Name: Synteza i charakterystyka amfifilowych nanocząstek złota (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 9 s
Description: Poznaj protokół syntezy amfifilowych nanocząstek złota zapewniający powtarzalność między partiami. Metoda obejmuje kontrolę jakości i charakteryzację dla zastosowań biologicznych z komórkami, wirusami i białkami.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Z.P.G. i F.S. dziękują Szwajcarskiej Narodowej Fundacji Nauki, a w szczególności NCCR 'Inżynierii Systemów Molekularnych'. Z.L. i F.S. dziękują za wsparcie grantu Swiss National Science Foundation Division II. Wszyscy autorzy dziękują Quy Ongowi za owocne dyskusje i korektę manuskryptu.

1. Synteza 11-merkapto-1-undekanosulfonianu (MUS)
UWAGA: Ten protokół może być używany w dowolnej skali. W tym miejscu opisana jest skala produktu 10 g.
<ol>
	<li>Undec-10-enesulfonian sodu 
	<ol>
		<li>Dodać 11-bromo-1-undecen (25 ml, 111,975 mmol), siarczyn sodu (28,75 g, 227,92 mmol) i bromek benzylotrietyloamoniowy (10 mg) do mieszaniny 200 ml metanolu (MeOH) i 450 ml wody dejonizowanej (DI) (stosunek 4:9 v/v MeOH:H2O) do kolby okrągłodennej o pojemności 1 l.</li>
		<li>Mieszaninę reakcyjną należy przepłukać zwrotnie w temperaturze 102 °C przez 48 godzin. Zakryj system mechanizmem redukcji ciśnienia - na przykład balonem z igłą lub po prostu igłą. Ta reakcja nie jest wrażliwa na gazy atmosferyczne. 
		UWAGA: Roztwór staje się bezbarwny po zakończeniu reakcji.</li>
		<li>Podłączyć mieszaninę reakcyjną do wyparki obrotowej w celu odparowania MeOH i zmniejszyć objętość do około 300 ml.</li>
		<li>Przenieść pozostały roztwór do lejka o pojemności 1 l.</li>
		<li>Ekstrahować pozostały roztwór wodny 5x eterem dietylowym, używając lejka do dodawania. Nieprzereagowany 11-bromo-1-undecen pozostaje w fazie eteru dietylowego, a produkt sulfonowany w H2O. 
		UWAGA: Podczas ekstrakcji należy często uwalniać narastające ciśnienie i konsultować się z prawidłowym użyciem lejków do dodawania.</li>
		<li>Zebrać końcowy wyekstrahowany roztwór wodny do kolby okrągłodennej o pojemności 1 l z pojedynczą szyjką.</li>
		<li>Podłączyć kolbę reakcyjną do wyparki obrotowej, umieszczając odrobinę smaru (lub teflonowych pasków pierścieniowych lub innego uszczelniacza) między kolbą a syfonem.</li>
		<li>Powoli zmniejszaj podciśnienie, aby odparować fazę wodną w wyparce obrotowej. Ponieważ produkt jest środkiem powierzchniowo czynnym, podczas parowania dochodzi do pienienia. Aby obejść ten problem, postępuj zgodnie z instrukcjami w następnym kroku.
		<ol>
			<li>Dodaj etanol do mieszaniny, aby przyspieszyć parowanieH2Oi zapobiec pienieniu. Gdy spienianie zostanie wznowione z powodu spadku zawartości etanolu, należy zatrzymać parowanie, wyjąć kolbę z wyparki obrotowej, dodać więcej etanolu (około jednej trzeciej całkowitej objętości) i ponownie podłączyć kolbę do wyparki obrotowej. Powtarzaj ten proces, aż mieszanina roztworu znacznie się zmniejszy i nie utworzy pęcherzyków.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wysuszyć biały proszek bezpośrednio, podłączając kolbę do wysokiej próżni. Im bardziej suchy proszek, tym mniej soli nieorganicznych wkradnie się do kolejnych etapów. 
		UWAGA: Do wysuszenia produktu można użyć ciepła, na przykład trzymając kolbę pod próżnią w kąpieli o temperaturze 60 °C i pozostawiając na noc.</li>
		<li>Zawiesić biały proszek w 400 ml metanolu w kolbie. Sonikacja w celu rozpuszczenia maksymalnej ilości produktu. 
		UWAGA: Celem tego etapu jest rozpuszczenie produktu, ale nie nieorganicznych produktów ubocznych, takich jak nadmiar siarczynu sodu i bromek sodu, które mają ograniczoną rozpuszczalność w metanolu. Używaj metanolu o jak najniższej zawartości wody, ponieważ woda w metanolu zwiększy rozpuszczalność nieorganicznych produktów ubocznych w rozpuszczalniku.</li>
		<li>Aby zwiększyć rozpuszczalność produktu, metanol można delikatnie podgrzać w pobliżu temperatury wrzenia (~64 °C). 
