<ol>
		<li>Wyjmij EDC i NHS z zamrażarki i pozwól im zrównoważyć się do temperatury pokojowej przed ważeniem.</li>
		<li>Odważyć 4 mg EDC do probówki mikrowirówkowej o pojemności 1,5 ml.</li>
		<li>Odważyć 6 mg NHS do innej probówki do mikrowirówki.</li>
		<li>Dodać 1 ml buforu MES do każdej probówki. Energicznie wymieszaj obie probówki, aby upewnić się, że odczynniki są całkowicie rozpuszczone.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotować roztwór hydroksyloaminy, ważąc 70 mg w stożkowej probówce wirówkowej o pojemności 50 ml.</li>
	<li>Dodaj 20 ml PBS do hydroksyloaminy i wiruj do rozpuszczenia.</li>
	<li>Zmasuj odpowiednią ilość włókna PLGA w stożkowej probówce wirówkowej o pojemności 15 ml. Zazwyczaj do każdej partii reakcyjnej stosuje się 75 mg błonnika.</li>
	<li>Dodać 8 ml buforu MES do probówki o pojemności 15 ml.</li>
	<li>Dodać do probówki po 1 ml każdego z przygotowanych wcześniej roztworów EDC i NHS. Ostateczna objętość roztworu powinna wynosić 10 ml. Końcowe stężenia EDC i NHS powinny wynosić odpowiednio 0,4 mg/ml i 0,6 mg/ml.</li>
	<li>Zamknij i uszczelnij probówkę o pojemności 15 ml folią z tworzywa sztucznego i umieść ją na rotatorze, aby umożliwić delikatne odwrócenie roztworu przez 15 minut w temperaturze pokojowej (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3B). Ten krok aktywuje grupy karboksylowe na polimerze, aby umożliwić kowalencyjną modyfikację białkiem GRFT (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 3A).</li>
	<li>Po aktywacji ostrożnie wygasić reakcję, dodając do probówki 14 μl β-merkaptoetanolu. Odwróć probówkę kilka razy, aby zapewnić całkowite wymieszanie. 
	UWAGA: β-merkaptoetanol jest wysoce toksyczny i powinien być stosowany wyłącznie w wyciągach chemicznych.</li>
	<li>Odrzucić supernatant i dwukrotnie przepłukać włókno PLGA 10 ml PBS, aby usunąć resztki β-merkaptoetanolu.</li>
	<li>Po wypłukaniu dodaj odpowiednią ilość roztworu podstawowego GRFT do probówki. Na przykład błonnik o stężeniu 5 nmol GRFT / mg wymagałby 6,35 μl roztworu podstawowego GRFT (z 10 mg / ml) na mg błonnika. Tak więc próbka błonnika o stężeniu 75 mg wymagałaby 476,25 μl roztworu podstawowego GRFT o stężeniu 10 mg/mL. 
	UWAGA: Wyprodukowano włókna GRFT o teoretycznych obciążeniach 0,05, 0,5 i 5 nmol GRFT na mg włókna.</li>
	<li>Dodaj tyle PBS, aby doprowadzić końcową objętość do 8 ml, zamknij i odwróć probówkę, aby zapewnić dokładne wymieszanie.</li>
	<li>Uszczelnij rurkę folią z tworzywa sztucznego i ponownie umieść na wirniku, tym razem na 2 godziny.</li>
	<li>Po 2 godzinach inkubacji wygasić reakcję, dodając 2 ml roztworu hydroksyloaminy do probówki wirówkowej o pojemności 15 ml. Zgodnie z instrukcjami producenta, końcowe stężenie hydroksyloaminy podczas reakcji hartowania powinno wynosić 0,7 mg/ml.</li>
	<li>Dobrze wymieszać roztwór i wyrzucić supernatant. Spłucz zmodyfikowane powierzchniowo włókno PLGA dwukrotnie 10 ml ultraczystej wody, aby usunąć wszelkie niesprzężone GRFT.</li>
	<li>Przenieś włókno na szalkę Petriego i umieść w eksykatorze, aż włókno całkowicie wyschnie. Przenieść szalkę Petriego do temperatury 4 °C w celu przechowywania.</li>
</ol>
3. Charakterystyka SEM włókien modyfikowanych powierzchniowo GRFT
<ol>
	<li>Umieść pasek dwustronnej taśmy węglowej na uchwycie próbki SEM. Oznacz dolną część mocowania próbki informacjami identyfikującymi próbkę za pomocą trwałego markera.</li>
	<li>Wytnij trzy próbki z jednego włókna o zmodyfikowanej powierzchni i umieść je na oddzielnych mocowaniach próbek. Grubość każdej próbki wynosi około 0,5 mm.</li>
	<li>Napylaj próbki za pomocą indukowanego elektronami osadzania cząstek ze złotej płytki. Napylanie przez 90 s, przy napięciu 2,4 kV. 
	UWAGA: Czas napylania może się różnić w zależności od parametrów sprzętu, w tym voltage i amperage.</li>
	<li>Zobrazuj próbki pod napięciem 8 kV w powiększeniu od 1 000 do 5 000X.</li>
</ol>
4. Ekstrakcja GRFT z włókien modyfikowanych powierzchniowo
<ol>
	<li>Rozmasuj 2 mg błonnika w trzech egzemplarzach do 1,5 ml probówek do mikrowirówek.</li>
	<li>Dodaj 1 ml dimetylosulfotlenku (DMSO) do probówki, a następnie wiruj i inkubuj przez 1 minutę w temperaturze pokojowej, aby całkowicie rozpuścić błonnik.</li>
	<li>Po inkubacji rozcieńczyć 10 μl podwielokrotności roztworu włókna DMSO z kroku 4.2, co najmniej 100-krotnie w buforze Tris-EDTA (TE) (pH = 8,0).</li>
	<li>Próbki należy przechowywać w temperaturze -20 °C do czasu wczytania charakterystyki za pomocą testu ELISA.</li>
</ol>
5. Pomiar desorpcji GRFT z włókien
<ol>
	<li>Aby ocenić ilość GRFT uwolnionego lub zdesorbowanego z włókna, należy zważyć 5 - 10 mg włókna modyfikowanego powierzchniowo i umieścić w probówce do mikrowirówki. Zapisz masę włókna w każdej probówce.</li>
	<li>Do każdej próbki dodać 1 ml odpowiedniego roztworu, który naśladuje środowisko fizjologiczne (np. PBS, bufor TE, symulowany płyn pochwowy (SVF) itp.).</li>
	<li>Inkubować próbki przez 1 godzinę na wytrząsarce obracającej się przy 200 obr./min, 37 °C.</li>
	<li>Po inkubacji usunąć z fiolki około 1 ml buforu TE zawierającego zdesorbowany GRFT i przekazać do probówek zbiorczych. Przechowywać w temperaturze -20 °C do czasu oznaczania ilościowego białka.</li>
	<li>Przenieść próbkę do nowej probówki do mikrowirówki, dodać 1 ml świeżego roztworu buforowego do włókna w probówce do mikrowirówki i inkubować do następnego punktu czasowego.</li>
	<li>Typowe punkty czasowe używane do pomiaru uwalniania to: 1, 2, 4, 6, 8, 24, 48, 72 godziny i 1 tydzień. W tych badaniach zaobserwowano znikomą desorpcję po 4 godzinach.</li>
</ol>
6. Kwantyfikacja ekstrakcji i desorpcji GRFT za pomocą testu ELISA
<ol>
	<li>Pokryj 96-dołkową płytkę ELISA 0,1 ml HA (10 μg/ml) na dołek, jak opisano wcześniej51. Uszczelnić płytkę folią z tworzywa sztucznego i inkubować przez noc w temperaturze 4 °C (<klasa silna = "xfig">Rysunek 4).</li>
	<li>Usunąć bufor powlekający i dodać 0,3 ml buforu blokującego (2 - 3% albuminy surowicy bydlęcej (BSA) w PBS z 0,05% polisorbatem 20) do każdej studzienki. Inkubować płytkę przez co najmniej 2 godziny w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Po inkubacji przepłukać płytkę 3 razy 1x PBS z 0,1% polisorbatem 20 (PBS-P). Po wypłukaniu dozować 0,1 ml próbki, wzorca lub PBS jako kontrolę ujemną do odpowiednich studzienek. Ponownie inkubować płytkę przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej.</li>
	<li>Ponownie przepłukać płytkę 3 razy za pomocą PBS-P. Po wypłukaniu dodać 0,1 ml przeciwciała pierwszorzędowego (koziej surowicy anty-GRFT) do każdej studzienki i inkubować przez co najmniej 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Zazwyczaj pierwszorzędowy roztwór przeciwciała rozcieńcza się w stosunku 1:10 000 w PBS.</li>
	<li>Po inkubacji próbek z przeciwciałem pierwszorzędowym ponownie przepłukać płytki 3 razy PBS-P. Dodać 0,1 ml przeciwciała drugorzędowego (IgG królika sprzężonego z peroksydazą chrzanową (HRP) do każdej studzienki i inkubować przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Roztwór przeciwciała drugorzędowego rozcieńcza się w stosunku 1:10 000 w PBS.</li>
	<li>Umyj talerz 3 razy. Dodaj 0,1 ml substratu 2-peroksydazy TMB do każdego dołka. Monitoruj rozwój koloru (około 2 min), a następnie dodaj 0,1 ml H2SO4 (1 N), aby wygasić reakcję. Odczyt płytki przy długości fali 450 nm na czytniku płytek.</li>
	<li>Uśrednij wartości tła OD (studzienki, które otrzymują tylko PBS) i odejmij to od grup eksperymentalnych.</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Ze względu na swoją porowatą strukturę i dużą powierzchnię, EF znalazły wiele zastosowań w opiece zdrowotnej, a jednym z nich jest służenie jako terapeutyczne pojazdy dostawcze. Leki i inne substancje czynne mogą być włączane do EF w celu przestrajalnego dostarczania, podczas gdy leki biologiczne i ligandy chemiczne mogą być sprzężone z powierzchnią włókna w celu celowania specyficznego dla komórki52 lub biodetekcji53. W tym miejscu opisano wytwarzanie modyfikowanych powier...

