13 października 2018
Ten artykuł szczegółowo opisuje metodę opartą na nanocząstkach srebra do łagodzenia zespołu atrezji dróg żółciowych w eksperymentalnym modelu myszy z atrezją dróg żółciowych. Solidne zrozumienie procesu przygotowania odczynnika i techniki wstrzykiwania noworodków na myszach pomoże zapoznać badaczy z metodą stosowaną w badaniach na modelu noworodkowym myszy.
Metody te mogą pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące atrezji dróg żółciowych. Z poglądów BA na temat choroby, patogenezy i leczenia. Główną zaletą tej techniki jest to, że technika wstrzykiwania noworodków na myszach pomoże naukowcom zapoznać się z tą metodą w innych badaniach na modelach noworodków na myszach.
Implikacje tej techniki rozciągają się w kierunku terapii BA jako kilku nanocząstek o znaczeniu Chociaż ta metoda może zapewnić wgląd w leczenie BA, może być również stosowana do innych systemów, takich jak modele noworodków myszy patogenezy tego Ogólnie rzecz biorąc, w taki sposób, w jaki to zrobi ta metoda, ponieważ mały rozmiar nowonarodzonych myszy może powodować budowanie procesu wstrzykiwania. Aby ustalić atrezję dróg żółciowych w modelu mysim, załaduj rototowirusa rezusa do jednomililitrowej strzykawki insulinowej wyposażonej w igłę o rozmiarze 29 i dootrzewnowo podaj 1,2 razy 10 do 5. jednostki tworzącej płytkę żółciową wirusa w 20 mikrolitrach zmodyfikowanej pożywki Dulbecco Eagle Medium każdemu noworodkowi w ciągu 24 godzin od urodzenia. Następnie zwróć noworodki do matki w celu codziennego monitorowania i ważenia.
Kiedy nowonarodzone zwierzęta zaczną wykazywać oznaki żółtaczki, załaduj jednomililitrową strzykawkę wyposażoną w igłę o rozmiarze 29 z 50 mikrolitrami świeżo przygotowanego roztworu kolagenu z nanocząsteczkami srebra na zwierzę i użyj palca serdecznego, aby przycisnąć nogę jednego zwierzęcia z żółtaczką ukośnie do prawego uda. Powoli wprowadź igłę pod kątem 15 stopni do otrzewnej, a po dotarciu do powierzchni dolnej krawędzi wątroby wstrzyknij mieszaninę kolagenu z nanocząstkami srebra. Po wstrzyknięciu całej mieszaniny należy powoli wyjąć igłę i pozwolić zwierzęciu odpocząć przez dziesięć minut, aby kolagen zastygł i zapobiec lizaniu miejsca wstrzyknięcia przez matkę.
Następnie wróć myszy do ich klatek w celu codziennego monitorowania. Dziewiątego lub dwunastego dnia po inokulacji wysterylizuj górną i dolną część brzucha 75% etanolem i unieruchomij kończyny zakażonej myszy. Otwórz skórę, mięśnie i otrzewną wzdłuż linii środkowej do ksylufidu i użyj sterylnego bawełnianego wacika, aby usunąć przewód pokarmowy, aby całkowicie odsłonić przeponę.
Włożyć igłę rozładowanej strzykawki insulinowej o pojemności jednego mililitra do lewej komory serca i powoli cofnąć tłok strzykawki, aby uzyskać maksymalną objętość krwi. Przenieś krew do 1,5 mililitrowej probówki na 30-minutową inkubację w temperaturze pokojowej i osadzaj czerwone krwinki przez odwirowanie. Następnie zbierz surowicę do późniejszej analizy.
W przypadku cholangiografii pozawątrobowej użyj bawełnianego wacika, aby całkowicie odsłonić wątrobę, woreczek żółciowy i pozawątrobowe drogi żółciowe. Po sfotografowaniu wyglądu wątroby i dróg żółciowych pod mikroskopem preparacyjnym, użyj kleszczyków okulistycznych, aby delikatnie chwycić dno pęcherzyka żółciowego i powoli włóż igłę jednomililitrowej strzykawki wypełnionej roztworem błękitu metylenowego do jamy pęcherzyka żółciowego. Chwytając igłę kleszczami, powoli wlej 10-20 mikrolitrów błękitu metylenowego.
