8 marca 2018
Neowaskularyzacja tęczówki, częste powikłanie choroby niedokrwiennej siatkówki, może prowadzić do zagrażającej wzrokowi jaskry neowaskularnej. W tym miejscu opisujemy mysi protokół indukowania eksperymentalnej neowaskularyzacji tęczówki, który może być wykorzystany do nieinwazyjnej oceny substancji modulujących angiogenezę.
Ogólnym celem tej procedury jest indukcja unaczynienia tęczówki, co umożliwia bezpośrednią wizualizację procesów angiogennych in vivo. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie okulistyki, szczególnie w chorobach neowaskularnych. Główną zaletą tej techniki jest to, że wykorzystuje myszy albinosy, aby umożliwić bezpośrednią wizualizację naczyń krwionośnych vivo.
Dzięki tej metodzie może dać wgląd w chorobę neowaskularną oka. Może być również stosowany jako ogólny model angiogenezy, na przykład do testowania nowych terapii angiogennych. Wizualna demonstracja tej metody ma kluczowe znaczenie, ponieważ rozwarstwienie tęczówki jest trudne ze względu na mały rozmiar oka myszy.
Przy odrobinie wprawy można to jednak opanować. Po znieczuleniu myszy P12.5 i przygotowaniu jej do zabiegu, umieść ją w bocznej pozycji leżącej pod stereoskopem i upewnij się, że maska jest dobrze ustawiona. Oko powinno wypełniać pole widzenia.
Konieczne jest wyraźne skupienie oka. Następnie, za pomocą małych kleszczy do wiązania w dłoni niedominującej, ostrożnie wysuń oko, wywierając nacisk w dół na powieki, grzbietową i brzuszną do oka. Pomaga mocne trzymanie powieki.
Zanim przejdziesz dalej, udokumentuj na zdjęciu układ naczyniowy przy 40X. Następnie użyj stereoskopu, aby zlokalizować rąbek rogówki. Rąbek myszy albinosów BALB/c można łatwo zidentyfikować jako okrężny splot naczyniowy za rogówką.
Teraz, w dominującej ręce, trzymaj igłę ze skosem o rozmiarze 30 i użyj jej do wykonania małego nakłucia błony naczyniowej oka w pobliżu tylnej granicy rąbka błony naczyniowej między ciałem rzęskowym a orą serrata. Wykonaj nakłucie, używając tylko końcówki igły i nie więcej niż połowy skosu. Unikaj pęknięcia soczewki.
Nakłucie powinno być samouszczelniające, ale nadal umożliwiać wstrzyknięcie do gałki ocznej badanych substancji przez ranę. Następnie należy wykonać drugie nakłucie błony naczyniowej oka w przeciwległym miejscu oka. Zoptymalizuj nakłucia, aby znajdowały się w najbardziej grzbietowej i brzusznej pozycji.
Powtarzaj nakłucia błony naczyniowej oka w tych samych dwóch pozycjach co cztery dni, aż do P24.5. A przed powtórzeniem nakłucia zawsze sprawdź, czy nie ma zaćmy pourazowej. Po wyłuszczeniu oka i utrwaleniu go zgodnie z opisem w protokole tekstowym, usunąć roztwór utrwalający i trzykrotnie przepłukać oko świeżym PBS.
Następnie umieść oko na gładkiej, suchej powierzchni przednią komorą do góry. Następnie włóż skośną igłę o rozmiarze 30 z tyłu do rąbka, aby utworzyć punkt wejścia. Następnie zabezpiecz przedni odcinek małymi kleszczami do wiązania i użyj prostych nożyczek Clayman-Vannas, aby przeciąć rąbek, jednocześnie obracając oko.
Stosowanie częściowych cięć może ułatwić ten proces. Po zakończeniu tylny odcinek oka powinien się zwolnić. Następnie ustaw przedni odcinek w dół, aby odsłonić soczewkę.
Ostrożnie wyjmij soczewkę, chwytając ją małymi kleszczami i pociągając do góry. Teraz ustaw przedni odcinek z rogówką skierowaną w dół i z nacięciem prostopadłym do pola widzenia. Następnie delikatnie chwyć tkankę za ciałem rzęskowym za pomocą małych kleszczy do wiązania w ręce niedominującej.
Proste nożyczki Clayman-Vannas do przycinania tylko przed ciałem rzęskowym w celu usunięcia siatki beleczkowej i odizolowania tęczówki. Tęczówka powinna wtedy poruszać się w rogówce. Następnie użyj małych kleszczy do wiązania, aby chwycić rogówkę i ostrożnie przenieś przednią muszlę oczną na 96-dołkową płytkę zawierającą 200 mikrolitrów PBS.
Utrzymuj uchwyt na rogówce i kontynuuj preparowanie tęczówki, przepłukując tkankę PBS. W razie potrzeby można użyć igły o rozmiarze 30, aby pomóc w przemieszczeniu tęczówki. Teraz usuń rogówkę za pomocą małych kleszczy do wiązania.
Wyizolowana tęczówka może być następnie tymczasowo przechowywana w PBS w temperaturze czterech stopni Celsjusza do czasu eksperymentów. Myszy albinosowe BALB / c w P12,5 poddano nakłuciom błony naczyniowej oka powtarzanym co czwarty dzień aż do P24,5, zgodnie z opisem. Ze względu na przezroczystość rogówki i niedobór melaniny u myszy BALB/c, unaczynienie tęczówki jest łatwo widoczne u szczeniąt P16,5 i nasila się przez cały czas trwania protokołu.
W P27.5 myszy zostały poddane eutanazji, a ich tęczówki zostały starannie wypreparowane. Nakłucia wywołały reakcję naczyniową tęczówki, uruchamiając system gojenia się ran. Przeprowadzono immunohistochemię przeciwko PECAM1.
Powstałe plamy wykazały wzrost ogólnego unaczynienia tęczówek przebitych oczu w porównaniu z grupą kontrolną. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak wywołać angiogenezę tęczówki i skutecznie wyizolować tęczówkę myszy. Po tej procedurze można zastosować inne metody, takie jak QBCR, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania molekularne i komórkowe, takie jak testowanie skuteczności substancji proangiogennych lub antyangiogennych.
Po jej opracowaniu technika ta utorowała naukowcom drogę do badania chorób neowaskularnych za pomocą nieinwazyjnych metod in vivo z wykorzystaniem małych gryzoni jako modelu.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia protokół mysi służący do indukowania neowaskularyzacji tęczówki, stanu powiązanego z niedokrwienną chorobą siatkówki oraz jaskrą neowaskularną. Metoda ta umożliwia nieinwazyjną ocenę substancji modulujących angiogenezę poprzez bezpośrednią wizualizację in-vivo naczyń krwionośnych tęczówki.
Model ten umożliwia nieinwazyjną, podłużną ocenę procesów angiogennych w tęczówce, wspierając wczesną walidację celów dla terapii naczyniowo-nowotworowych. Wykorzystując przezroczystość oczu myszy albinosów, zapewnia on skalowalną platformę do oceny modulatorów angiogenezy w istotnym dla choroby kontekście okulistycznym. Podejście to zmniejsza zależność od histologii końcowej i zwiększa pewność prognostyczną w przedklinicznym przesiewie angiogenezy.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkrywania procesów angiogenezy, od testowania hipotez dotyczących celów molekularnych po przedkliniczną walidację skuteczności modulatorów, szczególnie w programach badawczych nad naczyniowymi chorobami oczu.