September 16th, 2018
Eksperymentalne procedury późniejszej ekstrakcji tkanek limfatycznych w celu przetestowania aktywacji limfoidalnych komórek dendrytycznych są opisane po leczeniu immunostymulującym nanomateriałem.
Ogólnym celem tej procedury jest zapoznanie się z unikalną techniką wymaganą do izolowania węzła chłonnego śródpiersia od myszy. Operację przeprowadzono po wstrzyknięciu materiału immunostymulującego na sześć różnych dróg u myszy. W tym badaniu wykorzystaliśmy nową klasę materiałów tworzących struktury o rozmiarach nano.
Surfaktanty składają się z hydrofilowej grupy głowy i hydrofobowego ogona. Tworzą one sferyczną miceli lub inną strukturę drugorzędową w wyniku separacji mikrofagów. Wykorzystaliśmy tę właściwość do biomakrocząsteczki, jaką jest DNA.
Amfifil DNA, pokazany tutaj, jako regularne nukleotydy, takie jak A, C, G, T, ma bloki hydrofilowe, podczas gdy zmodyfikowane lipidami zasady nukleotydowe komórek nerwowych działają jako jednostki hydrofobowe. Zmodyfikowany oligo został zsyntetyzowany przez syntezator DNA w oktogramach na dużą skalę. W pożywkach równo amfifilowe lipidowe DNA spontanicznie tworzą sferyczne micele o rozmiarach nano.
Kiedy powstaje micela, DNA pozostaje jednoniciowe jako pusty nośnik o średnicy około 10 nanometrów. Aby wyposażyć nosiciela w immunostymulant, wystarczy rozszerzyć sekwencję DNA za pomocą adiuwanta receptora toll-podobnego dziewiątego, a mianowicie eCpG. Lipidowe DNA i zasada eCpG, dlatego zewnętrzna powierzchnia miceli ulega degradacji za pomocą sekwencji CpG.
Następnie nazywamy tę nanocząstkę stymulującą układ odpornościowy jako INP. Aby określić właściwy sposób INP dla odpowiedzi immunologicznej, wstrzyknęliśmy INP myszom w 64 drogach iniekcji, w wyniku czego przeanalizowano prawidłową tkankę węzłów chłonnych. Aby uzyskać bardziej szczegółowe instrukcje dotyczące wstrzykiwań, znajdź artykuł JOB opublikowany przez Charles River w 2012 roku.
Główną zaletą tego filmu jest wizualne pokazanie, jak uzyskać węzeł chłonny śródpiersia. Film wyraźnie pokazuje lokalizację węzła chłonnego śródpiersia, który wiele osób ma trudności z izolacją narządów. Wszystkie eksperymenty zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi Instytucjonalnego Komitetu ds. Opieki i Wykorzystania Zwierząt w Centrum Klinicznym Zdrowia Publicznego w Szanghaju lub University of Ulsan College of Medicine.
Ta część pokaże konkretną lokalizację narządów lub tkanek, które są kluczowe dla analizy immunologicznej. Śledziona i dwa węzły chłonne zostaną odizolowane. Po pierwsze, myszy zostały złożone w ofierze poprzez eutanazję wdychaną dwutlenkiem węgla i dołożono wszelkich starań, aby zminimalizować cierpienie, zgodnie z wytycznymi Instytucjonalnego Komitetu ds. Opieki i Wykorzystania Zwierząt.
Od teraz znajdźmy narządy i wyizolujmy je. Najpierw prawidłowo zamocuj mysz na pulpicie operacyjnym za pomocą czterech kołków na dłoni myszy. Wysterylizuj obszar sekcji alkoholem.
Odetnij zewnętrzną osłonę dolnej części brzucha myszy dużymi nożyczkami. Użyj kleszczyków, aby otworzyć obie strony nasadki i przymocuj ją za pomocą kołków na stole operacyjnym. Lokalizacja pachwinowego węzła chłonnego jest odsłonięta poprzez znalezienie koniunkcji naczynia schodzącego w dół w kierunku lewej nogi.
