12 lutego 2019
Tutaj prezentujemy protokół przygotowania wypełnionych agarozą precyzyjnie wyciętych ludzkich wycinków płuc z wyciętej tkanki pacjenta, które są odpowiednie do generowania 3D kultur tkanki płucnej do modelowania ludzkich chorób płuc w badaniach biologicznych i biomedycznych.
Metoda ta pozwala na badanie żywej tkanki ludzkiej w jej naturalnej strukturze i składzie 3D w celu przełożenia kluczowych wyników badań laboratoryjnych na potencjalne terapie. Technika ta umożliwia w szczególności generowanie kultur tkankowych z chirurgicznie wyciętej lub eksplantowanej ludzkiej tkanki płucnej w celu wizualizacji próbek tkanki płucnej poszczególnych zmarłych pacjentów. Wolna od chorób tkanka płucna może być wykorzystywana jako hodowle tkankowe 3D do modelowania chorób płuc ex vivo, umożliwiając analizę wczesnych patomechanizmów w wysokiej rozdzielczości czasoprzestrzennej.
Zacznij od umieszczenia wyciętej próbki płuc w 15 mililitrach podłoża hodowlanego w sterylnym 15-centymetrowym naczyniu hodowlanym i sterylnej metalowej tacy pokrytej bibułą, a następnie napełnij 30-mililitrową strzykawkę agarozą o niskiej temperaturze topnienia o temperaturze topnienia 42 stopni Celsjusza. Wyjmij zasłonę z cewnika do żył obwodowych i podłącz cewnik do 30-mililitrowej strzykawki. Zidentyfikuj oskrzela o średnicy od 0,5 do 3 milimetrów w tkance wentylującej w nienaruszonym fragmencie tkanki i delikatnie włóż kaniulę do oskrzeli tak daleko, jak to możliwe.
Użyj kleszczy, aby ścisnąć ścianę oskrzelika wokół kaniuli, najlepiej zaciskając jednocześnie sąsiednią tętnicę płucną, aby uszczelnić oskrzela wokół kaniuli i użyć zacisku chirurgicznego, aby zatkać wszelkie inne dodatkowe drogi oddechowe, aby zapobiec wyciekowi agarozy. Następnie użyj kleszczy, aby podnieść tkankę płucną z naczynia hodowlanego i użyj strzykawki, aby ręcznie dostarczyć agarozę przez kaniulę, nie szybciej niż 0,3 mililitra na sekundę. Gdy tkanka płucna zostanie całkowicie wypełniona bez nadmiernego napompowania tkanki, natychmiast usuń kaniulę i zaciśnij oskrzela.
Zanurz tkankę w pożywce hodowlanej w temperaturze czterech stopni Celsjusza na 30 minut, aby ułatwić zestalenie agarozy, i powtórz procedurę napełniania agarozą dla wszelkich dodatkowych otworów oskrzelików. Następnie przechowuj wypełnione agarozą skrawki tkanki płucnej w pożywce o temperaturze czterech stopni Celsjusza do czasu pokrojenia. W celu precyzyjnego krojenia płuc należy zidentyfikować obszary wypełnione solidnie agarozą w tkance płucnej, które nie zapadają się po delikatnym dociśnięciu pęsetą do dna naczynia do hodowli komórkowej.
Wyciąć blok o objętości od 1 do 1,5 centymetra sześciennego solidnie wypełnionego obszaru, z jedną stroną nadal pokrytą opłucną, i użyć kleju cyjanoakrylowego, aby przymocować liczbę mnogą każdego bloku tkanki do uchwytu wibratomu. Przetnij całą drogę przez długi blok tkanki, aż pozostaną tylko dwa do trzech milimetrów tkanki niepokrojonej. Za pomocą kleszczy przenieś każdy odcinek o wielkości 500 mikrometrów do jednego dołka dwunastodołkowej płytki zawierającej podłoże uprawowe, w miarę ich uzyskiwania.