		UWAGA: Upewnij się, że podczas podgrzewania kolby pracujesz pod wyciągiem. Opary odparowanego metanolu są niebezpieczne.</li>
		<li>Przefiltrować roztwór, aby usunąć nierozpuszczalne w metanolu nieorganiczne produkty uboczne. Użyć kolby filtrującej podłączonej do pompy próżniowej i lejka filtrującego z ilościową bibułą filtracyjną lub filtrem borokrzemianowym. Zarówno produkt, jak i sole nieorganiczne są białymi proszkami po wyschnięciu: produkt jest rozpuszczalny w metanolu, podczas gdy sole nie.</li>
		<li>Przefiltrowany roztwór przenieść z kolby filtracyjnej do kolby okrągłodennej o pojemności 1 l.</li>
		<li>Podłączyć kolbę do wyparki obrotowej i odparować roztwór metanolowy w temperaturze 45 °C, ponownie rozpuścić biały proszek w metanolu i przefiltrować roztwór (kroki protokołu 1.1.7, 1.1.8 i 1.1.9). Powtórz ten proces co najmniej 2 razy, aby zmniejszyć ilość soli nieorganicznej.</li>
		<li>Zebrać biały, rozpuszczalny w metanolu proszek (około 30 g, w tej skali).</li>
		<li>Rozpuścić około 10 mg produktu w 500 μlD2Oi przenieść roztwór do probówki NMR.</li>
		<li>Wykonaj 1-godzinnąspektrometrię NMR na produkcie w D2O przy 400 MHz z 32 skanami. 
		UWAGA: Przypisania pików dla 1H NMR (D2O) wynoszą 5,97 (m, 1H), 5,09 (m, 2H), 2,95 (t, 2H), 2,10 (m, 2H), 1,77 (q, 2H), 1,44 (br s, 12H).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>11-acetylotio-undekanosulfonian sodu
	<ol>
		<li>Rozpuścić około 30 g undec-10-enesulfonianu sodu (produkt reakcji w sekcji 1.1) w 500 ml metanolu w kolbie okrągłodennej o pojemności 1 l. Do roztworu dodać 2,6x nadmiar kwasu tiooctowego i mieszać go przed lampą UV (250 W) przez noc (~12 h). W przypadku, gdy lampa UV nie jest dostępna, reakcję można przeprowadzić przez refluks przy użyciu inicjatora rodnikowego, takiego jak azobisisobutyronitryl (AIBN); jednak zdecydowanie zaleca się stosowanie lampy UV. 
		UWAGA: Upewnij się, że przez cały czas pracujesz pod wyciągiem. Jeśli kolba musi zostać przetransportowana do innego miejsca, w którym znajduje się lampa UV, należy ją uszczelnić, aby uniknąć rozprzestrzeniania się silnego zapachu kwasu tiooctowego. Zachowaj ostrożność podczas obsługi lampy UV: całkowicie zablokuj przestrzeń, w której znajduje się lampa i zapoznaj się z wytycznymi instytucji dotyczącymi bezpieczeństwa dotyczącymi obsługi lampy UV.</li>
		<li>Monitoruj reakcję, pobierając ~ 2 ml podwielokrotności z reakcji, odparuj rozpuszczalnik i dodaj deuterowaną wodę, aby sprawdzić za pomocą 1H NMR. Gdy piki odpowiadające wiązaniu podwójnemu znikną, zatrzymaj reakcję. 
		UWAGA: Zwykle po 12 godzinach przed lampą UV reakcja jest zakończona. Jeśli mieszanina reakcyjna stanie się mętna, dodaj więcej MeOH i kontynuuj ekspozycję na światło UV przez dodatkowe sześć godzin.</li>
		<li>Odparuj cały MeOH w wyparce obrotowej, aż stała pozostałość stanie się pomarańczowo-czerwona. Pozostawiony wystarczająco długo produkt staje się brązowy do czarnego. 
		UWAGA: Pracuj uważnie ze względu na silne zapachy kwasu tiooctowego. Silne zapachy wszelkich rozlanych tiolanów można zneutralizować za pomocą wodnego roztworu wybielacza (podchlorynu sodu).</li>
		<li>Za pomocą kolby filtrującej przemyć produkt eterem dietylowym w celu usunięcia nadmiaru kwasu tiooctowego, aż do momentu, gdy w supernatantze eteru dietylowego nie pojawią się już żadne zabarwione (pomarańczowo-żółte) substancje. Wysuszyć ciało stałe w wysokiej próżni, a następnie rozpuścić je w metanolu, uzyskując roztwór o barwie od żółtej do pomarańczowej. 
		UWAGA: Dodaj tyle metanolu, aby rozpuścić produkt. 
		UWAGA: Na tym etapie kolor może się różnić. </li>
		<li>Dodać 3 g sadzy do roztworu, energicznie wymieszać i przefiltrować mieszaninę przez medium filtracyjne (patrz tabela materiałów) pokrywające dwie trzecie karbowanej bibuły filtracyjnej. 