Wykorzystanie EFs jako platformy do miejscowego dostarczania ma potencjał do znacznego zmniejszenia liczby chorób przenoszonych drogą płciową. Obecnie ponad 36 milionów osób żyje z wirusem HIV, z ponad dwoma milionami nowych przypadków zgłoszonych w samym tylko 2015 roku1,2. Dodatkowo, zakażenie wirusem opryszczki pospolitej typu 2 (HSV-2) dotyka setki milionów ludzi na całym świecie i wykazano, że zwiększa nabycie wirusa HIV o 2 - 5 razy3. Ze względu na związek między zakażeniem HSV-2 a nabyciem wirusa HIV istnieje duże zainteresowanie opracowywaniem nowych substancji czynnych, które zapewniają jednoczesną ochronę przed wieloma chorobami przenoszonymi drogą płciową. Co więcej, opracowanie nowych nośników w celu poprawy dostarczania tych środków przeciwwirusowych daje możliwość dalszego zwiększenia siły ochronnej i terapeutycznej. Aby osiągnąć ten cel, EF zostały zbadane jako nowa platforma dostarczania w celu zmniejszenia częstości występowania zakażeń HIV-1 i HSV-2.
W ciągu ostatnich dwóch dekad EF były szeroko stosowane w dziedzinach dostarczania leków i inżynierii tkankowej4. Często biokompatybilne polimery są wybierane tak, aby łatwo przekładały się na zastosowania terapeutyczne. Aby wytworzyć polimerowe EF, wybrany polimer rozpuszcza się w rozpuszczalniku organicznym lub roztworze wodnym, w zależności od stopnia hydrofobowości polimeru5. Interesujące czynniki czynne są następnie dodawane do rozpuszczalnika lub roztworu wodnego przed procesem elektroprzędzenia. Roztwór polimeru jest następnie zasysany do strzykawki i powoli wyrzucany, będąc pod wpływem prądu elektrycznego. W wyniku tego procesu zazwyczaj powstają włókna polimerowe o makrostrukturach arkuszowych lub cylindrycznych (<silna klasa="xfig">Rysunek 1) i średnicach włókien w zakresie od mikro- do nanoskali6. W przypadku większości zastosowań terapeutycznych substancje czynne są włączane do włókien podczas procesu elektroprzędzenia i są uwalniane z włókna poprzez dyfuzję, a następnie degradację włókien. Szybkość degradacji lub uwalniania może być zmieniana poprzez stosowanie różnych typów polimerów lub mieszanek polimerów w celu ustalenia pożądanego profilu uwalniania, nadając unikalne właściwości chemiczne i fizyczne7 i promując enkapsulację praktycznie każdego związku. W związku z tym EF okazały się korzystne w dostarczaniu leków małocząsteczkowych i czynników biologicznych, w tym białek, peptydów, oligonukleotydów i czynników wzrostu6,8,9.
W dziedzinie zapobiegania chorobom przenoszonym drogą płciową, EF były ostatnio używane do włączania i dostarczania trwałego lub indukowalnego uwalniania środków przeciwwirusowych10,11,12,13,14,15,16,17,18,19. W jednym z najwcześniejszych badań opracowano włókna reagujące na pH, aby uwalniać substancje czynne w odpowiedzi na zmiany środowiskowe w żeńskim układzie rozrodczym (FRT), jako metoda ochrony na żądanie przed HIV-111. Od tego czasu w innych badaniach analizowano mieszanki polimerowe składające się z tlenku etylenu (PEO) i kwasu poli-L-mlekowego (PLLA), aby ocenić regulowane uwalnianie środków przeciwwirusowych i antykoncepcyjnych w celu zapobiegania HIV-1 i antykoncepcji in vitro12. Dodatkowe badania wykazały wykonalność EF w celu zapewnienia: przedłużonego uwalniania małocząsteczkowych leków przeciwwirusowych14, silnych i elastycznych właściwości mechanicznych20, architektury dostarczania 3-D21, hamowanie penetracji plemników12, oraz zdolność do łączenia się z innymi technologiami dostarczania13. Wreszcie, wcześniejsze prace oceniały włókna polimerowe pod kątem ciągłego dostarczania środków przeciwwirusowych przeciwko powszechnym wirusom współinfekującym, HSV-2 i HIV-114. W tym badaniu włókna polimerowe zapewniały aktywność komplementarną do dostarczania przeciwwirusowego, zachowując swoją strukturę przez okres do 1 miesiąca i zapewniając fizyczną barierę dla wnikania wirusa. Na podstawie tych wyników zaobserwowano, że EF mogą być stosowane zarówno do fizycznego, jak i chemicznego hamowania infekcji wirusowej.
