10 czerwca 2018
Przedstawiamy protokół do wydajnej, masowej i szybkiej chemicznej rewersji konwencjonalnych linii komórek ludzkich o uprzywilejowanej linii pluripotentnych komórek macierzystych (hPSC) w epigenomicznie stabilny naiwny stan pluripotentny przypominający epiblast preimplantacyjny. Metoda ta powoduje zmniejszenie ekspresji genów o uprzywilejowanej linii i znaczną poprawę kierowanej różnicowania wieloliniowego w szerokim zakresie konwencjonalnych linii hPSC.
Metoda LIF-3i odwraca konwencjonalne ludzkie pluripotentne komórki macierzyste w bardziej prymitywny stan pluripotencji z biochemicznymi, transkrypcyjnymi i epigenetycznymi cechami ludzkiego przedimplantacyjnego epiblastu. Ta metoda poprawia funkcjonalność konwencjonalnych ludzkich pluripotentnych komórek macierzystych poprzez zmniejszenie ekspresji genów pierwotnych linii i usunięcie zmienności międzyliniowej kierowanej dyferencjacji często obserwowanej w niezależnych liniach hPSC. Stosując tę metodę, chemicznie odwrócone ludzkie pluripotentne komórki macierzyste utrzymują stabilność kariotypowo-epigenomiczną po przedłużonym przeprowadzeniu, w tym na zlokalizowanych lokacjach i mogą być różnicowane bezpośrednio z poprawioną wydajnością bez konieczności ponownego stymulowania.
Metoda LIF-3i otworzy nowe drogi badań nad wczesną biologią rozwoju człowieka i może posłużyć rozwojowi medycyny regeneracyjnej poprzez poprawę dyferencjacji ludzkich pluripotentnych komórek macierzystych, ukierunkowanego targetowania genów i wytwarzania chimer międzygatunkowych. Aby rozpocząć protokół, utrzymuj i rozwijaj konwencjonalne ludzkie pluripotentne komórki macierzyste lub hPSC z zweryfikowanymi normalnymi kariotypami w kokulturach z mysi fibroblastem zarodkowym lub systemem kultury podawców opartym na MEF lub w systemie kultury bez podawacza. Przygotuj podawczy MEF na wcześniej przygotowanej żelatynizowanej sześcio-dołkowej płytce co najmniej jeden dzień przed przeprowadzeniem kultur konwencjonalnych hPSC przystosowanych do LIF-5i.
Gdy konwencjonalne kultury hPSC osiągną około 50% konfluencji, wymień standardowe środowisko kultury hESC na dwa mililitry na dołek środowiska Leukemia Inhibitory Factor 5i lub LIF-5i. Kulturuj i utrzymuj konwencjonalne hPSC i MEF przez maksymalnie dwa dni w LIF-5i w inkubatorze CO2. Codziennie zmieniaj środowisko LIF-5i, aby przystosować je do późniejszego przeprowadzenia i stabilnego odwrócenia w LIF-3i.
W przypadku konwencjonalnych kultur bez podawacza, kulturuj hPSC w LIF-5i tylko przez jedną noc przed przeprowadzeniem kolejnego dnia. Przed przeprowadzeniem, przepłukuj konwencjonalne hPSC przystosowane do LIF-5i raz w PBS i dodaj jeden mililitr reagentu dysocjacji komórek do każdego dołka. Następnie inkubatora przez pięć minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze CO2.
Po inkubacji, delikatnie przemieszaj komórki pipetą do pojedynczej zawiesiny komórkowej. Zebraj zawiesinę komórek w środowisku hESC w co najmniej dwukrotnym rozcieńczeniu w sterylnym, 15-mililitrowym stożkowym probówce i delikatnie przemieszaj komórki pipetowaniem, aby uzyskać pojedynczą zawiesinę komórek. Wyśrodkuj komórki z prędkością 300 g przez pięć minut.
Po wirowaniu, aspiracyjnie wyrzuć i wyrzuć nadstan, a następnie ponownie zawieś pellet komórek w jednym do dwóch mililitrów środowiska LIF-5i. Następnie przelicz komórki. Przepłukuj wstępnie zasiewną sześciodołkową płytkę MEF dwa razy z dwoma mililitra PBS na dołek.
