8 sierpnia 2018
Tutaj opisujemy procedurę testowania migracji komórek in vitro za pomocą automatycznego mikroskopu optycznego. Test zarysowania jest szeroko stosowany, w którym zamknięcie rysy następuje przez określony czas. Mikroskop optyczny umożliwia niezawodne i tanie wykrywanie migracji komórek.
Główną zaletą tej techniki jest to, że można oglądać komórki w czasie rzeczywistym w automatycznym mikroskopie optycznym. Implikacje tego leczenia rozciągają się na terapię przewlekłych ran lub raka, w przypadku których migracja odgrywa kluczową rolę w tych chorobach. Zacznij od dwukrotnego przemycia zlewającej się kultury komórek HaCaT pięcioma mililitrami sterylnego PBS wolnego od magnezu i wapnia na pranie.
Następnie inkubuj komórki z jednym mililitrem trypsyny w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza przez pięć do ośmiu minut. Po potwierdzeniu oderwania pod mikroskopem świetlnym należy zatrzymać reakcję enzymatyczną z dziewięcioma mililitrami pożywki hodowlanej uzupełnionej FBS. I rozcieńczyć komórki do 7,5 razy 10 do czwartej komórki na 250 mikrolitrów pożywki plus stężenie FBS.
Następnie wysiewaj 250 mikrolitrów komórek do każdej studzienki 48-dołkowej płytki do hodowli tkankowej z okrągłym dnem i delikatnie przesuwaj płytkę z boku na bok, aby upewnić się, że komórki są równomiernie rozmieszczone na dnie studzienki. Następnie przenieś płytkę do inkubatora do hodowli komórkowych. Gdy kultury osiągną zbieżność od 90 do 95%, zastąp supernatant w każdym dołku 250 mikrolitrami świeżo przygotowanej pożywki uzupełnionej 10 mikrogramami na mililitr mitomycyny C i umieść płytkę z powrotem w inkubatorze na kolejne dwie godziny.
Pod koniec inkubacji przemyj komórki 250 mikrolitrami PBS i dodaj 250 mikrolitrów świeżego PBS do każdej studzienki. Następnie użyj końcówki mikropipety o pojemności 200 mikrolitrów, aby wykonać jedno pionowe zadrapanie w każdej monowarstwie komórki. Gdy wszystkie monowarstwy zostaną zarysowane, zastąp PBS w każdej studzience 250 mikrolitrami z interesującym nas bodźcem peptydowym i zamontuj płytkę w systemie kamer optycznych z nienaruszoną pokrywą.
Aby skonfigurować kamerę optyczną, otwórz okno pobierania i wybierz gojenie się ran. Wybierz typ płyty i odznacz nieużywane studzienki. Następnie kliknij włącz i kliknij prawym przyciskiem myszy jedno z dołków, aby dostosować ostrość do położenia komórek.
Ustaw przedział czasu dla obrazów w obszarze Interwał obrazu i ustaw liczbę powtórzeń, aby dopasować je do żądanego okresu. Następnie należy wybrać odpowiedni typ analizy. Następnie kliknij start, aby rozpocząć obrazowanie komórek.
Kiedy pojawia się rana, komórki skóry zaczynają się namnażać i migrować przez łożysko rany, aby zamknąć ranę, proces, który można zaobserwować za pomocą kamery optycznej. Po 48-godzinnej inkubacji leczenie czynnikiem wzrostu śródbłonka powoduje prawie 95% zamknięcie rany, w porównaniu do 38% zamknięcia w nieleczonych studzienkach kontrolnych oraz 33 i 62% zamknięcia odpowiednio w kulturach laktoferyny i laktoferrycyny. Procent zamknięcia rany określony na podstawie zmian szerokości szczeliny od początkowego zadrapania można również wykreślić dla każdego bodźca wzrostowego.
Ten film opisuje prosty i skuteczny protokół badania migracji keratynocytów przez rysę wykonaną w monowarstwie zdrowych komórek. Chociaż komórki użyte w tym teście to komórki HaCaT, metodę można również zastosować do innych linii komórkowych, grzybów, a nawet bakterii, o ile przylegają one do dna płytki mikromiareczkowej.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje procedurę badania migracji komórek in vitro z wykorzystaniem zautomatyzowanego mikroskopu z kamerą optyczną. Testy z zadrapaniem (scratch assay) zostały przedstawione jako niezawodna metoda obserwacji migracji komórek w czasie.
Testy migracji komórek są kluczowe dla oceny kandydatów terapeutycznych w gojeniu ran i onkologii, jednak tradycyjne testy zarysowania (scratch assays) są obarczone artefaktami krawędziowymi oraz wąskimi gardłami wynikającymi z manualnej analizy. Niniejszy zoptymalizowany protokół rozwiązuje problemy z powtarzalnością poprzez eliminację kationowej akumulacji komórek oraz integrację zautomatyzowanego obrazowania, co umożliwia uzyskanie spójnych, ilościowych odczytów migracji. Podejście to wspiera wczesną walidację celów oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego poprzez dostarczanie wiarygodnych danych w czasie rzeczywistym na temat związków pro- i antymigracyjnych.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, wspierając testowanie hipotez we wczesnej fazie odkrywania oraz umożliwiając ilościową identyfikację związków wiodących poprzez mierzalne hamowanie lub stymulację migracji.