		UWAGA: Porowata struktura sadzy wychwytuje kolorowy materiał produktu ubocznego (i część produktu). Przefiltrowany roztwór powinien być klarowny. Jeśli przefiltrowany roztwór jest nadal zabarwiony (na żółto), powtórz ten proces.</li>
		<li>Całkowicie odparować rozpuszczalnik w wyparce obrotowej i zebrać około 35 g białego proszku.</li>
		<li>Rozpuścić ~10 mg produktu w ~500 μLD2Oi przenieść roztwór do probówek NMR.</li>
		<li>Wykonaj 1H NMR na produkcie w D2O przy 400 MHz z 32 skanowaniami. 
		UWAGA: Przypisania szczytów dla H NMR (D2O) wynoszą 2.93 (t, 4H), 2.40 (s, 3H), 1.77 (m, 2H), 1.62 (m, 2H), 1.45 (br s, 14H).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>11-merkapto-1-undekanosulfonian (MUS)
	<ol>
		<li>Refluks 11-acetylotioundekanosulfonianu sodu w temperaturze 102 °C w 400 ml 1 M HCl przez 12 godzin w celu rozszczepienia grupy tiooctanowej i otrzymania tiolu.</li>
		<li>Przenieść produkt do kolby okrągłodennej o pojemności 1,5 l lub 2 l. Dodać 200 ml 1 M NaOH do końcowego roztworu i uzupełnić 400 ml wody DI, aby uzyskać końcową objętość 1 l. Dzięki temu roztwór będzie miał kwaśny charakter i zapobiegnie krystalizacji soli nieorganicznych jako produktu ubocznego. 
		UWAGA: Całkowita neutralizacja roztworu do pH 7 spowoduje krystalizację produktu nierozpuszczalnego w metanolu.</li>
		<li>Przechowywać klarowny roztwór w temperaturze 4 °C, a wykrystalizuje przez noc. Produkt krystalizuje w postaci drobnych kryształów, które są lepkie, gdy są mokre. 
		UWAGA: Aby przyspieszyć krystalizację, dodaj wstępnie zsyntetyzowany MUS do roztworu, jeśli jest dostępny.</li>
		<li>Zdekantować klarowny sklarowany roztwór i odwirować lepki biały produkt w probówkach wirówkowych o pojemności 50 ml przez 5 minut przy 4 000 x g.</li>
		<li>Zdekantować supernatant do innej kolby i wysuszyć białe granulki w wysokiej próżni - w zależności od dostępnej wirówki może to być 2 - 16 probówek lub więcej. 
		UWAGA: Filtrowanie nie jest zalecane ze względu na surfaktantowy charakter produktu; Wystąpi nadmierne pienienie i większość produktu zostanie utracona.</li>
		<li>Na tym etapie oczyszczania należy zebrać około 12 g (około 30% wydajności) rozpuszczalnego w metanolu MUS. 
		UWAGA: Należy pamiętać, że proszek jest drobny i elektrostatyczny - ma tendencję do przyklejania się do szpatułek i powierzchni pojemników. Z supernatantu na etapie wirowania można również wyekstrahować więcej materiału, zmniejszając objętość (do około jednej trzeciej jej pierwotnej wartości) i utrzymując ją na poziomie 4 °C. Zmniejsz objętość jeszcze bardziej (o 75%), aby zwiększyć wydajność na tym etapie.</li>
		<li>Rozpuścić ~10 mg produktu w ~500 μLD2Oi przenieść roztwór do probówek NMR.</li>
		<li>Wykonaj 1H NMR na produkcie w D2O przy 400 MHz z 32 skanowaniami. 
		UWAGA: Przypisania szczytowe H NMR (D2O) wynoszą 2.93 (t, 4H), 2.59 (t, 3H), 1.78 (m, 2H), 1.65 (m, 2H), 1.44 (br s, 14H). Obliczona masa molowa (z uwzględnieniem przeciwjonu sodu) produktu wynosi 290,42 g/mol.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Synteza nanocząstek: Przygotowanie odczynników
<ol>
	<li>Umyć wszystkie naczynia szklane (jedną kolbę okrągłodenną o pojemności 250 ml i jedną o pojemności 500 ml z pojedynczą szyjką, lejek o pojemności 100 ml i mały lejek) świeżą wodą królewską (trzy części kwasu solnego na jedną część kwasu azotowego). Opłucz szklane naczynia nadmiarem wody w dygestoriach i usuń wszystkie opary. Następnie opłucz szkło etanolem i wysusz je w laboratoryjnym piecu do szkła (zalecana jest 40 - 60 °C).</li>
	<li>Odważyć 177,2 mg (0,45 mmol) trójwodnego chlorku złota (III) (HAuCl4∙3H2O) w małej szklanej fiolce (fiolki o pojemności 10 lub 20 ml z czystego szkła lub na bibułce wagowej).</li>
	<li>Zważyć 87 mg (0,3 mmol) MUS w szklanej fiolce o pojemności 20 ml.</li>
	<li>Dodać 10 ml metanolu, aby rozpuścić MUS. Sonikować go w kąpieli ultradźwiękowej, aż nie będzie widoczny żaden materiał stały, aby zapewnić całkowite rozpuszczenie. 