Kształt naczynia wygląda jak pochylona litera alfabetu Y.Odsłoń warstwę kleszczami i wyciągnij ją ze skóry. Przetnij otrzewną mniejszymi nożyczkami, aby odsłonić narządy wewnętrzne. Przesuń jelito w prawo za pomocą kleszczy, a następnie zawiń w ukształtowaną śledzionę, która znajduje się po lewej, lewej górnej stronie brzucha.
Podczas zabiegu wymagana jest dodatkowa uwaga, ponieważ śledziona jest łatwa do zakłócenia. Wreszcie kluczowy punkt tego filmu: pobieranie węzła chłonnego śródpiersia. Znajduje się pod górną częścią płuca, która jest trudna do zauważenia ze względu na jej mały rozmiar i nieco ukryte położenie.
Ostrożnie odsłoń obszar za pomocą małych nożyczek i kleszczy. Wytnij również obie strony żeber i membranę. Przytnij odcięte żebra nad klatką piersiową.
Podczas zabiegu należy unikać uszkadzania serca i naczyń krwionośnych, ponieważ może to spowodować zaślepienie miejsca, znajdując półprzezroczysty węzeł chłonny śródpiersia. Jeśli przez przypadek pęknie naczynie krwionośne, delikatnie wytrzyj krew gazą. Chwyć lewą stronę płuca i delikatnie odwróć ją na drugą stronę, aby zajrzeć pod płuco.
Podciągnij węzeł chłonny śródpiersia za pomocą kleszczy. Po pobraniu węzła chłonnego śródpiersia upewnij się, że idealnie usunąłeś cały tłuszcz i krew otaczającą węzeł chłonny, ponieważ niepożądana tkanka może wpłynąć na analizę. Na koniec wszystkie izolowane narządy na szalce Petriego wypełnionej pożywką.
Łącznie 0,1 razy 10 do szóstych komórek analizowano w tej cytometrii przepływowej. Na podstawie gettora siły i wielkości gettera, populacja leukocytów została bramkowana, a komórki zostały wykluczone przez ciemne barwienie. 24 godziny po wstrzyknięciu INP 64 drogami wstrzyknięcia, śledziona, pachwinowy węzeł chłonny i śródpiersie węzła chłonnego zostały pobrane i przeanalizowane aktywacja DC za pomocą cytometrii przepływowej.
Na podstawie strategii cytometrii przepływowej populację DC zdefiniowano jako komórki CD11C dodatnie i liniowo ujemne w żywych leukocytach. Warto zauważyć, że donosowe wstrzyknięcie INP sprzyjało znacznemu wzrostowi ekspresji CD40, 80, 86 w węźle chłonnym śródpiersia w porównaniu z PBS dla kontroli. Dlatego dane te sugerowały, że donosowe wstrzyknięcie INP może być stosowane jako adiuwant błony śluzowej w celu wzmocnienia odporności w płucach.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten artykuł opisuje procedurę izolowania węzłów chłonnych śródpiersia od myszy po wstrzyknięciu nanomateriału immunostymulującego. Technika koncentruje się na ekstrakcji tkanek limfatycznych w celu oceny aktywacji komórek dendrytycznych limfoidowych.
Precise evaluation of immunostimulatory agents requires robust methods for extracting and analyzing lymphoid tissues to assess dendritic cell activation across administration routes. This workflow enables biopharma teams to compare immune activation profiles of novel nanoparticle-based agents, supporting predictive confidence in early immunotherapy and vaccine discovery. The approach directly informs route-of-administration decisions and portfolio triage for immunomodulatory candidates.
This method integrates into the immunotherapy discovery continuum from early target validation through preclinical candidate selection, enabling direct comparison of immune activation across administration routes.