Zwężenie żyły głównej dolnej: mysi model zakrzepicy żył głębokich

Ogólnym celem tego zabiegu chirurgicznego jest stworzenie zwężenia żyły głównej dolnej, aby naśladować zniekształcenie przepływu krwi w celu zainicjowania zakrzepicy żył głębokich. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie zakrzepicy żylnej dotyczące mechanizmów inicjacji zakrzepicy żył głębokich. Główną zaletą tej techniki jest to, że symuluje ona zaburzenia przepływu krwi, kluczowy mechanizm inicjacji zakrzepicy w żyłach.

Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ oddzielenie żyły głównej dolnej od aorty i zrobienie między tymi tkankami jest trudne do wyjaśnienia werbalnie. Zacznij od ogolenia brzucha znieczulonej myszy o wadze od 8 do 12 tygodni o wadze od 19 do 25 gramów i umieść mysz w pozycji leżącej na poduszce grzewczej. Użyj sterylnego wacika, aby trzykrotnie zdezynfekować odsłoniętą skórę roztworem antybakteryjnym.

Potwierdź odpowiedni poziom sedacji poprzez brak reakcji na uszczypnięcie palca u nogi i przykryj mysz sterylną serwetą z otworem nad polem operacyjnym. Pod mikroskopem preparacyjnym wykonaj nacięcie wzdłuż linii środkowej brzucha, zaczynając 1,5 centymetra poniżej mostka i użyj patyczków kosmetycznych, aby wyprowadzić jelita na zewnątrz po lewej stronie zwierzęcia. Przykryj tkankę jelitową jałową gazą nasączoną solą fizjologiczną o temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Umieść retraktory tkankowe, aby rozszerzyć nacięcie i zlokalizować żyłę główną dolną lub IVC, a jej boczne gałęzie doogonowo do lewej żyły nerkowej. Za pomocą kleszczy podciągnij tkankę tłuszczową otaczającą boczne gałęzie, a następnie użyj drugich kleszczy, aby tunelować pod gałęzią. I podwiąż wszystkie boczne gałęzie jak najbliżej IVC za pomocą obojętnych szwów prolenowych 7-0.

Trzymając otaczające tkanki kleszczami, pociągnij IVC do góry i w lewo, aby wytworzyć napięcie w małym obszarze między IVC a aortą, dokładnie między IVC a lewą żyłą nerkową. Włóż drugą parę kleszczyków między aortę a IVC i otwórz i zamknij kleszcze nie więcej niż trzy do pięciu razy, aby zrobić otwór. Bardzo ważne jest, aby wykonać otwór dokładnie w miejscu, w którym IVC zbiega się z lewą żyłą nerkową.

Lewą ręką umieść dwucentymetrowy kawałek nici obojętnego prolenu 7-0 po lewej stronie jamy otrzewnej, w pobliżu IVC, a następnie pociągnij IVC do góry i ponownie w lewo. Włóż drugie kleszcze do otworu między aortą a IVC tak, aby końcówki pojawiły się po drugiej stronie IVC i przeciągnij szew z powrotem przez otwór. Zrób luźny prowizoryczny węzeł i umieść w węźle przekładkę igłową o rozmiarze 30, wygiętą w haczyk, w węzeł.

Po zaciśnięciu węzła usuń przekładkę i za pomocą wacika wróć do jelit do jamy otrzewnej. Za pomocą ciągłych pętli zamknij otrzewną szwem VICRYL 6-0 i zamknij skórę metalowymi zszywkami. Podskórnie wstrzyknij myszy 0,5 mililitra glukozy o temperaturze 37 stopni Celsjusza.

Następnie umieść mysz w indywidualnej klatce w komorze o temperaturze 25 stopni Celsjusza zawierającej jedzenie i wodę żelową z monitorowaniem aż do pełnego wyzdrowienia. Indukcja zwężenia w IVC inicjuje zniekształcenie i stagnację przepływu krwi, co skutkuje rozwojem skrzepliny, która jest strukturalnie podobna do skrzeplin w żyłach głębokich obserwowanych u ludzi i którą można łatwo uwidocznić makroskopowo. Ponadto w tym modelu zwężenia IVC obserwuje się podwyższony poziom D-dimeru, produktu degradacji fibryny, co wskazuje na obecność aktywnego procesu zakrzepowego podobnego do obserwowanego u ludzi.

Chociaż większość zwierząt doświadczalnych wytwarzała skrzepliny w tym modelu, jedną z głównych wad jest zmienność wielkości skrzeplin obserwowana między zwierzętami. Po opanowaniu tej techniki można ją wykonać w 15 minut, jeśli zostanie wykonana prawidłowo. Po opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się zakrzepicą żylną do zbadania mechanizmów zakrzepicy żył głębokich w modelu mysim.