RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/58599-v
Sarah M. Peterson1, Xuexiang Wang2, Ashley C. Johnson1, Ian D. Coate1, Michael R. Garrett1,3, Sean P. Didion1,4
1Department of Pharmacology and Toxicology,The University of Mississippi Medical Center, 2Department of Medicine, Division of Nephrology,Rush University Medical Center, 3Department of Medicine, Division of Nephrology,The University of Mississippi Medical Center, 4Department of Neurology,The University of Mississippi Medical Center
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Szacunki liczby nefronów w całej nerce są ważne klinicznie i eksperymentalnie, ponieważ istnieje odwrotny związek między liczbą nefronów a zwiększonym ryzykiem chorób nerek i układu krążenia. W niniejszej pracy przedstawiono zastosowanie metody maceracji kwasowej, która zapewnia szybkie i wiarygodne oszacowanie liczby nefronów w całej nerce.
Metoda maceracji kwasowej może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące nerek i tego, w jaki sposób określone geny przyczyniają się do rozwoju nefronów lub wpływają na ich rozwój, a także jak określone schorzenia, takie jak cukrzyca lub nadciśnienie, wpływają na liczbę nefronów. Jest to ważne, ponieważ całkowita liczba nefronów, z którymi rodzą się osoby, jest określana podczas rozwoju płodu, a utrata nefronów jest związana z patologią nerek. Głównymi zaletami metody maceracji kwasowej jest to, że jest szybsza, bardziej powtarzalna, niedroga i mniej czasochłonna niż inne metody liczenia nefronów, takie jak rezonans magnetyczny
.Technika ta ułatwia korelację wpływu liczby nefronów na czynność nerek, co jest ważne dla lepszego zrozumienia, w jaki sposób określone geny wpływają na funkcję i rozwój nefronów. Badanie genów lub czynników, które wpływają na ogólną liczbę nefronów, będzie miało zasadnicze znaczenie dla rozwoju metod farmakologicznych lub genetycznych mających na celu ograniczenie utraty nefronów związanych z chorobą. Dzięki dobrej technice eksperymentalnej i praktyce, osoby, które nie mają doświadczenia w tej metodzie, powinny łatwo opanować metodę maceracji kwasowej, co pozwoli na wiarygodne i powtarzalne oszacowanie liczby nefronów w całej nerce.
Zacznij od użycia cienkich nożyczek chirurgicznych, aby otworzyć jamę brzuszną myszy wzdłuż linii środkowej. Ostrożnie przenieś jelita i tkankę tłuszczową rozrodczą na prawą stronę zwierzęcia. Stosując grubą sekcję, wyizoluj lewą nerkę i przetnij lewą tętnicę nerkową i żyłę, aby ostrożnie usunąć nerkę, umieszczając narząd w odpowiednio oznakowanej łodzi do ważenia PBS.
Zbierz prawą nerkę w ten sam sposób i umieść obie nerki na gazie chirurgicznej wstępnie zwilżonej PBS. Szybko usuń wszelkie przylegające tkanki nienerkowe i torebki nerkowe. Następnie zważ każdą nerkę indywidualnie, rejestrując osobno wagę lewego i prawego narządu.
Po zważeniu umieść każdą nerkę z powrotem w odpowiednio oznakowanej łodzi wagowej bez PBS i użyj czystej żyletki, aby przeciąć każdy narząd na pół wzdłuż. Umieść każdą połówkę nerki przeciętą stroną do dołu i pokrój każdą połówkę na dwa milimetry lub mniejsze kawałki. Za pomocą tej samej żyletki ostrożnie przenieś posiekane kawałki nerki do odpowiednio oznakowanej stożkowej rurki o pojemności 15 mililitrów.
W dobrze wentylowanym dygestorium dodaj pięć mililitrów sześciomolowego kwasu solnego do każdej probówki. Następnie delikatnie wymieszaj mieszaniny kwasu nerkowego przed umieszczeniem probówek w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza na 90 minut. Pod koniec maceracji kwasowej przymocować jedną igłę o rozmiarze 18 G do jednej pięciomililitrowej strzykawki na nerkę i ostrożnie wyjąć tłoki strzykawki.
Umieść strzykawki w pojedynczych stożkowych probówkach o pojemności 50 mililitrów w dygestorii i wlej roztwory nerkowe do otwartego końca każdej strzykawki, odkładając puste probówki na bok w stojaku na probówki. Następnie ostrożnie wymień tłoki, aby powoli wytłaczać każdy roztwór przez igły do 50-mililitrowych probówek. Umyj 15-mililitrowe stożkowe probówki pięcioma mililitrami roztworu PBS na probówkę, obracając PBS w celu rozpuszczenia pozostałej tkanki nerkowej.