Podczas gdy regulowane właściwości uwalniania sprawiają, że polimerowe EF są atrakcyjną platformą dostarczania mikrobicydów, EF zostały opracowane w innych zastosowaniach, aby służyć jako rusztowania modyfikowane powierzchniowo7. EF zostały użyte do naśladowania morfologii macierzy zewnątrzkomórkowej (ECM), często działając jako rusztowania poprawiające regenerację komórkową22 i zwiększające ich użyteczność w inżynierii tkankowej23,24. Włókna składające się z polimerów, takich jak poli-ε-kaprolakton (PCL) i PLLA, zostały zmodyfikowane powierzchniowo czynnikami wzrostu i białkami po elektroprzędzeniu, aby nadać właściwości podobne do ECM, w tym zwiększoną adhezję komórkową i proliferację25,26. Ponadto oceniono przeciwdrobnoustrojowe EF modyfikowane powierzchniowo, aby zapobiec rozwojowi określonych bakterii chorobotwórczych27,28. Ze względu na tę wszechstronność i zdolność do wywoływania efektów biologicznych, technologia EF nadal rozwija się w różnych dziedzinach, aby zapewnić wielomechaniczną funkcjonalność. Jednak pomimo ich użyteczności w różnych zastosowaniach, włókna modyfikowane powierzchniowo dopiero niedawno zostały zbadane w dziedzinie mikrobicydów29.
Równolegle z rozwojem nowych technologii zapobiegania i leczenia chorób przenoszonych drogą płciową, opracowano nowe biologiczne terapie. Jednym z najbardziej obiecujących kandydatów na środki bakteriobójcze jest adhezyjna lektyna przeciwwirusowa, GRFT30. Pierwotnie pochodząca z gatunku krasnorostów, GRFT wykazała aktywność jako silny inhibitor wirusa HIV, HSV-2, SARS, a także wirusa zapalenia wątroby typu C31,32,33,34,35,36. W rzeczywistości, wśród biologicznie nastawionych inhibitorów, GRFT ma najsilniejsze działanie anty-HIV, inaktywując HIV-1 niemal natychmiast po kontakcie30, zachowując stabilność i aktywność w obecności pożywek hodowlanych z drobnoustrojów pochwy przez okres do 10 dni37. Niedawno wykazano, że 0,1% żel GRFT chroni myszy przed dopochwowym prowokacją HSV-2, co czyni go obiecującym kandydatem na pierwszą linię ochrony zarówno przed HSV-2, jak i HIV-132,38. W szczególności w przypadku wirusa HIV, GRFT hamuje infekcję poprzez fizyczne wiązanie reszt glikanów związanych z gp120 lub terminalną mannozą N na powierzchniach otoczki wirusa, aby zapobiec przedostawaniu się38,39,40,41,42. To hamowanie jest bardzo silne, a IC50s zbliża się do 3 ng / mL43. Oprócz hamowania zakażenia wirusem HIV, badania wykazały również, że GRFT chroni przed zakażeniem HSV-2 poprzez hamowanie rozprzestrzeniania się wirusa z komórki na komórkę32. We wszystkich przypadkach wykazano, że GRFT jest adhezyjny do cząstek wirusa, wykazując jednocześnie wysoką odporność na denaturację. Wreszcie, GRFT wykazał synergistyczne działanie z kombinacjami tenofowiru (TFV) i innych leków przeciwwirusowych44, dzięki czemu jest wykonalne i prawdopodobnie korzystne do jednoczesnego stosowania z EFs. Silne właściwości GRFT sprawiają, że jest to doskonały kandydat na lek przeciwwirusowy na bazie biologicznej, w którym dostarczanie może być wzmocnione za pomocą technologii EF.
Wykorzystując tę wiedzę o adhezyjnych i wrodzonych właściwościach przeciwwirusowych GRFT, zaprojektowano rusztowanie z włókien polimerowych, które integruje te właściwości, aby zapewnić pierwszą warstwę hamowania wnikania wirusa29. Szukając inspiracji w sposobie, w jaki śluz szyjkowo-pochwowy utrudnia transport wirusa głównie poprzez interakcje mukoadhezyjne mucyny, postawiliśmy hipotezę, że używając EF jako rusztowania i kowalencyjnie modyfikując powierzchnię za pomocą GRFT, wysoka gęstość GRFT sprzężonego z powierzchnią osłabiłaby i dezaktywowała wirusa w jego punkcie wejścia45,46,47. W tym przypadku EF zostały opracowane jako stacjonarne rusztowanie, aby zapewnić opartą na białku, wirusową platformę barierową inaktywującą adhezję. Staraliśmy się połączyć silne właściwości przeciwwirusowe GRFT z biokompatybilną, modyfikowalną i trwałą platformą polimerową, aby stworzyć nową "pułapkę" na wirusa.
Aby osiągnąć te cele, włókna składające się z PLGA były elektroprzędzone, a chemia EDC-NHS została użyta do późniejszej modyfikacji powierzchni EF za pomocą GRFT. PLGA służył jako polimer modelowy ze względu na jego szerokie zastosowanie w electrospinningu48, w połączeniu z jego biokompatybilnością i opłacalnością. Dodatkowo, modyfikacja powierzchni wykorzystuje dużą powierzchnię EF i stanowi użyteczną alternatywę, którą można połączyć z enkapsulacją, aby zmaksymalizować użyteczność światłowodu49. W przeciwieństwie do tradycyjnych metod enkapsulacji, w których dostępna jest tylko część GRFT (i tylko przejściowo obecna w FRT), modyfikacja powierzchni może umożliwić GRFT utrzymanie maksymalnej bioaktywności przez cały czas trwania leczenia. Co więcej, włączenie związków hydrofilowych, takich jak białka, tradycyjnymi metodami elektroprzędzenia, może skutkować niższą wydajnością enkapsulacji i utratą aktywności białek50. W związku z tym włókna modyfikowane powierzchniowo GRFT mogą stanowić obiecującą alternatywną metodę dostarczania, która może być stosowana samodzielnie lub w połączeniu z elektroprzędzeniem w celu zwiększenia ochrony przed infekcją przenoszoną drogą płciową.

