12 stycznia 2018
Zaprojektowaliśmy 16-kanałowy czujnik EEG typu suchego, który jest nieinwazyjny, odkształcalny i wielokrotnego użytku. W artykule opisano cały proces od wytworzenia proponowanej elektrody EEG do przetwarzania sygnałów wizualnego potencjału wywołanego (VEP) mierzonych na skórze głowy myszy za pomocą suchego, nieinwazyjnego wielokanałowego czujnika EEG.
Ogólnym celem tej procedury jest pomiar wizualnych potencjałów wywołanych na skórze głowy myszy za pomocą suchego, nieinwazyjnego i wielokanałowego czujnika EEG. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na szybkie pytania w dziedzinie przedklinicznych badań translacyjnych, aby przełamać lukę w sygnałach w nieinwazyjnych badaniach EEG między ludźmi a zwierzętami laboratoryjnymi. Główną zaletą tej techniki jest jej nieinwazyjność, co ułatwia zrozumienie EEG zwierząt.
Ponadto zapewnia bezpieczne i wygodne środowisko eksperymentalne. Zacznij od przygotowania 16 pinów na jedną nieinwazyjną elektrodę. Wytnij dwa kawałki podłoża z włókna szklanego o wymiarach 15 milimetrów na 17 milimetrów.
Następnie wykonaj 16 otworów o średnicy 1,2 milimetra za pomocą precyzyjnej maszyny do grawerowania. Następnie wywierć 16 otworów w płaskich podłożach zgodnie z koordynacją sondy, równomiernie w odstępie dwóch milimetrów. Ułóż dwa podłoża i nałóż jedną kroplę szybko działającego kleju klejącego między warstwy podłoża, aby utworzyć podwójną warstwę o grubości trzech milimetrów, podtrzymującą 16 stabilnych i równoległych elektrod podczas akwizycji sygnału.
Następnie ręcznie zamontuj 16 elektrod na podłożu jedna po drugiej. i połącz końcową część nasadki lutowniczej każdej elektrody ze złączem odpornym na dotyk. Na koniec zakryj i ukryj odsłonięte połączenia rurką termokurczliwą do izolacji elektrycznej.
Na znieczulonej myszy zacznij od nałożenia maści do oczu za pomocą bawełnianego wacika, aby rogówka była wilgotna. Usuń włosy wokół głowy i ramion za pomocą maszynki do strzyżenia włosów. Następnie rozprowadź dostępny w handlu krem do depilacji i trzymaj go w tym miejscu przez trzy do czterech minut.
Na koniec usuń nałożoną depilację szpatułką, a następnie przetrzyj resztę wilgotnymi chusteczkami, kilkakrotnie nakładając wodę. Zacznij od zamontowania głowy myszy na ramie stereotaktycznej, umieszczając paski douszne w kanałach słuchowych myszy i dokręcając je na miejscu. Zamontuj czujnik w specjalnie wykonanym uchwycie elektrody.
Następnie przymocuj uchwyt czujnika do ramy stereotaktycznej. Zlokalizuj elastyczną elektroencefalografię lub czujnik EEG, biorąc pod uwagę elektrodę odniesienia i pozycję bregma. Następnie ostrożnie opuść czujnik w kierunku pionowym, tak aby tłoki elektrod z układem stykały się równomiernie ze skórą głowy myszy na zakrzywionym brzegu.
Sprawdź, czy impedancje mieszczą się w odpowiednim zakresie, od 100 kiloomów do dwóch megaomów. Zmień położenie elektrody, gdy jakakolwiek wartość impedancji wykracza poza zakres. Następnie umieść fotostymulator w odległości 20 centymetrów od oczu myszy.
Ustaw parametry urządzeń eksperymentalnych tak, aby częstotliwość próbkowania wynosiła 500 Hz, filtrowanie wycinające wynosiło 60 Hz, interwał między bodźcami wynosił 10 sekund, czas trwania błysku wynosił 10 milisekund, a liczba bodźców błyskowych wynosiła 100 prób na badany. Na koniec, przed rozpoczęciem zapisów EEG, dostosuj mysz przez 10 minut do ciemnej klatki, aby uzyskać ciemną adaptację wizualną. Średnie wizualne reakcje wywołanego potencjału wskazują na minimalne fluktuacje sygnału po stymulacji, trwające mniej niż 300 milisekund.
Sygnał stabilizuje się stabilnie w czasie w okresie po stymulacji. Co więcej, 14 kanałów można podzielić na kilka grup w oparciu o odpowiedzi VEP, ujawniając podobne morfologie i wzorce. Po opanowaniu tej techniki można ją ukończyć w ciągu godziny, jeśli zostanie wykonana prawidłowo.
Podczas wykonywania tej procedury należy pamiętać o sprawdzeniu stanu znieczulenia zwierzęcia. Łącząc tę procedurę z innymi metodami, takimi jak stymulacja mózgu lub powierzchniowe zapisy elektrofizjologiczne, można wykonać w celu uzyskania odpowiedzi na dodatkowe pytania, takie jak optymalizacja parametrów stymulacji mózgu lub lokalizacja źródła. Po jej opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się obszarami badań translacyjnych do łączenia badań podstawowych z badaniami ludzkiego mózgu z porównywalnymi, wiarygodnymi i skutecznymi badaniami bez inwazyjnego przygotowania chirurgicznego.
Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak mierzyć wizualne potencjały wywołane na skórze głowy myszy za pomocą nowej elektrody, która ma zalety elastyczności, stanu suchego, możliwości wielokanałowych, nieinwazyjności i możliwości ponownego użycia.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia suchy, 16-kanałowy czujnik EEG zaprojektowany do nieinwazyjnego, elastycznego pozyskiwania sygnałów z czaszki myszy. Skupia się ono na pomiarze potencjałów wywołanych wzrokiem (VEP) w badaniach przedklinicznych, usprawniając nieinwazyjną technologię EEG w celu lepszego zrozumienia aktywności mózgu zwierząt.
Nieinwazyjne metody EEG w modelach przedklinicznych niwelują lukę translacyjną między neurofizjologią zwierząt i ludzi, umożliwiając powtarzalne i skalowalne odczyty neuronalne bez konieczności interwencji chirurgicznej. Ten suchy czujnik wielokanałowy wspiera ograniczanie ryzyka mechanistycznego w walidacji celów poprzez dostarczanie ilościowych, rozdzielczych w czasie biomarkerów funkcji dróg sensorycznych. Jego możliwość ponownego użycia oraz kompatybilność z projektami badań podłużnych zwiększają efektywność portfolio w wczesnych etapach odkrywania leków ukierunkowanych na terapeutyki OUN.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków – od testowania hipotezy dotyczącej celu terapeutycznego po optymalizację wiodących związków, gdzie funkcjonalne biomarkery neuronalne stanowią podstawę do decyzji o kontynuacji lub przerwaniu prac przed poniesieniem znacznych nakładów inwestycyjnych.