2 lutego 2018
Tutaj prezentujemy protokół do badania zachowań związanych ze wzrostem roślin, a zwłaszcza fenotypów w powtarzalny sposób. Pokazujemy, jak zapewnić zmienne, a jednocześnie stabilne warunki oświetleniowe. Prawidłowe analizy zależą od wystarczającej liczby prób i prawidłowych ocen statystycznych.
Ogólnym celem tej wizualnej i molekularnej analizy fenotypu jest porównanie wzrostu roślin w różnych warunkach oświetleniowych i o różnych genotypach. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie badań roślin, takie jak aklimatyzacja do różnych warunków oświetleniowych. Główną zaletą tej techniki jest to, że daje ona powtarzalne i policzalne wyniki.
Procedurę zademonstruje Franka Seiler, technik w moim laboratorium. Na początek oblicz odpowiednią wielkość próbki i przygotuj wymaganą liczbę doniczek o wymiarach sześć na siedem centymetrów z ziemią i posadź w każdej z nich pojedyncze nasiono. Następnie wernalizuj nasiona w temperaturze czterech stopni Celsjusza przez dwa dni.
Ustaw wilgotność względną powietrza w komorze klimatycznej na 65%, a temperaturę na 22 i 16 stopni Celsjusza na 16-godzinny cykl dzienny i ośmiogodzinny cykl nocny. Następnie dostosuj światło na wszystkich poziomach do intensywności 200 mikromoli na centymetr kwadratowy i sekundę. Użyj wbudowanego spektrometru, aby stale monitorować wyjście spektralne.
Umieść rośliny w komorze klimatycznej i przykryj je przezroczystą górą, aż pojawią się dobrze rozwinięte kotalininy. Sprawdzaj wzrokowo rośliny i rejestruj dane dotyczące wzrostu fotograficznie w regularnych odstępach czasu. Aby zapewnić spójne obrazy, użyj statywu do aparatu i paska skali dla każdego zdjęcia.
Najpierw umieść roślinę w ciemności na kilka minut. Następnie ustaw fluorometr z modulacją impulsową i kamerę w odpowiedniej odległości od rośliny. Cała rozeta powinna być widoczna w oknie na żywo.
Uruchom oprogramowanie i wybierz opcję mini, która pojawi się w oknie wyboru jednostki. Następnie kliknij OK. Następnie wybierz niebieski w wyskakującym okienku i kliknij OK.
Wybierz opcję wideo na żywo i obróć pierścień regulacyjny soczewki obiektywu, aby ustawić ostrość obrazu, a następnie wybierz określony region rośliny. Aby wyjść z okna transmisji na żywo, kliknij pole wyjścia w prawym górnym rogu. Zdefiniuj obszar zainteresowania (AOI) z ustawieniami domyślnymi.
Na środku ekranu automatycznie pojawi się okrąg i czerwona ramka ze średnią wartością FT pikseli zawartych w AOI. Musisz usunąć ten obszar zainteresowania przed zdefiniowaniem własnego. Następnie zaakceptuj ustawienia domyślne w zakładce po prawej stronie.
Następnie kliknij dodaj w zakładce AOI i umieść okrąg w obszarze liścia. Powtórz ten proces pięć razy na liść, wybierając kilka liści na roślinę. Zaznacz odpowiednie pole z maksymalną wydajnością kwantową PS 2, aby wybrać obraz FV/FM.
Zastosuj nasyconą lampę błyskową, aby zmierzyć parametry fotosyntezy za pomocą analizy zaciskania fluorescencyjnego, naciskając przycisk F0, FM. Znajdź wyniki na karcie raportu. Zaznacz wszystkie odpowiednie pola i wyeksportuj je do odpowiedniego oprogramowania analitycznego.
W tym badaniu wykorzystano światła LED, aby zapewnić stabilną ilość i jakość światła w obserwacji i analizie wzrostu roślin i typów żył. Dane z roślin zebrano po 12, 21 i 28 dniach od uszycia. Na tym rysunku przedstawiono średnie wpływające wartości plonu kwantowego PS 2 dla 5 roślin i 5 roślin.
Dane z roślin uprawianych w symulowanym świetle słonecznym, wzbogaconym światłem niebieskim lub czerwonym zostały ocenione statystycznie. Rysunek ten przedstawia średnie wpływające wartości plonu kwantowego PS 2 dla 5 roślin i 5 dziennie. Średnie wartości dla roślin uprawianych w świetle niebieskim i czerwonym były znacznie wyższe niż tych uprawianych w symulowanym świetle słonecznym.
Po zainstalowaniu lampy LED mogą zapewnić stabilne lub zmienne warunki oświetleniowe, oszczędzając dużo energii w porównaniu z lampami fluorescencyjnymi. Podczas eksperymentu ważne jest, aby codziennie zajmować się roślinami. Po opracowaniu, technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się badaniami nad roślinami do badania zachowań wzrostowych w różnych warunkach oświetleniowych o określonej długości fali.
Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak uprawiać i analizować rośliny pod kątem ich wizualnego i molekularnego typu żył w sposób ilościowy.
Ten artykuł przedstawia protokół badania zachowania wzrostu roślin w różnych warunkach oświetleniowych. Podkreśla znaczenie odtwarzalności i oceny statystycznej w analizie fenotypów.
Quantitative analysis of Arabidopsis thaliana growth under controlled light conditions enables robust hypothesis testing for plant biology and agricultural biotechnology pipelines. Stable, programmable LED environments and standardized phenotypic measurements support predictive confidence in early discovery and trait validation. This approach reduces experimental ambiguity and enhances reproducibility for translational research and platform development.
This protocol integrates into the discovery-to-validation continuum, supporting early hypothesis testing, assay development, and translational trait evaluation.