	UWAGA: Alternatywnie, za pomocą opalarki lub ciepłej kąpieli (~60 °C), delikatnie podgrzej roztwór. Po podgrzaniu przepuść zimną wodę przez zewnętrzną część kolby, aby przywrócić ją do temperatury pokojowej.</li>
	<li>Dodać 26 μl (0,15 mmol) OT do roztworu metanolu i wymieszać w celu wymieszania ligandów.</li>
	<li>Odważyć 500 mg (13 mmol) borowodorku sodu (NaBH4) i dodać go do 100 ml etanolu w kolbie okrągłodennej o pojemności 250 ml. Mieszać energicznie za pomocą mieszania magnetycznego (600 - 800 obr./min). (NaBH4 potrzebuje od 10 do 20 minut, w zależności od gatunku, aby utworzyć klarowny roztwór w etanolu.)</li>
</ol>
3. Synteza nanocząstek złota
<ol>
	<li>Rozpuścić sól złota w 100 ml etanolu w kolbie okrągłodennej o pojemności 500 ml i rozpocząć mieszanie z prędkością 800 obr./min za pomocą pręta magnetycznego na płytce mieszającej. Upewnij się, że złota sól całkowicie się rozpuściła.</li>
	<li>Umieścić lejek o pojemności 100 ml nad kolbą okrągłodenną. Umieść lejek na górze lejka do dodawania z ilościowym filtrem papierowym w środku. Gdy NaBH4 zostanie rozpuszczony w etanolu, należy rozpocząć filtrowanie roztworu do lejka do dodawania przez bibułę filtracyjną w lejku.</li>
	<li>Dodać roztwór liganda do mieszaniny reakcyjnej. Odczekaj 15 minut na utworzenie się kompleksu złoto-tiolanowego. Zmiana koloru mieszaniny reakcyjnej z półprzezroczystego żółtego na mętny żółty wskazuje na tworzenie się kompleksu złoto-tiolanowego.</li>
	<li>Rozpocznij dodawanie przefiltrowanego roztworu NaBH4 od lejka do dodawania kroplami. Dostosuj czas interwału kropli tak, aby dodanie NaBH4 trwało około 1 godziny.</li>
	<li>Po całkowitym dodaniu NaBH4 usunąć lejek. Mieszaj reakcję przez kolejną godzinę. Pod koniec reakcji usunąć mieszadło magnetyczne za pomocą magnesu umieszczonego na zewnątrz kolby.</li>
	<li>Za pomocą przegrody zamknij kolbę i wbij igłę w przegrodę, aby uwolnić gazH2, który wydobędzie się po reakcji.</li>
	<li>Mieszaninę reakcyjną należy przechowywać w lodówce laboratoryjnej (4 °C) w celu wytrącenia nanocząstek przez noc.</li>
</ol>
4. Opracowanie syntezy
<ol>
	<li>Zdekantować sklarowany nad nim etanol w celu zmniejszenia objętości.</li>
	<li>Przenieść pozostały środek strącający do probówek wirówkowych o pojemności 50 ml i wirować przez 3 minuty przy 4 000 x g.</li>
	<li>Zdekantować supernatant, ponownie zdyspergować nanocząstki etanolem przez wirowanie i ponownie je odwirować. Powtórz ten proces prania 4 razy.</li>
	<li>Wysuszyć nanocząstki w próżni, aby usunąć resztki etanolu.</li>
	<li>Aby oczyścić nanocząstki z wolnych hydrofilowych ligandów/cząsteczek, rozpuść osady w 15 ml wody DI i przenieś je do probówek wirówkowych z membraną filtracyjną o odciętej masie cząsteczkowej 30 kDa. Dializa jest również możliwa do tej procedury.</li>
	<li>Odwirować te probówki przez 5 minut przy 4 000 x g, aby zagęścić roztwór nanocząstek.</li>
	<li>Dodaj 15 ml wody demineralizowanej do tego roztworu i odwiruj do ponownego zagęszczenia. Powtórz ten proces czyszczenia co najmniej 10 razy 
	UWAGA: Jedną z oznak tego, że zanieczyszczenia rozpuszczalne w wodzie zostały usunięte, jest brak pienienia się podczas mieszania odpadów wodnych; w końcu większość zanieczyszczeń to dwusiarczki MUS z samym sobą lub z OT (można to określić zbierając materiał i wykonując 1H NMR).</li>
	<li>Po odwirowaniu przenieś skoncentrowane nanocząstki do probówki wirówkowej o pojemności 15 ml. Aby zamienić nanocząstki w łatwy do opanowania proszek, wytrącić je w rozpuszczalniku, takim jak aceton, lub liofilizować pozostały roztwór wodny. Po liofilizacji nanocząstki mają tendencję do tworzenia sypkiego proszku, który przykleja się do powierzchni i może być trudny do manipulowania.</li>
</ol>
5. Charakterystyka nanocząstek
<ol>
	<li>czystość
	<ol>
		<li>Aby sprawdzić, czy nanocząstki są wolne od niezwiązanych ligandów, należy rozpuścić 5 mg suchych nanocząstek w 600 μlD2Oi wykonać 1-godzinnypomiar NMR cząstek. Jeśli nie ma ostrych pików ligandów, oznacza to, że nanocząstki są wolne od małych cząsteczek organicznych.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Stosunek ligandów
	<ol>
		<li>Przygotować 20 mg/mlmetanolu-d4 roztworu jodu. Dodaj 600 μl tego roztworu do ~5 mg nanocząstek w szklanej fiolce, aby wytrawić nanocząstki.</li>
		<li>Owinąć nakrętkę fiolki folią parafinową i poddać sonikacji w kąpieli ultradźwiękowej przez 20 minut. Przenieść roztwór do probówki NMR i uzyskać widmo 1H NMR (400 MHz) za pomocą 32 skanów.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Gęstość ligandów
	<ol>
		<li>Przenieść od 2 do 8 mg nanocząstek do tygla TGA. Wybierz zakres temperatur od 30 °C do 900 °C i prędkość 5 °C na minutę w gazie N2.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Rozkład wielkości
	<ol>
		<li>Tem
		<ol>
			<li>Przygotować 0,1 mg/ml roztworu nanocząstek w wodzie demineralizowanej. Upuść 5 μl przygotowanego roztworu na miedzianą siatkę o oczkach 400 wspartych węglem. Poczekaj, aż wyschnie.</li>
