12 września 2017
Ten krok po kroku protokół analizuje zachowanie Drosophila w ujemnej geotaksji za pomocą zautomatyzowanego systemu wielocylindrowego, który pomieści setki much i synchronizuje ich działania za pomocą silnika elektrycznego. Po synchronizacji zachowanie ujemnej geotaksji much jest badane, nagrywane cyfrowo i analizowane za pomocą oprogramowania RflyDetection.
Głównym celem tego zautomatyzowanego szybkiego iteracyjnego testu negatywnej geotaksji jest analiza niedoborów wspinaczkowych dorosłych Drosophila związanych z neurodegeneracją. Ta metoda może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie neurologii, takie jak mechanizm niedoborów lokomocyjnych związanych z neurodegeneracją. Główną zaletą tej techniki jest to, że aktywność wspinaczkowa much może być analizowana w sposób zautomatyzowany i o wysokiej precyzji.
Zastosowanie tej techniki rozciąga się na terapię i diagnozę neurodegeneracji, ponieważ choroby neurodegeneracyjne są często związane z postępującą utratą zdolności ruchowych i zmniejszonym czasem życia oraz neurodegeneracją zależną od wieku. Po raz pierwszy mieliśmy pomysł na tę metodę. Chcieliśmy mierzyć aktywność lokomotywną dorosłych Drosophila w bardziej dokładny sposób.
Aby przeprowadzić kolekcjonowanie much, należy początkowo utrzymywać je na standardowym pokarmie na 25 stopniach Celsjusza, 70% wilgotności i w cyklu 12 godzin światła, 12 godzin ciemności. Zbieraj dziewicze samice UAS-Dicer2 DDC-GAL4 pod znieczuleniem dwutlenkiem węgla. Skojarz dziewice z dwu dniowymi dorosłymi samcami o następujących genotypach, z proporcją samiec/samica jedno-do-dwóch.
Oddzielnie zbieraj nowo wyklutych samców i samice w trzy pojemniki na każdą grupę na eksperyment, umieszczając 10 much w każdym zwykłym pojemniku na muchy z standardowym pokarmem. Następnie ustaw pojemniki na 25 stopni Celsjusza. Aby przeprowadzić zautomatyzowany test RING, przenieś 10 zebranych much każdego genotypu do każdego pojemnika.
Następnie zabezpiecz pojemnik za pomocą śruby. Analizuj muchy kontrolne i muchy o różnych genotypach razem dla każdego zestawu eksperymentów. Włącz cyfrową kamerę umieszczoną przed urządzeniem i gdy muchy są załadowane i gotowe, zacznij nagrywać.
Kamera powinna być umieszczona poziomo, a kamerę w odpowiedniej odległości od urządzenia RING, aby uchwycić pozycje we wszystkich muchach w stosunkowo dokładnych miejscach. Po pozwoleniu jednej minucie na osiedlenie się much w pojemnikach, włącz kontroler krokowy, który steruje sterownikiem krokowym. To napędza mały silnik elektryczny do sterowania podłączonym dźwigniem, tak aby kolejno wspinały się i stukały w urządzenie cztery razy w ciągu dwóch sekund.
Po stuknięciu urządzenia, zauważ, że muchy zaczynają wspinać się po ścianie. Przy nadal włączonym nagrywaniu, powtórz synchronizację tak jak właśnie pokazano, w 60-sekundowych odstępach przez trzy do pięciu kolejnych prób. Powtórz eksperyment dla 5, 15, 25 i 35-dniowych much.
Przeprowadź co najmniej trzy niezależne eksperymenty dla każdej grupy dla każdego eksperymentu, z co najmniej 30 zebranymi muchami lub trzema pojemnikami. Aby analizować dane, zaimportuj nagranie wideo do komputera. Dla każdej próby, weź zrzut ekranu z wideo sześć sekund po stuknięciu.
W oprogramowaniu R-fly detection, użyj menu pliku, aby zaimportować obraz zrzutu ekranu. Następnie, używając ikony linii bazowej na pasku narzędziowym, precyzyjnie ustaw górną i dolną linię bazową pojemnika, a następnie użyj kursora, aby zaznaczyć górną i dolną linie bazowe na obrazie. W pasku Ustawienia, w polu Flies in Rect, wprowadź liczbę much na pojemnik, a w polu Tube Height, wprowadź długość pojemnika.
Indywidualne pozycje much są wykrywane i oznaczane punktami na ekranie dla każdego pojemnika. Zauważ, że w tabeli na prawej panelu, oprogramowanie automatycznie określa odległość wspinaczki dla każdej muchy i wyświetla wartości średnie z 10 much w każdym pojemniku. Prezentuj dane jako średnia plus minus SEM.
Oblicz wartości P istotności przy użyciu jednoczynnikowej analizy wariancji z testem wielokrotnego porównania Bonferroniego. Analiza much Dicer2 przy użyciu zautomatyzowanego testu RING przedstawionego w tym filmie wykazała wiek zależny spadek odległości wspinaczki w sześciosekundowym przedziale czasowym zarówno dla samców, jak i samic, sugerując, że ekspresja aux w dopaminergicznych lub DA neuronach jest kluczowa dla aktywności lokomocyjnej much. Zdolność wspinaczkowa nie wydaje się być wpłynięta na nadmierną ekspresję auxGFP w neuronach DA i współwystępowanie auxR i auxGFP w neuronach DA ratowanych od fenotypu RNAi.
Po opanowaniu, można to wykonać w dwóch do trzech godzin, jeśli jest wykonywane poprawnie. Posiadanie tego rozwoju jest teraz sposobem dla naukowców w dziedzinie neurologii na badanie neurodegeneracji w Drosophila melanogaster. Nie zapominaj, że praca z elektrycznym urządzeniem RING może być niezwykle niebezpieczna, a każde potwierdzenie powinno być mocno zaciśnięte i starannie sprawdzone przed przeprowadzeniem tej procedury.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół szczegółowo opisuje zautomatyzowaną metodę analizy zachowania ujemnej geotaksji u Drosophila, koncentrując się na deficytach zdolności wspinaczkowych osobników dorosłych związanych z neurodegeneracją. Technika ta wykorzystuje system wielocylindryczny do synchronizacji i rejestracji ruchów much, co pozwala na uzyskanie informacji na temat deficytów lokomocyjnych.
Ten zautomatyzowany test wysokoprzepustowy umożliwia szybką kwantyfikację deficytów lokomocyjnych w modelach neurodegeneracji u Drosophila, wspierając wczesną walidację celów poprzez dostarczenie obiektywnych i powtarzalnych wyników behawioralnych. Metoda ta zwiększa pewność prognostyczną w badaniach przesiewowych na etapie przedklinicznym, umożliwiając jednoczesną analizę setek much z wielu genotypów i grup wiekowych, co ułatwia efektywną ocenę związków lub modyfikatorów genetycznych. Jej integracja z procesami badawczymi pomaga w redukcji ryzyka mechanistycznego w odniesieniu do celów neurodegeneracyjnych dzięki standaryzowanemu i skalowalnemu fenotypowaniu.
Analiza ta wpisuje się w kontinuum odkryć – od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego – oferując ilościowy punkt końcowy w zakresie zachowania, który łączy manipulacje genetyczne z wynikiem fenotypowym w modelach neurodegeneracji.