Wyciśnij zawartość prania do odpowiedniej rurki o pojemności 50 mililitrów, jak pokazano poniżej. Po wyciśnięciu trzeciego płukania wyposażyć każdą strzykawkę w igłę o rozmiarze 21. Wyciśnij zawartość 50-mililitrowych probówek do drugiego zestawu 50-mililitrowych probówek przez mycie igłą o mniejszym otworze i trzykrotnie wytłaczając zawartość pierwszej 50-mililitrowej probówki świeżym PBS, jak pokazano.
Po trzecim praniu i wytłaczaniu zwiększ całkowitą objętość w każdej tubie do 50 mililitrów za pomocą dodatkowego PBS i umieść rurki w stojaku na płycie kołyskowej w temperaturze czterech stopni Celsjusza przez noc. W ciągu pięciu dni od przetworzenia umieść siatkę zawierającą 16 oddzielnych sekcji na dnie sześciu dołków 12-dołkowej płytki. Delikatnie odwróć probówki z roztworem nerkowym kilka razy, aby ponownie zawiesić granulowane tkanki.
Ostrożnie dodać trzy 500 mikrolitrów podwielokrotności każdego homogenizowanego roztworu na nerkę do każdego z trzech dołków płytki 12-dołkowej. Rozcieńczyć zawartość każdej studzienki równą objętością PBS. Umieść płytkę na stoliku mikroskopu odwróconego.
Zidentyfikuj kłębuszki nerkowe na podstawie ich kulistej struktury, czerwonawego odcienia oraz tętnic przed- lub końcowych przyczepionych do ciał poszczególnych kłębuszków nerkowych. Policz liczbę kłębuszków nerkowych na każdą sekcję z siatką, aby zsumować liczbę kłębuszków na siatkę w celu obliczenia całkowitej liczby kłębuszków na studzienkę. Następnie pomnóż liczbę kłębuszków nerkowych na studzienkę razy 100, aby uzyskać średnią liczbę kłębuszków nerkowych.
W tym reprezentatywnym eksperymencie całkowita liczba nefronów u myszy, którym podawano nośnik przez 14 dni, wynosiła około 12 500 nefronów na nerkę. Infuzja angiotensyny drugiej zwiększyła jednak ciśnienie przedsionkowe o około 40 milimetrów słupa rtęci i wiązała się ze znaczącym, prawie 26% zmniejszeniem całkowitej liczby nefronów. W tym genetycznym modelu agenezji nerek szczurów obliczono, że zwierzęta urodzone z dwiema nerkami zawierają około 27 500 nefronów na nerkę po maceracji kwasowej, jak wykazano, podczas gdy szczury urodzone z pojedynczą nerką miały znacznie niższą całkowitą liczbę nefronów.
Szacunki z obu eksperymentów były zgodne z zakresami wcześniej zgłaszanymi u szczurów. Metoda maceracji kwasowej idealnie nadaje się do szacowania liczby nefronów w całych nerkach, zwłaszcza w laboratoriach, które nie są wyposażone w bardziej pracochłonne i kosztowne techniki liczenia nefronów, takie jak metoda frakcjonowania disektorowego lub rezonans magnetyczny. Metoda ta pozwala na wysokoprzepustowe, wydajne i powtarzalne oszacowanie liczby nefronów w całej nerce, które mieszczą się w granicach 5% liczb określonych za pomocą rezonansu magnetycznego.
Ocena liczby nefronów ma znaczenie kliniczne, ponieważ zmniejszona liczba nefronów wiąże się ze zwiększonym ryzykiem chorób sercowo-naczyniowych, takich jak przewlekła choroba nerek. Nie zapominaj, że praca z kwasem solnym może być bardzo niebezpieczna i że należy podjąć środki ostrożności, takie jak noszenie rękawiczek, okularów ochronnych i fartucha laboratoryjnego.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
03:43
Related Videos
597 Views
11:13
Related Videos
11K Views
08:53
Related Videos
45.4K Views
09:15
Related Videos
10.9K Views
09:16
Related Videos
18.5K Views
10:14
Related Videos
14.5K Views
11:47
Related Videos
2.6K Views
06:46
Related Videos
1.1K Views
09:50
Related Videos
1.8K Views
07:15
Related Videos
875 Views