			<li>Przenieś siatkę w uchwycie TEM i włóż ją do mikroskopu. Wykonaj od 5 do 10 zdjęć o powiększeniu co najmniej 64 000X, działających przy napięciu 200 kV. 
			UWAGA: Aby zwiększyć kontrast, można włożyć przysłonę obiektywu o długości fali 20 nm.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Widma UV-VIS
		<ol>
			<li>Przygotować roztwór nanocząstek o stężeniu 0,2 mg/ml w wodzie demineralizowanej.</li>
			<li>Umieść wymaganą ilość tego roztworu w kuwecie kwarcowej i skanuj od 200 nm do 700 nm.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Verma, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+surface+properties+on+nanoparticle-cell+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Effect of surface properties on nanoparticle-cell interactions.</a> Small. 6 (1), 12-21 (2010).</li>
<li>Yeh, Y. -C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gold+nanoparticles%3A+preparation%2C+properties%2C+and+applications+in+bionanotechnology%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">Gold nanoparticles: preparation, properties, and applications in bionanotechnology.</a> Nanoscale. 4 (6), 1871-1880 (2012).</li>
<li>Mirza, A. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+drug+delivery+system+of+gold+nanorods+with+doxorubicin+and+study+of+drug+release+by+single+molecule+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Drug+Targeting%22%5BJournal%5D)">A novel drug delivery system of gold nanorods with doxorubicin and study of drug release by single molecule spectroscopy.</a> Journal of Drug Targeting. 23 (1), 52-58 (2015).</li>
<li>Mirza, A. Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+and+characterization+of+doxorubicin+functionalized+PSS+coated+gold+nanorod%5BTitle%5D)+AND+%22Arabian+Journal+of+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Fabrication and characterization of doxorubicin functionalized PSS coated gold nanorod.</a> Arabian Journal of Chemistry. , In Press (2014).</li>
<li>Nel, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+biophysicochemical+interactions+at+the+nano-bio+interface%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Materials%22%5BJournal%5D)">Understanding biophysicochemical interactions at the nano-bio interface.</a> Nature Materials. 8 (7), 543-557 (2009).</li>
<li>Yeo, E. L. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+Corona+around+Gold+Nanorods+as+a+Drug+Carrier+for+Multimodal+Cancer+Therapy%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Biomaterials+Science+and+Engineering%22%5BJournal%5D)">Protein Corona around Gold Nanorods as a Drug Carrier for Multimodal Cancer Therapy.</a> ACS Biomaterials Science and Engineering. 3 (6), 1039-1050 (2017).</li>
<li>Lin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+membranes+open+%26%2334%3Bdoors%26%2334%3B+for+cationic+nanoparticles%2F+biomolecules%3A+Insights+into+uptake+kinetics%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Cell membranes open &#34;doors&#34; for cationic nanoparticles/ biomolecules: Insights into uptake kinetics.</a> ACS Nano. 7 (12), 10799-10808 (2013).</li>
<li>Saha, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+Macrophage+Recognition+through+the+Interplay+of+Nanoparticle+Surface+Functionality+and+Protein+Corona%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Regulation of Macrophage Recognition through the Interplay of Nanoparticle Surface Functionality and Protein Corona.</a> ACS Nano. 10 (4), 4421-4430 (2016).</li>
<li>Moyano, D. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+corona-free+nanoparticles+with+tunable+hydrophobicity%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Fabrication of corona-free nanoparticles with tunable hydrophobicity.</a> ACS Nano. 8 (7), 6748-6755 (2014).</li>
<li>Pengo, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gold+nanoparticles+with+patterned+surface+monolayers+for+nanomedicine%3A+current+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22European+Biophysics+Journal%22%5BJournal%5D)">Gold nanoparticles with patterned surface monolayers for nanomedicine: current perspectives.</a> European Biophysics Journal. 46 (8), 749-771 (2017).</li>
<li>Kuna, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+nanometre-scale+structure+on+interfacial+energy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Materials%22%5BJournal%5D)">The effect of nanometre-scale structure on interfacial energy.</a> Nature Materials. 8 (10), 837-842 (2009).</li>
<li>Verma, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface-structure-regulated+cell-membrane+penetration+by+monolayer-protected+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Materials%22%5BJournal%5D)">Surface-structure-regulated cell-membrane penetration by monolayer-protected nanoparticles.</a> Nature Materials. 7 (7), 588-595 (2008).</li>
