23 kwietnia 2018
W tym badaniu opisujemy system in-ovo jako obiecujące narzędzie do testowania związków insulinomimetycznych w żywym organizmie. Do głównych zalet należy zaliczyć odpowiednie przepustowości i akceptowalne koszty, które umożliwiają identyfikację fitozwiązków o właściwościach insulinomimetycznych.
Ogólnym celem przedstawionego zmodyfikowanego modelu zarodka pisklęcia jest scharakteryzowanie substancji o właściwościach insulinomimetycznych w organizmie żywym. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie badań nad diabetykami, takie jak znalezienie ekstraktów ziołowych o właściwościach insulinomimetycznych, które obniżają poziom glukozy we krwi bez skutków ubocznych. Główną zaletą tej techniki jest to, że skuteczność związków może być testowana w żywym organizmie przy odpowiedniej przepustowości i że nie jest wymagana zgoda komisji bioetycznej.
Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ etapy przygotowania i cięcia są trudne do nauczenia, ponieważ naczynia nie są łatwe do przygotowania lub często są całkowicie przecięte i gubią się. Sprawdź jaja pod kątem zapłodnienia po inkubacji w temperaturze 38 stopni Celsjusza przy średniej wilgotności od 40 do 60 procent przez okres do 11 dni. Aby to zrobić, zanurz frędzle lampy konserwującej w poduszce z atramentem, a następnie zapal spiczastą stronę jajka.
Aby zidentyfikować pęcherz powietrzny, sprawdź, czy nie ma różnic w jasności na górze jajka. Pęcherz powietrzny wydaje się być okrągłym, bardziej przezroczystym obszarem, podczas gdy albumina wydaje się ciemniejsza. Zaznacz położenie pęcherza powietrznego, lekko dociskając lampę do jajka wcześniej nałożonym tuszem.
Wyklucz niezapłodnione jaja, które nie wykazują różnicy w jasności między albuminą a pęcherzem powietrznym. Przygotuj insulinomimetyk lub insulinę, rozcieńczając do pożądanego stężenia w zrównoważonym roztworze soli Hanka. Aby nałożyć wybrany związek, użyj spiczastej pęsety, aby ostrożnie dziobać skorupkę jajka w zaznaczonym obszarze pęcherza powietrznego, aby utworzyć otwór równy średnicy strzykawki z igłą.
Za pomocą sterylnej strzykawki o pojemności jednego mililitra wstrzyknąć 300 mikrolitrów roztworu buforowego zawierającego substancję będącą przedmiotem zainteresowania. Aby określić działanie substancji obniżające poziom glukozy we krwi, umieść jaja z powrotem w inkubatorze i zmierz poziom glukozy we krwi po 60, 120 i 180 minutach. W odpowiednim momencie ostrożnie wyjmij skorupkę jajka nad pęcherzem powietrznym i wyrównaj błonę skorupki jaja, dodając wystarczającą ilość buforu PBS, aby pokryć całą błonę.
Po wylaniu nadmiaru PBS użyj spiczastej pęsety, aby ostrożnie zdjąć błonę skorupki jajka. Użyj mikronożyczek, aby przeciąć i usunąć błonę kosmówkowo-omocznikową, unikając dużych naczyń w błonie. Zlokalizuj duże naczynie wychodzące z brzucha zarodka.
Wyjmij to naczynie z albuminy za pomocą zamkniętych mikronożyczek i umieść je na plastikowym pasku pH. Przesuń pasek pH pod naczyniem i ostrożnie pociągnij mikronożyczki. Konieczne jest przygotowanie dużego naczynia krwionośnego wychodzącego z jamy brzusznej, ponieważ mniejsze mogą się rozerwać i uniemożliwić pobranie krwi.
Usunąć płyn otaczający naczynie za pomocą pipety, aby uniknąć rozcieńczenia krwi. Następnie użyj bibuły filtracyjnej, aby wysuszyć naczynie i pasek pH. W przypadku pobierania krwi ważne jest, aby nie przecinać całkowicie naczynia, ponieważ zostanie ono utracone.
Następnie za pomocą mikronożyczek ostrożnie przeciąć naczynie krwionośne z jednej strony. Nie przecinaj naczynia więcej niż do połowy, aby uniknąć całkowitego przecięcia naczynia. Zebrać wyciekającą krew na pasek pH za pomocą pipety.
Do określenia poziomu glukozy za pomocą glukometru potrzeba 10 mikrolitrów krwi. Po zastosowaniu wybranego związku przez 24 godziny, należy zrównoważyć błonę skorupki jaja PBS jak poprzednio przez co najmniej 30 sekund. Usuń nadmiar buforu PBS, wylewając go.
Następnie ostrożnie zdejmij membranę skorupki jajka za pomocą spiczastej pęsety. Sprawdź naczynia krwionośne pod kątem zmian chorobowych i potwierdź witalność, obserwując ruch zarodka pisklęcia. Do eksperymentów wykorzystano ekstrakty przygotowane z combretum indicum, czyli pnącza z Rangunu, oraz nieujawniony ekstrakt oznaczony jako ekstrakt 0845.
Jak wskazano na tym rysunku, ekstrakt z pnącza Rangunu nie spowodował znacznego obniżenia stężenia glukozy we krwi. Jednak stężenie glukozy we krwi udało się obniżyć za pomocą ekstraktu 0845, a znaczący efekt zaobserwowano po wydłużeniu czasu inkubacji. W porównaniu z jajami nieleczonymi, traktowanie jaj toksycznym ekstraktem ziołowym w dniu 10 przez 24 godziny doprowadziło do poważnych zmian w naczyniach krwionośnych w błonie kosmówkowej omoczniowej.
Zmiany chorobowe były również widoczne na leczonym zarodku w porównaniu z normalną kontrolą. Po opanowaniu dwa jaja można przeanalizować pod kątem poziomu glukozy i toksyczności w ciągu pięciu minut, jeśli zostaną wykonane prawidłowo. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak przygotować naczynia krwionośne i pobrać krew w modelu zarodka kurczaka, aby określić ilościowo działanie związków naturalnych lub syntetycznych na obniżenie poziomu glukozy we krwi.
Niniejsze badanie przedstawia zmodyfikowany model zarodka kurczaka jako narzędzie do oceny związków imitujących insulinę. System in-ovo umożliwia testowanie ekstraktów roślinnych, które mogą obniżać poziom glukozy we krwi bez działań niepożądanych, wykazując znaczące korzyści pod względem wydajności i kosztów.
Ocena związków insulinomimetycznych na etapie odkrywania wymaga predykcyjnych, skalowalnych i etycznie zoptymalizowanych modeli in vivo do wstępnej selekcji kandydatów przed badaniami na ssakach. Zmodyfikowany model zarodka kurczaka umożliwia szybką, ilościową ocenę efektów obniżania poziomu glukozy we krwi oraz toksyczności, wspierając wczesne ograniczanie ryzyka w przypadku kandydatów syntetycznych i roślinnych. Podejście to usprawnia podejmowanie decyzji dotyczących portfolio poprzez dostarczenie praktycznych danych na temat skuteczności i bezpieczeństwa związków w żywym systemie.
Ten model in ovo stanowi ogniwo pośrednie między screeningiem in vitro a przedklinicznymi badaniami na ssakach, zapewniając kontekst żywego organizmu dla oceny funkcjonalnej i bezpieczeństwa związków insulinomimetycznych.