<table><tbody><tr><td>Poli(laktyd-ko-glikolid) (PLGA) 50:50</td><td>Lactel</td><td>B6013-2P</td><td></td></tr><tr><td>1,1,1,3,3,3-heksafluoro-2-propanol (HFIP)</td><td>Thermo Scientific&nbsp;</td><td></td><td></td>147541000</tr><tr><td>igła dozująca 18g x 1/2</td><td>Brico Medical Supplies</td><td>BN1815</td><td></td></tr><tr><td>BD 3mL Strzykawka Luer-lok końcówka VWR</td><td></td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm (folia plastikowa)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P7793</td><td></td></tr><tr><td>Kwas 2-(N-Morfolino)etanosulfonowy (bufor MES)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M3671&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Chlorek sodu</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>Chlorek potasu</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P9333</td><td></td></tr><tr><td>Fosforan sodu dwuzasadowy</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7907</td><td></td></tr><tr><td>Fosforan potasu jednozasadowy</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P0662</td><td></td></tr><tr><td>Hydroksysukcynimid (NHS)</td><td>Thermo Scientific&nbsp;</td><td>24500</td><td></td></tr><tr><td>Chlorowodorek 1-etylo-3-(3-dimetyloaminopropylo)karbodimidu (EDC)</td><td>Thermo Scientific&nbsp;</td><td>22980</td><td></td></tr><tr><td>2-merkaptoetanol</td><td>Fisher</td><td>BP176</td><td></td></tr><tr><td>Griffithsin (GRFT)</td><td>Kentucky Bioprocessing</td><td>NA</td><td>zamówienie, brak numeru produktu</td></tr><tr><td></td><td>Milipore Milipore</td><td>317275</td><td></td></tr><tr><td>Monolaurynian glikolu polietylenowego sorbitanu (Polisorbat, Tween 20)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P9416&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Tris EDTA Buffer</td><td>Sigma Aldrich</td><td>93283</td><td></td></tr><tr><td>Płaskodenne immunoniesterylne płytki 96-dołkowe</td><td>Thermo Scientific&nbsp;</td><td>3355</td><td></td></tr><tr><td>Hemaglutynina grypy (HA)</td><td>Kentucky Bioprocessing</td><td>NA</td><td>wykonane na zamówienie, brak numeru produktu</td></tr><tr><td>Kozia anty-GRFT (przeciwciało pierwotne)</td><td>Kentucky Bioprocessing</td><td>NA</td><td>wykonane na zamówienie, brak numeru produktu</td></tr><tr><td>Królik anty-kozioł IgG-HRP (przeciwciało wtórne)</td><td>Santa Cruz</td><td>2056</td><td></td></tr><tr><td>Sure Blue TMB Microwell Peroksydaza</td><td>Substrate KPL</td><td>52-00-00</td><td></td></tr></tbody></table>