<li>Van Lehn, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipid+tail+protrusions+mediate+the+insertion+of+nanoparticles+into+model+cell+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Lipid tail protrusions mediate the insertion of nanoparticles into model cell membranes.</a> Nature Communications. 5, 4482-4493 (2014).</li>
<li>Cagno, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Broad-spectrum+non-toxic+antiviral+nanoparticles+with+a+virucidal+inhibition+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Materials%22%5BJournal%5D)">Broad-spectrum non-toxic antiviral nanoparticles with a virucidal inhibition mechanism.</a> Nature Materials. 17 (2), 195-203 (2018).</li>
<li>Uzun, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water-soluble+amphiphilic+gold+nanoparticles+with+structured+ligand+shells%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Communications%22%5BJournal%5D)">Water-soluble amphiphilic gold nanoparticles with structured ligand shells.</a> Chemical Communications. 2 (2), 196-198 (2008).</li>
<li>Huang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colloidal+stability+of+self-assembled+monolayer-coated+gold+nanoparticles%3A+The+effects+of+surface+compositional+and+structural+heterogeneity%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Colloidal stability of self-assembled monolayer-coated gold nanoparticles: The effects of surface compositional and structural heterogeneity.</a> Langmuir. 29 (37), 11560-11566 (2013).</li>
<li>Carney, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+method+to+quantify+nanoparticle+interaction+with+lipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Electrical method to quantify nanoparticle interaction with lipid bilayers.</a> ACS Nano. 7 (2), 932-942 (2013).</li>
<li>Van Lehn, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+particle+diameter+and+surface+composition+on+the+spontaneous+fusion+of+monolayer-protected+gold+nanoparticles+with+lipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Letters%22%5BJournal%5D)">Effect of particle diameter and surface composition on the spontaneous fusion of monolayer-protected gold nanoparticles with lipid bilayers.</a> Nano Letters. 13 (9), 4060-4067 (2013).</li>
<li>Huang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+surface+compositional+and+structural+heterogeneity+on+nanoparticle-protein+interactions%3A+Different+protein+configurations%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Effects of surface compositional and structural heterogeneity on nanoparticle-protein interactions: Different protein configurations.</a> ACS Nano. 8 (6), 5402-5412 (2014).</li>
<li>Van Lehn, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Free+energy+change+for+insertion+of+charged%2C+monolayer-protected+nanoparticles+into+lipid+bilayers%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Free energy change for insertion of charged, monolayer-protected nanoparticles into lipid bilayers.</a> Soft Matter. 10 (4), 648-658 (2014).</li>
<li>Ong, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+Ligand+Shell+for+Mixed-Ligand+Coated+Gold+Nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Accounts+of+Chemical+Research%22%5BJournal%5D)">Characterization of Ligand Shell for Mixed-Ligand Coated Gold Nanoparticles.</a> Accounts of Chemical Research. 50 (8), 1911-1919 (2017).</li>
<li>Marbella, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NMR+techniques+for+noble+metal+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Chemistry+of+Materials%22%5BJournal%5D)">NMR techniques for noble metal nanoparticles.</a> Chemistry of Materials. 27 (8), 2721-2739 (2015).</li>
<li>Templeton, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reactivity+of+Monolayer-Protected+Gold+Cluster+Molecules+Steric+Effects%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Reactivity of Monolayer-Protected Gold Cluster Molecules Steric Effects.</a> Journal of American Chemical Society. 120 (8), 1906-1911 (1998).</li>
<li>Harkness, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+structural+mass+spectrometry+strategy+for+the+relative+quantitation+of+ligands+on+mixed+monolayer-protected+gold+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">A structural mass spectrometry strategy for the relative quantitation of ligands on mixed monolayer-protected gold nanoparticles.</a> Analytical Chemistry. 82 (22), 9268-9274 (2010).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Protokół ten opisuje najpierw syntezę liganda MUS, a następnie syntezę i charakterystykę amfifilowych nanocząstek złota MUS:OT. Synteza MUS przy minimalnej zawartości soli umożliwia lepszą wiarygodność stosunku stechiometrycznego między ligandami podczas syntezy nanocząstek, co jest kluczowym czynnikiem dla powtarzalnej syntezy nanocząstek MUS:OT o docelowej zawartości hydrofobowej (ryc. 8). Zastosowanie metanolu jako powszechnego rozpuszczalnika dla MUS i OT, wraz z syntezą cząstek w etanol...

