5 września 2018
W szerokim zakresie wskazań chorobowych, bardziej fizjologicznie istotne modele są opracowywane i wdrażane do programów odkrywania leków. Opisany tutaj nowy system modelowy pokazuje, w jaki sposób trójwymiarowe sferoidy nowotworowe mogą być hodowane i badane przesiewowo w wysokowydajnym systemie opartym na płytkach 1536-dołkowych w celu poszukiwania nowych leków onkologicznych.
Metoda ta może pomóc w znalezieniu odpowiedzi na kluczowe pytania w dziedzinie odkrywania leków, takie jak, jakie jest najodpowiedniejsze ustawienie hodowli tkankowej dla identyfikacji trafienia do odprowadzenia. Główną zaletą tej techniki jest to, że umożliwia ona hodowlę komórek w trzech wymiarach, w sposób wysokoprzepustowy, przy użyciu płytek 1536-dołkowych. Zademonstruje ten protokół Kalyani Gampa, starszy naukowiec z mojego laboratorium.
Aby skonfigurować hodowlę sferoidalną guza 3D, odłącz interesujące nas linie komórek rakowych za pomocą trzech płukań BBS. Następnie dodaje się jeden mililitr trypsyny na pięć centymetrów kwadratowych powierzchni kolby hodowlanej. Po pięciu minutach zneutralizować trypsynę pięciokrotnością objętości pożywki uzupełnionej surowicą w każdej kolbie i policzyć komórki.
Użyj wysterylizowanej, małej kasety ze stali nierdzewnej z systemem opartym na pompie perystaltycznej, aby wysiać łącznie 500 komórek w ośmiu mikrolitrach sferoidalnego podłoża do każdej studzienki na płytce poddanej działaniu 1 536 dołków poddanych kulturze tkankowej. Następnie użyj oddychającej uszczelki samoprzylepnej, aby zakryć płytę. I umieść płytkę w wirującym inkubatorze ustawionym na 37 stopni Celsjusza i 10 obr./min z 5% dwutlenkiem węgla i 95% wilgotnością względną na trzy dni.
Najważniejszym krokiem jest upewnienie się, że płytki są dobrze uszczelnione przed umieszczeniem ich w inkubatorze. Sferoidy będą potrzebowały trzech dni, aby się uformować, a ten krok zapobiega parowaniu medium. Pod koniec inkubacji szybko obróć płytki hodowlane wyłożone rakiem pod kątem 100-krotności grawitacji, aby zebrać kondensację i usunąć uszczelki adhezyjne.
Umieść każdą płytkę, która ma być poddana obróbce, na dozowniku akustycznym ustawionym tak, aby dostarczyć łącznie osiem nanolitrów każdego związku. Rozcieńczenie do końcowego stężenia 0,1% DMSO na studzienkę i górna dawka związku 10 mikromolowych. Po dodaniu związku do odpowiednich płytek należy umieścić na każdej płytce specjalnie wykonaną pokrywę do hodowli komórkowych ze stali nierdzewnej, aby zapobiec parowaniu, i umieścić płytki z powrotem w wirującym inkubatorze na kolejne pięć dni.
Pod koniec inkubacji dodać trzy mikrolitry wstępnie podgrzanego odczynnika do lizy komórek, uzupełnionego lucyferyną, do każdego dołka każdej płytki do hodowli komórkowej. I inkubować płytki w temperaturze pokojowej przez co najmniej 15 minut. Następnie uchwyć luminescencję ATP na luminometrze płytkowym.
Po przeanalizowaniu wszystkich płytek, należy wyodrębnić surowe dane z przyrządu i znormalizować wszystkie pola zawierające badane związki do średniej ze wszystkich studzienek zawierających sam DMSO jako neutralną kontrolę. Procentowe zahamowanie wzrostu każdego związku można następnie obliczyć zgodnie ze wzorem i krzywymi odpowiedzi na dawkę, a następnie można wygenerować hamujące IC50. Różne znane komórki rakowe, o których wiadomo, że dobrze rosną w warunkach hodowli 2D, również tworzyły struktury 3D podczas hodowli, jak właśnie wykazano, pomimo różnic morfologicznych.
W przypadku stosowania do badań przesiewowych na dużą skalę można zaobserwować różnicową wrażliwość związków między kulturami uprawianymi w 2D w porównaniu z kulturami uprawianymi w 3D. Każda kropka reprezentuje stężenie hamujące pojedynczego związku, dla którego obserwuje się 50% odpowiedź zabijania komórek w obu warunkach hodowli. W tym reprezentatywnym eksperymencie oba testowane związki hamujące kinazę RAF były silniejsze w warunkach 3D w hodowli linii niedrobnokomórkowego raka płuca zawierającej mutację aktywującą białko KRAS.
Jednak związki te wykazują podobną siłę działania zarówno w hodowlach linii feroidów 3D, jak i 2D raka jelita grubego, które zawierają mutację aktywującą G13D w KRAS. Test 3D pozwala również na obserwację paradoksalnego zjawiska aktywacji wzrostu, które występuje, gdy dochodzi do niepełnego zahamowania dimerów RAF w wysoce aktywowanych liniach mutantów RAF, o czym świadczy wzrost komórek przy niskich stężeniach leku, który jest tłumiony przy wysokich stężeniach. Po jej opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom zajmującym się odkrywaniem leków przeciwnowotworowych do zbadania alternatywnych warunków hodowli w celu identyfikacji nowej, skutecznej materii chemicznej przeciwko znanym celom.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia nowatorską metodę poszukiwania leków z wykorzystaniem trójwymiarowych sferoidów nowotworowych hodowanych w wysokoprzepustowym systemie płytek 1536-dołkowych. Podejście to ma na celu zwiększenie relewantności warunków hodowli tkankowych w procesie identyfikacji potencjalnych leków onkologicznych.
Metoda ta niweluje lukę translacyjną w poszukiwaniu leków onkologicznych, umożliwiając wysokoprzepustowe przesiewanie w fizjologicznie istotnym 3D modelu sferoidów nowotworowych. Wspiera ona pewność prognostyczną w walidacji celu, ujawniając zróżnicowane odpowiedzi na leki pomiędzy warunkami hodowli 2D a 3D. Podejście to usprawnia identyfikację związków wiodących (hit-to-lead) dla inhibitorów szlaku MAPK w genetycznie zdefiniowanych modelach nowotworowych.
Metoda ta integruje się z kontinuum odkrywania leków, od walidacji celu po identyfikację związku wiodącego, umożliwiając wczesną ocenę skuteczności związku w bardziej istotnym fizjologicznie kontekście przed inwestycjami w fazie przedklinicznej.