wytwarzanie i charakterystyka rusztowań z włókien modyfikowanych przez griffithsin w celu zapobiegania infekcjom przenoszonym drogą płciową

Fabrication and Characterization of Griffithsin-modified Fiber Scaffolds for Prevention of Sexually Transmitted Infections

Włókna elektroprzędzione (EF) były szeroko stosowane w różnych zastosowaniach terapeutycznych; jednak dopiero niedawno zostały zastosowane jako technologia do zapobiegania i leczenia infekcji przenoszonych drogą płciową (STI). Co więcej, wiele technologii EF koncentruje się na kapsułkowaniu substancji czynnej, w porównaniu z wykorzystaniem powierzchni do nadania biofunkcjonalności. Tutaj opisujemy metodę wytwarzania i modyfikowania powierzchni włókien elektroprzędzonych z kwasu poli(mlekowo-ko-glikolowego) (PLGA) za pomocą silnej przeciwwirusowej lektyny Griffithsin (GRFT). PLGA to polimer zatwierdzony przez FDA, który jest szeroko stosowany w dostarczaniu leków ze względu na swoje wyjątkowe właściwości chemiczne i biokompatybilne. GRFT jest naturalną, silną i bezpieczną lektyną, która ma szerokie działanie przeciwko wielu wirusom, w tym ludzkiemu wirusowi niedoboru odporności typu 1 (HIV-1). Po połączeniu, włókna modyfikowane GRFT wykazały silną inaktywację HIV-1 in vitro. Niniejszy manuskrypt opisuje metody wytwarzania i charakteryzowania EF modyfikowanych przez GRFT. Po pierwsze, PLGA jest elektroprzędzona w celu stworzenia rusztowania światłowodowego. Włókna są następnie modyfikowane powierzchniowo za pomocą GRFT przy użyciu chemii 1-etylo-3-(3-dimetyloaminopropylo)karbodimidu (EDC) i N-hydroksysukcynimidu (NHS). Skaningowa mikroskopia elektronowa (SEM) została wykorzystana do oceny wielkości i morfologii preparatów modyfikowanych powierzchniowo. Dodatkowo, ELISA na bazie gp120 lub hemaglutyniny (HA) może być użyty do ilościowego określenia ilości sprzężonego GRFT, a także desorpcji GRFT z powierzchni włókna. Protokół ten może być szerzej stosowany do wytwarzania włókien, które są modyfikowane powierzchniowo za pomocą różnych białek.

Morfologia włókien ma istotny wpływ na zdolność modyfikowanych powierzchniowo EFs do zapewnienia ochrony przed wirusami. Chociaż elektroprzędzenie jest wygodną i prostą procedurą, nieoptymalne formulacje polimerów mogą prowadzić do nieregularnej morfologii włókien (Rysunek 5B-C). Zmiany w warunkach elektroprzędzenia, które prowadzą do powstania morfologii z grudkami lub amorficznych struktur przypominających maty, są często spowodowane niekom...

Ten manuskrypt opisuje procedurę wytwarzania i charakteryzowania włókien elektroprzędzonych z poli(kwasu mlekowo-ko-glikolowego) modyfikowanych przez Griffithsin, które wykazują silne działanie adhezyjne i przeciwwirusowe przeciwko zakażeniu ludzkim wirusem niedoboru odporności typu 1 in vitro. Opisano metody stosowane do syntezy, modyfikacji powierzchni i charakterystyki wynikowej morfologii, koniugacji i desorpcji Griffithsiny z włókien modyfikowanych powierzchniowo.