Powłoka liganda z nanocząsteczek złota może być zaprojektowana tak, aby wykazywała kilka różnych właściwości, które mogą być zastosowane do rozwiązywania problemów w biomedycynie1,2,3,4. Taka wszechstronność pozwala na kontrolę oddziaływań międzycząsteczkowych między nanocząstkami a biomolekułami5,6,7. Hydrofobowość i ładunek odgrywają decydującą rolę, a także inne parametry powierzchni, które wpływają na to, jak nanocząstki oddziałują z biomolekułami5,8,9. Aby dostroić właściwości powierzchniowe nanocząstek, wybór cząsteczek tiolanu, które tworzą powłokę liganda, oferuje niezliczone możliwości, w zależności od poszukiwanych cech. Na przykład mieszanina cząsteczek ligandów z hydrofobowymi i hydrofilowymi (np. naładowanymi) grupami końcowymi jest często używana do generowania amfifilowych nanocząstek10,11.
Jednym z najważniejszych przykładów tego typu nanocząsteczek jest ochrona mieszaniny nanocząstek OT i MUS (zwanych dalej MUS:OT), która okazała się posiadać wiele istotnych właściwości12,13,14. Po pierwsze, przy składzie otoczki liganda wynoszącym 66% MUS (dalej 66:34 MUS:OT), stabilność koloidalna nanocząstek jest wysoka, osiągając do 33% wagowo w wodzie dejonizowanej, a także w soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (1x, 4 mM fosforan, 150 mM NaCl)15. Co więcej, cząstki te nie wytrącają się przy stosunkowo niskich wartościach pH: na przykład przy pH 2,3 i stężeniu soli 1 M NaCl15, te nanocząstki pozostają stabilne koloidalnie przez wiele miesięcy. Stosunek stechiometryczny między dwiema cząsteczkami na otoczce liganda jest ważny, ponieważ decyduje o stabilności koloidalnej w roztworach o wysokiej sile jonowej16.
Wykazano, że te cząstki przechodzą przez błonę komórkową bez jej niszczenia, poprzez ścieżkę niezależną od energii1,12. Spontaniczne połączenie tych cząstek i dwuwarstw lipidowych leży u podstaw ich dyfuzyjności przez błony komórkowe17. Mechanizm tej interakcji polega na zminimalizowaniu kontaktu między hydrofobową powierzchnią dostępną dla rozpuszczalnika a cząsteczkami wody po fuzji z dwuwarstwami lipidowymi18. W porównaniu z nanocząstkami składającymi się wyłącznie z MUS (nanocząstki mające na swojej powłoce tylko ligand MUS), wyższa hydrofobowość mieszanych nanocząstek MUS:OT (na przykład przy składzie 66:34 MUS:OT) zwiększa rozpiętość średnicy rdzenia, który może łączyć się z dwuwarstwami lipidowymi18. Różne organizacje samoorganizacji powłoki liganda korelują z różnymi trybami wiązania nanocząstek 66:34 MUS:OT z różnymi białkami, takimi jak albumina i ubikwityna, w porównaniu z cząstkami all-MUS19. Ostatnio doniesiono, że nanocząstki 66:34 MUS:OT mogą być wykorzystywane jako środek przeciwwirusowy o szerokim spektrum działania, który nieodwracalnie niszczy wirusy z powodu wielowartościowych wiązań elektrostatycznych ligandów MUS i nielokalnych sprzężeń ligandów OT z białkami kapsydu14. We wszystkich tych przypadkach stwierdzono, że zawartość hydrofobowa, a także rozmiar rdzenia nanocząstek, determinują sposób, w jaki zachodzą te bio-nano interakcje. Te różnorodne właściwości nanocząstek MUS:OT skłoniły do przeprowadzenia wielu badań symulacyjnych komputerowych, które miały na celu wyjaśnienie mechanizmów leżących u podstaw interakcji między cząstkami MUS:OT a różnymi strukturami biologicznymi, takimi jak dwuwarstwy lipidowe20.
Przygotowanie nanocząsteczek Au chronionych przez MUS:OT stawia kilka wyzwań. Po pierwsze, naładowany ligand (MUS) i ligand hydrofobowy (OT) są niemieszające się. W związku z tym rozpuszczalność nanocząstek i ligandów musi być brana pod uwagę podczas całej syntezy, a także podczas charakteryzowania. Ponadto czystość cząsteczek liganda MUS – w szczególności zawartość soli nieorganicznych w materiale wyjściowym – wpływa na jakość, odtwarzalność, a także krótko- i długoterminową stabilność koloidalną nanocząstek.