Rozprowadź jedno do dwóch razy 10 do szóstej komórki w dwóch mililitra środowiska LIF-5i do jednego dołka płytki MEF przepłukanej PBS. Umieść płytkę w inkubatorze CO2. Następnego dnia, delikatnie kołysz płytkę, aby unieść wszystkie nieprzylegające komórki i aspiracyjnie wyrzuć środowisko i wymień je na dwa mililitry środowiska LIF-5i.
Powtarzaj ten krok codziennie przez trzy do pięciu dni lub do momentu, gdy komórki osiągną 60 do 70% konfluencji. Ten protokół wspiera szybkie i masowe naiwne odwracanie dużego zakresu ludzkich embrionalnych i indukowanych pluripotentnych linii komórek macierzystych, o ile preparaty ludzkich pluripotentnych komórek macierzystych z zaznaczoną dyferencjacją lub nieprawidłowymi kariotypami są ostrożnie wyłączone. Po początkowej adaptacji LIF-5i, przeprowadzaj kolejne stabilne kultury LIF-3i co trzy do czterech dni w szafie biobezpieczeństwa lub gdy kultury osiągną 60 do 70% konfluencji.
Wyrzuc środowisko kultury i przepłukuj każdy dołek kultur LIF-5i-LIF-3i, delikatnie dodając dwa mililitry PBS. Wyrzuć PBS i dodaj jeden mililitr roztworu odczepiania komórek. Inkubatora komórki przez pięć minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza w inkubatorze CO2.
Po inkubacji, zebraj zawiesinę komórek, dodaj nieobrączkowane środowisko hESC w dwukrotnym rozcieńczeniu i delikatnie przemieszaj komórki pipetowaniem, aby uzyskać pojedynczą zawiesinę komórek. Przenieś zawiesinę do sterylnej 15-mililitrowej stożkowej probówki. Wyśrodkuj komórki z prędkością 300 g przez pięć minut i aspiracyjnie wyrzuć i wyrzuć nadstan.
Ponownie zawieś pellet w środowisku LIF-3i, a następnie przelicz komórki. Następnie zasiej dwa razy 10 do piątej komórki na dołek na zakręconych MEF w żelatynizowanej sześciodołkowej płytce dla rutynowego przeprowadzenia kultur LIF-3i. Dla początkowych kultur przystosowanych do LIF-5i, umieść początkowo wyższą gęstość przed pierwszym przeprowadzeniem do MEF w LIF-3i.
Indywidualne linie ludzkich pluripotentnych komórek macierzystych powinny być zoptymalizowane i
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Metoda LIF-3i skutecznie przywraca konwencjonalnym ludzkim pluripotencjalnym komórkom macierzystym (hPSCs) naiwny stan przypominający przedimplantacyjny epiblast. Protokół ten zwiększa zdolności różnicowania i redukuje ekspresję genów ukierunkowanych na konkretne linie komórkowe.
Niniejszy protokół umożliwia masową rewersję konwencjonalnych ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych do stanu przypominającego naiwny, co redukuje zmienność między liniami w wynikach różnicowania i poprawia funkcjonalną pluripotencję. Poprzez zwiększenie wydajności różnicowania bez konieczności ponownego primingu, metoda ta wspiera bardziej przewidywalne modelowanie przedkliniczne i zmniejsza ryzyko podczas walidacji celów w procesach medycyny regeneracyjnej. Powtarzalność tej metody w różnych liniach hESC oraz hiPSC wolnych od transgenów ułatwia skalowalne, zstandardyzowane przepływy pracy w badaniach wczesnego etapu odkryć oraz badaniach translacyjnych.
Sekwencyjna metoda LIF-5i do LIF-3i integruje się z procesami badawczymi, umożliwiając standaryzowane generowanie stanu naiwnego przed etapami testów różnicowania, identyfikacji wiodących kandydatów oraz walidacji przedklinicznej.