2 lutego 2018
Tutaj prezentujemy protokół do badania zachowań związanych ze wzrostem roślin, a zwłaszcza fenotypów w powtarzalny sposób. Pokazujemy, jak zapewnić zmienne, a jednocześnie stabilne warunki oświetleniowe. Prawidłowe analizy zależą od wystarczającej liczby prób i prawidłowych ocen statystycznych.
Ogólnym celem tej wizualnej i molekularnej analizy fenotypu jest porównanie wzrostu roślin w różnych warunkach oświetleniowych i o różnych genotypach. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie badań roślin, takie jak aklimatyzacja do różnych warunków oświetleniowych. Główną zaletą tej techniki jest to, że daje ona powtarzalne i policzalne wyniki.
Procedurę zademonstruje Franka Seiler, technik w moim laboratorium. Na początek oblicz odpowiednią wielkość próbki i przygotuj wymaganą liczbę doniczek o wymiarach sześć na siedem centymetrów z ziemią i posadź w każdej z nich pojedyncze nasiono. Następnie wernalizuj nasiona w temperaturze czterech stopni Celsjusza przez dwa dni.
Ustaw wilgotność względną powietrza w komorze klimatycznej na 65%, a temperaturę na 22 i 16 stopni Celsjusza na 16-godzinny cykl dzienny i ośmiogodzinny cykl nocny. Następnie dostosuj światło na wszystkich poziomach do intensywności 200 mikromoli na centymetr kwadratowy i sekundę. Użyj wbudowanego spektrometru, aby stale monitorować wyjście spektralne.
Umieść rośliny w komorze klimatycznej i przykryj je przezroczystą górą, aż pojawią się dobrze rozwinięte kotalininy. Sprawdzaj wzrokowo rośliny i rejestruj dane dotyczące wzrostu fotograficznie w regularnych odstępach czasu. Aby zapewnić spójne obrazy, użyj statywu do aparatu i paska skali dla każdego zdjęcia.
Najpierw umieść roślinę w ciemności na kilka minut. Następnie ustaw fluorometr z modulacją impulsową i kamerę w odpowiedniej odległości od rośliny. Cała rozeta powinna być widoczna w oknie na żywo.
Uruchom oprogramowanie i wybierz opcję mini, która pojawi się w oknie wyboru jednostki. Następnie kliknij OK. Następnie wybierz niebieski w wyskakującym okienku i kliknij OK.
Wybierz opcję wideo na żywo i obróć pierścień regulacyjny soczewki obiektywu, aby ustawić ostrość obrazu, a następnie wybierz określony region rośliny. Aby wyjść z okna transmisji na żywo, kliknij pole wyjścia w prawym górnym rogu. Zdefiniuj obszar zainteresowania (AOI) z ustawieniami domyślnymi.
Na środku ekranu automatycznie pojawi się okrąg i czerwona ramka ze średnią wartością FT pikseli zawartych w AOI. Musisz usunąć ten obszar zainteresowania przed zdefiniowaniem własnego. Następnie zaakceptuj ustawienia domyślne w zakładce po prawej stronie.
Następnie kliknij dodaj w zakładce AOI i umieść okrąg w obszarze liścia. Powtórz ten proces pięć razy na liść, wybierając kilka liści na roślinę. Zaznacz odpowiednie pole z maksymalną wydajnością kwantową PS 2, aby wybrać obraz FV/FM.
Zastosuj nasyconą lampę błyskową, aby zmierzyć parametry fotosyntezy za pomocą analizy zaciskania fluorescencyjnego, naciskając przycisk F0, FM. Znajdź wyniki na karcie raportu. Zaznacz wszystkie odpowiednie pola i wyeksportuj je do odpowiedniego oprogramowania analitycznego.
W tym badaniu wykorzystano światła LED, aby zapewnić stabilną ilość i jakość światła w obserwacji i analizie wzrostu roślin i typów żył. Dane z roślin zebrano po 12, 21 i 28 dniach od uszycia. Na tym rysunku przedstawiono średnie wpływające wartości plonu kwantowego PS 2 dla 5 roślin i 5 roślin.
Dane z roślin uprawianych w symulowanym świetle słonecznym, wzbogaconym światłem niebieskim lub czerwonym zostały ocenione statystycznie. Rysunek ten przedstawia średnie wpływające wartości plonu kwantowego PS 2 dla 5 roślin i 5 dziennie. Średnie wartości dla roślin uprawianych w świetle niebieskim i czerwonym były znacznie wyższe niż tych uprawianych w symulowanym świetle słonecznym.
Po zainstalowaniu lampy LED mogą zapewnić stabilne lub zmienne warunki oświetleniowe, oszczędzając dużo energii w porównaniu z lampami fluorescencyjnymi. Podczas eksperymentu ważne jest, aby codziennie zajmować się roślinami. Po opracowaniu, technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się badaniami nad roślinami do badania zachowań wzrostowych w różnych warunkach oświetleniowych o określonej długości fali.
Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak uprawiać i analizować rośliny pod kątem ich wizualnego i molekularnego typu żył w sposób ilościowy.
Niniejszy artykuł przedstawia protokół badania dynamiki wzrostu roślin w zmiennych warunkach oświetlenia. Podkreślono w nim znaczenie powtarzalności oraz oceny statystycznej w analizie fenotypów.
Ilościowa analiza wzrostu Arabidopsis thaliana w kontrolowanych warunkach oświetlenia umożliwia rzetelną weryfikację hipotez w obszarze biologii roślin oraz w procesach biotechnologii rolniczej. Stabilne, programowalne środowiska LED i zestandaryzowane pomiary fenotypowe zwiększają pewność predykcyjną na etapie wstępnych odkryć i walidacji cech. Podejście to ogranicza niejednoznaczność eksperymentalną i zwiększa powtarzalność badań translacyjnych oraz rozwoju platform badawczych.
Niniejszy protokół wpisuje się w kontinuum od odkrycia do walidacji, wspierając wczesne testowanie hipotez, opracowywanie testów analitycznych oraz translacyjną ocenę cech.