Wytwarzanie i charakterystyka rusztowań z włókien modyfikowanych przez Griffithsin w celu zapobiegania infekcjom przenoszonym drogą płciową

Electrospun fibers (EFs) have been widely used in a variety of therapeutic applications; however, they have only recently been applied as a technology to ...

Ogólnym celem tej procedury jest wytworzenie i modyfikacja powierzchniowa kwasu polimlekowego, kwasu koglikolowego, włókien elektroprzędzonych, z różnymi ilościami białka przeciwwirusowego Griffithsin. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie dostarczania leków, takie jak sposób formułowania i charakteryzowania nowych pojazdów dostawczych, które mogą zapobiegać infekcjom wirusowym przenoszonym drogą płciową, takim jak HIV-1. Główną zaletą tej techniki jest to, że aktywność przeciwwirusowa Griffithsina jest maksymalizowana poprzez zastosowanie polimerowo-elektroprzędzonych włókien jako stacjonarnego rusztowania dla wysoce zlokalizowanej Griffithsiny na powierzchni włókna.Implikacje tej techniki rozciągają się na terapię innych infekcji wirusowych i bakteryjnych, ze względu na silny potencjał profilaktyczny i terapeutyczny Griffithsina przeciwko różnym typom infekcji. Chociaż metoda ta może dostarczyć informacji na temat zapobiegania zakażeniu HIV-1, może być również stosowana do innych systemów, takich jak inne infekcje wirusowe lub bakteryjne, w których Griffithsin wykazał moc. Aby rozpocząć tę procedurę, zważyć 720 miligramów 50/50 PLGA do 10-mililitrowego scyntylacyjnego podłego.Za pomocą szklanej pipety serologicznej dodaj 3,0 mililitrów HFIP. Przykryj podłość folią z tworzywa sztucznego. Następnie zmierz i zapisz ohydną masę.Zawiesinę polimerową inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc, aby zapewnić całkowite rozpuszczenie polimeru. Następnie należy przygotować urządzenie do elektroprzędzenia zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Użyj trzymililitrowej strzykawki, aby zassać roztwór polimeru.Następnie podłączyć końcówkę igły o rozmiarze 18 i średnicy 0,5 cala do strzykawki. Dozować nadmiar roztworu, aby usunąć pustą przestrzeń w igle. Umieścić strzykawkę na pompie strzykawkowej i ustawić natężenie przepływu instrumentu na 2,0 mililitrów na godzinę.Podłączyć źródło zasilania do igły strzykawki. Elektrowiruj roztwór polimeru przy użyciu napięcia dodatniego 27 kilowoltów. Po elektroprzędzeniu całego roztworu wyłącz źródło zasilania.Pozwól trzpieniu wirować przez dodatkowe 30 minut, aby całkowicie odparować rozpuszczalnik. Następnie wyłącz obracający się kolektor trzpienia. Za pomocą żyletki delikatnie oderwij włókno od trzpienia.Zbierz elektroprzędzone włókno PLGA na oznaczoną szalkę Petriego. Umieść naczynie na noc w eksykatorze, aby usunąć resztki rozpuszczalnika. Na początek przygotuj rozwiązania PBS i MES zgodnie z opisem w protokole tekstowym.Następnie wyjmij EDC i NHS z zamrażarki. Pozwól im odpocząć, aby zrównoważyły się do temperatury pokojowej. Następnie zważ cztery miligramy EDC do 1,5-mililitrowej probówki mikrowirówkowej.Zważ sześć miligramów NHS do innej probówki do mikrowirówki. Dodaj jeden mililitr buforu MES do każdej probówki. Energicznie wymieszaj obie probówki, aby upewnić się, że odczynniki są całkowicie rozpuszczone.Następnie zważ 70 miligramów hydroksyloaminy do 50-mililitrowej stożkowej probówki wirówkowej. Dodaj 20 mililitrów PBS i wiruj. Zmasuj odpowiednią ilość włókna PLGA w stożkowej probówce wirówkowej o pojemności 15 mililitrów.Dodaj osiem mililitrów buforu MES do włókna. Następnie dodaj jeden mililitr roztworów EDC i NHS. Użyj folii z tworzywa sztucznego, aby uszczelnić stożkową probówkę wirówkową o pojemności 15 mililitrów.Umieść probówkę na rotatorze, aby delikatnie odwrócić roztwór przez 15 minut w temperaturze pokojowej. Następnie dodaj 14 mikrolitrów beta-merkaptoetanolu, aby wygasić reakcję. Odwróć rurkę kilka razy, aby zapewnić całkowite wymieszanie.Wyrzuć supernatant i przepłucz włókno PLGA dwukrotnie, używając 10 mililitrów PBS na każde pranie. Dodać odpowiednią ilość roztworu podstawowego GRFT do probówki, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. Następnie dodaj tyle PBS, aby doprowadzić końcową objętość do ośmiu mililitrów.Zamknij i odwróć rurkę, aby zapewnić dokładne wymieszanie. Uszczelnij rurkę folią z tworzywa sztucznego. Umieść rurkę na rotatorze, aby delikatnie odwrócić roztwór na dwie godziny.Następnie wygasić reakcję, dodając dwa mililitry przygotowanego roztworu