Kiedy barwnik przechodzi przez pozawątrobowe drogi żółciowe do jelita czczego, uzyskaj kolejne zdjęcie tkanki. Następnie, w celu barwienia hematoksyliną i eozyną, zbierz wątrobę od każdego zwierzęcia w celu utrwalenia przez noc w 10% formalinie. Następnego ranka zanurz próbki w parafinie w celu podziału, a następnie ponownie nawodnij odwoskowywanie za pomocą serii etanolowej i barwienie hematoksyliną i eozyną zgodnie ze standardowymi protokołami analizy histopatologicznej.
W porównaniu z nieleczonymi myszami z zarośnięciem dróg żółciowych, zwierzęta leczone nanocząstkami srebra wykazują zmniejszoną żółtaczkę i utrzymują normalną masę ciała. Poziomy metabolizmu bilirubiny i aminotransferazy wątrobowej spadają do normalnych wartości kontrolnych, co sugeruje, że nanocząsteczki srebra znacznie poprawiają czynność wątroby. Cholangiografia pozawątrobowa z barwieniem błękitem metylenowym potwierdza drożność dróg żółciowych po leczeniu nanocząstkami srebra, a barwienie H&E ujawnia znaczny spadek nacieku komórek zapalnych w obszarze wrotnym wątroby myszy leczonych nanocząstkami srebra w porównaniu z kontrolą.
Analiza miejsca przepływu i wskaźników wskazuje na obecność znacznie mniejszej liczby komórek NK w wątrobach zwierząt leczonych nanocząstkami srebra w porównaniu z nieleczonymi myszami zakażonymi rotawirusem rezus. Dalsze barwienie immunohistochemiczne ujawnia znacznie zmniejszoną ekspresję barwienia markerów komórek NK w triadzie wrotnej myszy traktowanych nanocząstkami srebra w porównaniu ze zwierzętami zakażonymi rotawirusem rezus. Próbując tej procedury, należy pamiętać, że praktyka da najlepsze rezultaty.
Podążanie za tą procedurą, ponieważ metody takie jak koniugacja nanocząstek srebra z innymi rzeczami mogą być wykonane, aby odpowiedzieć na dodatkowe pytania dotyczące aktywności zmian w leczeniu BA w modelach mysich. jest rozwój. Technika ta umożliwiła naukowcom zajmującym się gastroenterologią uzyskanie BA lub innych chorób, takich jak cholestaza wątroby.
Nie zapominaj, że praca z rotawirusem badawczym może być niezwykle niebezpieczna, dlatego podczas wykonywania tej procedury należy zawsze podejmować środki ostrożności, takie jak noszenie odpowiedniego sprzętu ochrony osobistej.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł opisuje metodę wykorzystującą srebrne nanocząstki do poprawy zespołu atrezji dróg żółciowych u noworodków na modelu mysi. Podkreśla się technikę wstrzyknięcia u noworodków, aby pomóc badaczom w zastosowaniu tej metody do podobnych badań.
This method addresses a critical gap in preclinical modeling of biliary atresia by introducing a silver nanoparticle-based intervention that ameliorates disease phenotypes in a neonatal mouse model. It provides a mechanistic tool for evaluating antiviral and anti-inflammatory therapeutics in a cholestatic liver disease context, supporting early-stage target validation and lead identification efforts. The approach enables reproducible assessment of liver function, histopathological improvement, and immune modulation, offering predictive value for de-risking biliary tract therapeutics before IND-enabling studies.
The method fits within the discovery-to-preclinical continuum, enabling early evaluation of nanoparticle-based therapeutics in a mechanistic model of cholestatic liver disease before proceeding to lead optimization or toxicology studies.