Po pocięciu całej tkanki przenieś próbki z każdej studzienki do indywidualnych dziesięciocentymetrowych szalek hodowlanych i umieść czteromilimetrowy dziurkacz do biopsji prostopadle do górnej powierzchni precyzyjnie wyciętego wycinka płuca. Następnie, przesuwając dziurkacz w kierunku zgodnym z ruchem wskazówek zegara i przeciwnie do ruchu wskazówek zegara, uzyskaj przebicia tkankowe próbki płuc. Umieszczanie każdego stempla w pożywce do hodowli komórkowych w indywidualnych dołkach 96-dołkowej płytki w miarę ich otrzymywania.
Po uzyskaniu wszystkich stempli tkankowych należy umieścić płytkę w inkubatorze do hodowli komórkowych na okres do pięciu dni. Znakowanie immunologiczne fibronektyny w jądrach komórkowych za pomocą immunofluorescencji w ludzkich hodowlach 3-D tkanki płucnej umożliwia obrazowanie zachowanej struktury pęcherzyków płucnych ex vivo. Leczenie precyzyjnych wykrojników ludzkich plastrów płuc profibrotycznym koktajlem cytokin przez 48 godzin powoduje zmiany podobne do zwłóknienia w hodowlach tkanek 3D ludzkich płuc, w tym znaczną indukcję istotnych dla zwłóknienia składników macierzy zewnątrzkomórkowej, kolagenu typu pierwszego i genów fibronektyny.
Dodatkowo, poziomy białka mezenchymalnego markera wimentyny są regulowane w górę u trzech z czterech pacjentów po leczeniu stemplami 3-D do hodowli tkanki płucnej. Po tej procedurze można przeprowadzić inne metody, takie jak analiza RNA za pomocą ilościowego PCR w czasie rzeczywistym lub analiza białek za pomocą western blotting, w celu oceny ekspresji genów i białek odpowiednio w tkance. Po jej opracowaniu technika ta utorowała drogę do badań w dziedzinie pulmonologii eksperymentalnej, do eksplantacji biologii płuc, a także do wykonywania badań toksykologicznych i farmakologicznych na próbkach tkanek ludzkich.
Należy pamiętać, że żywa tkanka ludzka jest potencjalnie zakaźna i podczas wykonywania tej procedury należy zawsze podejmować środki ostrożności, takie jak stosowanie środków ochrony osobistej oraz właściwe przechowywanie tkanek, transport i postępowanie z odpadami
W niniejszym artykule przedstawiono protokół przygotowania wypełnionych agaroza precyzyjnie ciętych plastrów płuc człowieka z tkanki pobranej od pacjentów w drodze resekcji. Plastry te nadają się do tworzenia trójwymiarowych kultur tkanki płucnej w celu modelowania chorób płuc człowieka w badaniach biologicznych i biomedycznych.
Trójwymiarowe hodowle tkanki płucnej człowieka pochodzące z precyzyjnie wycinanych plastrów płuc stanowią fizjologicznie istotny model ex vivo do badania mechanizmów chorobowych i odpowiedzi na leki w natywnej architekturze tkanki ludzkiej. Podejście to wspiera walidację celów terapeutycznych i redukcję ryzyka mechanistycznego, umożliwiając bezpośrednią ocenę efektów działania związków w chorych lub peritumoralnych próbkach płuc pobranych od poszczególnych pacjentów. Model ten zwiększa pewność prognostyczną w ocenie przedklinicznej poprzez zachowanie różnorodności komórkowej, składu macierzy zewnątrzkomórkowej oraz właściwości biomechanicznych, które są kluczowe dla istotności translacyjnej.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum odkryć – od wczesnego testowania hipotez dotyczących celów terapeutycznych, poprzez identyfikację związków wiodących, aż po walidację przedkliniczną, umożliwiając iteracyjną optymalizację w oparciu o odpowiedzi tkanek ludzkich.