hydroksyloaminy i wirując przez 30 sekund. Odrzucić supernatant. Dwukrotnie spłucz powierzchnię zmodyfikowanego włókna PLGA, używając 10 mililitrów ultra czystej wody i wirując przy każdym praniu.Następnie przenieś umyte włókno na szalkę Petriego. Umieść szalkę Petriego w eksykatorze, aż włókno całkowicie wyschnie. Następnie przechowuj szalkę Petriego w temperaturze czterech stopni Celsjusza.Na początek ustaw trzy 1,5-mililitrowe mikroprobówki wirówkowe. Do każdego z nich wmasuj dwa miligramy błonnika. Następnie dodaj jeden mililitr DMSO do każdej probówki.Wiruj przez jedną minutę w temperaturze pokojowej, aby całkowicie rozpuścić włókno. Następnie rozcieńczyć podwielokrotność 10 mikrolitrów co najmniej 100 razy w buforze TE. Przechowywać w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza, aż do momentu załadowania charakterystyki za pomocą Elizy.Odważ od 5 do 10 miligramów włókna modyfikowanego powierzchniowo i przenieś je do probówki mikrowirówkowej. Zapisz masę włókna umieszczoną w każdej probówce. Następnie dodaj jeden mililitr roztworu, który naśladuje środowisko fizjologiczne każdej próbki.Próbki należy inkubować na obrotowej wytrząsarce z prędkością 200 obr./min i temperaturze 37 stopni Celsjusza przez jedną godzinę. Następnie należy usunąć około jednego mililitra roztworu zawierającego zdesorbowany GRFT i podzielić go na probówki zbiorcze. Przechowywać w temperaturze minus 20 stopni Celsjusza, aż będzie gotowy do przeprowadzenia kwantyfikacji białka.Następnie przenieś próbkę do nowej probówki do mikrowirówki. Dodać jeden mililitr świeżego roztworu buforowego i inkubować do następnego punktu czasowego, zgodnie z opisem w protokole tekstowym. W niniejszej pracy zbadano warunki wytwarzania włókien elektroprzędzonych PLGA.Analiza SEM ślepej próby, 0,05 nanomola, 0,5 nanomola i 5 nanomoli włókien GRFT wskazuje, że modyfikacja GRFT nie ma wpływu na morfologię włókien. Stwierdzono, że wszystkie formacje mają podobne średnie średnice, około 1,9 mikrona, co świadczy o spójności zmodyfikowanego procesu wytwarzania we wszystkich partiach. Następnie określa się ilość GRFT sprzężonego z elektroprzędzonymi włóknami.Modyfikacja 5 nanomoli zawiera 373 nanogramy GRFT, podczas gdy modyfikacje 0,5 i 0,05 zawierają odpowiednio 165 i 42. Pokazuje to, że włókna sprzężone z wyższą teoretyczną gęstością modyfikacji powierzchni skutkują większą ilością GRFT sprzężonego z włóknem. Jednak w wynikowej wydajności koniugacji można zaobserwować odwrotną korelację.Następnie ocenia się ilość GRFT kowalencyjnie sprzężonego z włóknem. W ciągu pierwszych czterech godzin wykrywa się 113 nanogramów, 25 nanogramów i 10 nanogramów GRFT na miligram elektroprzędzonego włókna odpowiednio w teoretycznych stężeniach modyfikacji 5 nanomoli, 0,5 nanomola i 0,05 nanomola. Po czterech godzinach wykrywa się znikomy GRFT w elucji uwalniającej dla wszystkich trzech preparatów.Dane te wskazują, że większość GRFT jest kowalencyjnie związana z włóknami elektroprzędzonymi i że powierzchnia wchłoniętego GRFT jest uwalniana w ciągu pierwszych czterech godzin. Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w około cztery dni. Elektroprzędzenie rusztowania z włókna polimerowego wymaga dwóch dni na przygotowanie roztworu polimeru i elektrowirowanie.Natomiast modyfikacja powierzchni, późniejsze suszenie i charakteryzacja włókien wymagały co najmniej dwóch dodatkowych dni. Podejmując się tej procedury, należy pamiętać o zachowaniu odpowiednich proporcji odczynników, aby zapewnić optymalną modyfikację. Ponadto ważne jest również sprawdzenie, czy parametry przędzenia elektrycznego są prawidłowe, aby zapewnić odpowiednią morfologię włókien.Po opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się dostarczaniem leków do wytwarzania elektroprzędzonych włókien, które nie tylko zamykają środki przeciwwirusowe we włóknie, ale mają zdolność do koniugacji czynników aktywnych przez powierzchnię włókna. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak elektrowirować włókno polimerowe, wykonywać modyfikację powierzchni włókna za pomocą przeciwwirusowego białka Griffithsin i jakościowej Griffithsin sprzężonej z włóknem. Nie zapominaj, że praca z odczynnikami takimi jak HFIP, beta-merkaptoetanol, EDC i NHS może być niezwykle niebezpieczna.Podczas wykonywania tej procedury należy zawsze podejmować środki ostrożności, takie jak prawidłowe stosowanie środków ochrony indywidualnej i stosowanie dygestoriów chemicznych.

fabrication-characterization-griffithsin-modified-fiber-scaffolds-for

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

W niniejszym artykule omówiono proces elektroprzędzenia polimerów do inżynierii tkankowej i hodowli komórkowych. W szczególności opisano elektroprzędzenie makromerów fotoreaktywnych z dodatkowymi możliwościami przetwarzania w postaci fotopatronowania oraz elektroprzędzenia wielopolimerowego.

Elektroprzędzenie włóknistych rusztowań polimerowych do inżynierii tkankowej i hodowli komórkowych

Rusztowania otrzymane metodą elektroprzędzenia mogą być poddawane obróbce po produkcji w celu zastosowania ich w inżynierii tkankowej. W niniejszym opracowaniu opisujemy metody przędzenia złożonych rusztowań (poprzez przędzenie sekwencyjne), tworzenia rusztowań o większej grubości (poprzez nakładanie wielu warstw z wykorzystaniem wyżarzania termicznego lub parowego), zapewniania sterylności (produkcja aseptyczna lub sterylizacja po produkcji) oraz uzyskiwania odpowiednich właściwości...

Obróbka potransprodukcyjna włókien otrzymywanych metodą elektroprzędzenia do inżynierii tkankowej

Pomimo wyjątkowych właściwości mechanicznych i biochemicznych jedwabiu pająków, materiał ten nie może być pozyskiwany w dużych ilościach metodami konwencjonalnymi. W niniejszej pracy opisujemy efektywną strategię przędzenia sztucznych włókien jedwabiu pająka, co stanowi istotny proces dla badaczy analizujących produkcję jedwabiu pająków oraz jego zastosowanie jako biomateriałów nowej generacji.

Produkcja syntetycznego jedwabiu pajęczego w skali laboratoryjnej

Biokompatybilne nanoczujniki zol-żel reagujące na pH mogą być wbudowane w elektrowirowane rusztowania z poli(kwasu mlekowo-ko-glikolowego) (PLGA). Wyprodukowane rusztowania samoraportujące mogą być wykorzystywane do monitorowania warunków mikrośrodowiskowych in situ podczas hodowli komórek na rusztowaniu. Jest to korzystne, ponieważ konstrukt komórkowy 3D może być monitorowany w czasie rzeczywistym bez zakłócania eksperymentu.

Rusztowania samoraportujące do trójwymiarowej hodowli komórkowej

Ten protokół łączy elektroprzędzenie i mikrosfery w celu opracowania rusztowań inżynierii tkankowej do kierowania neuronami. Czynnik wzrostu nerwów zamknięto w mikrosferach PLGA i elektroprzędzono w rusztowania włókniste z kwasem hialuronowym (HA).  Bioaktywność białka badano poprzez wysiewanie rusztowań pierwotnymi zwojami korzenia grzbietowego piskląt i hodowlę przez 4-6 dni.

Elektroprzędzenie Czynnik wzrostu uwalniający mikrosfery do włóknistych rusztowań

Tutaj prezentujemy protokół wytwarzania elektroprzędzonych rusztowań z nanowłókien o stopniowanej organizacji włókien i badamy ich zastosowania w regulacji morfologii/orientacji komórek. Gradienty w odniesieniu do właściwości fizycznych i chemicznych rusztowań z nanowłókien oferują szeroką gamę zastosowań w dziedzinie biomedycyny.

Rusztowania z nanowłókien elektroprzędzonych z gradacją w organizacji włókien

Rusztowania dla inżynierii tkankowej muszą podsumować złożone biochemiczne i biofizyczne mikrośrodowisko niszy komórkowej. W tym miejscu pokazujemy zastosowanie międzyfazowych włókien kompleksowania polielektrolitów jako platformy do tworzenia kompozytowych, wieloskładnikowych rusztowań polimerowych o przedłużonym uwalnianiu biochemicznym.

Rusztowania kompozytowe z międzyfazowych włókien polielektrolitowych do czasowo kontrolowanego uwalniania biomolekuł

Przedstawiono protokół mikroprzepływowego przędzenia i charakterystyki mikrostruktury regenerowanego jedwabnego włókna fibroinowego.

Mikroprzepływowe przędzenie na sucho i charakterystyka regenerowanych włókien fibroiny jedwabiu

To jest protokół tworzenia suchych makroporowatych rusztowań alginianowych, które pośredniczą w efektywnym transferze genów wirusowych, do wykorzystania w inżynierii genetycznej limfocytów T, w tym limfocytów T do terapii komórkami CAR-T. Wykazano, że rusztowania transdukują aktywowane pierwotne limfocyty T z transdukcją &gt;85%.

Wytwarzanie i stosowanie suchych makroporowatych rusztowań alginianowych do transdukcji wirusowej limfocytów T

Wkładki do hodowli tkankowych z plastikowymi membranami są złotym standardem w laboratoriach hodowli komórkowych jako przepuszczalne nośniki do tworzenia warstw komórkowych i modeli tkanek barierowych. W niniejszym artykule przedstawiamy prostą metodę zastąpienia plastikowej membrany bardziej biologicznie istotną membraną wykonaną z rekombinowanego funkcjonalizowanego białka pajęczej nici.

Nanowłóknista błona podstawna naśladująca wykonana z rekombinowanej, funkcjonalizowanej nici pajęczej w niestandardowych wkładkach do hodowli tkankowych

Poznaj metodę wytwarzania i modyfikacji powierzchniowej włókien PLGA białkiem Griffithsin w celu zapobiegania infekcjom HIV-1. Technika ta maksymalizuje aktywność przeciwwirusową poprzez lokalizację białka na powierzchni rusztowania.

Wytwarzanie i charakterystyka rusztowań z włókien modyfikowanych przez Griffithsin w celu zapobiegania infekcjom przenoszonym drogą płciową (Wideo) | JoVE Journal

Wytwarzanie i charakterystyka rusztowań z włókien modyfikowanych przez Griffithsin w celu zapobiegania infekcjom przenoszonym drogą płciową

Przeglądaj więcej filmów