Tutaj przedstawiono szczegółową syntezę i charakterystykę tej klasy amfifilowych nanocząstek złota chronionych mieszaniną MUS i OT. Podano protokół syntezy ujemnie naładowanego liganda MUS w celu zapewnienia czystości, a tym samym odtwarzalności różnych syntez nanocząstek. Następnie szczegółowo opisano procedurę wytwarzania tych nanocząstek, opartą na powszechnej syntezie jednofazowej, po której następuje dokładne oczyszczanie. Różne niezbędne techniki charakteryzacji21, takie jak TEM, UV-Vis, TGA i NMR, zostały połączone w celu uzyskania wszystkich niezbędnych parametrów do dalszych eksperymentów biologicznych.

<table><tbody><tr><td>11-bromo-1-undecen</td><td>Sigma Aldrich</td><td>467642-25 ml</td><td></td></tr><tr><td>Siarczyn sodu</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S0505-250 g</td><td></td></tr><tr><td>Bromek benzylotrietyloamonowy</td><td>Sigma Aldrich</td><td>147125-25 g</td><td></td></tr><tr><td>Metanol</td><td>VWR</td><td>BDH1135-2,5 LP</td><td></td></tr><tr><td>DI woda</td><td>Milipore</td><td>ZRXQ003WW</td><td>Woda dejonizowana</td></tr><tr><td>1 L okrągły kolba dolna</td><td>DURAN</td><td>24 170 56</td><td></td></tr><tr><td>Eter dietylowy</td><td>Sigma Aldrich</td><td>1.00930 EMD Millipore</td><td></td></tr><tr><td>Listwa mieszająca</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Z329207,</td><td></td></tr> <tr><td>Smar wysokopróżniowy Dow Corning</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Z273554 ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Kolba filtrująca</td><td>DURAN</td><td>20 201 63</td><td></td></tr><tr><td>Lejek filtrujący Buchner</td><td>FisherSci</td><td></td><td></td>11707335</tr><tr><td>Etanol >99,8%, ACS, Odczynnik</td><td>VWR</td><td>2081.321DP</td><td></td></tr><tr><td>Dwutlenek deuteru</td><td>Sigma Aldrich</td><td>151882 ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Kwas tiooctowy 96%</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T30805 ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Sadza</td><td>Sigma Aldrich</td><td>05105-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Celite</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D3877 SIGMA-ALDRICH</td><td>Medium filtracyjne</td></tr><tr><td>Skraplacz</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Z531154</td><td></td></tr><tr><td>Kwas solny, odczynnik ACS 37%</td><td>Sigma Aldrich</td><td>320331 SIGMA-ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Wodorotlenek sodu, BioXtra, granulki (bezwodne)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S8045 SIGMA-ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Probówki wirówkowe</td><td>VWR</td><td>525-0155P</td><td></td></tr><tr><td>250 mL kolba okrągłodenna</td><td>DURAN</td><td>24 170 37</td><td></td></tr><tr><td>Kolba okrągłodenna 500 ml</td><td>DURAN</td><td>24 170 46</td><td></td></tr><tr><td>Kwas azotowy, odczynnik fACS 70%</td><td>Sigma Aldrich</td><td>438073 SIGMA-ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Trójwodny chlorek złota(III) >99,9% na bazie metali śladowych</td><td>Sigma Aldrich</td><td>520918 ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>1-oktanotiol >98,5%</td><td>Sigma Aldrich</td><td>471836 ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Borowodorek sodu purum p.a.>96%</td><td>Sigma Aldrich</td><td>71320 Lejek do dodawania ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Sigma Aldrich</td><td>Z330655 SIGMA</td><td></td></tr><tr><td>Lejek</td><td>DURAN</td><td>21 351 46</td><td></td></tr><tr><td>Bibuła filtracyjna składana 2V</td><td>Whatman</td><td>1202-150</td><td></td></tr><tr><td>Amicon</td><td>Merck</td><td>UFC903024</td><td></td></tr><tr><td>Jod, odczynnik ACS, >99,8%, stały</td><td>Sigma Aldrich</td><td>207772 SIGMA-ALDRICH</td><td></td></tr><tr><td>Rurki NMR 5 mm, typ 5HP (wysoka precyzja)</td><td>Armar</td><td>32210.503</td><td>Długość 178 mm</td></tr><tr><td>Metanol-d4 99,8 atomu%D</td><td>Tygiel TGA Armar</td><td>16400.2035</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Thepro</td><td>9095-9270.45</td><td></td></tr><tr><td>400 mesh siatka miedziana na wspartym węglem</td><td>Mikroskopia elektronowa Science</td> Kuweta kwarcowa <td>CF400-Cu</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Hellma Analytics</td><td>Numer katalogowy: 100-1-40</td><td></td></tr></tbody></table>

synteza i charakterystyka amfifilowych nanocząstek złota

Synthesis and Characterization of Amphiphilic Gold Nanoparticles

Nanocząstki złota pokryte mieszaniną 1-oktanetiolu (OT) i kwasu 11-merkapto-1-undekanosulfonowego (MUS) zostały gruntownie przebadane ze względu na ich interakcje z błonami komórkowymi, dwuwarstwami lipidowymi i wirusami. Ligandy hydrofilowe sprawiają, że cząstki te są stabilne koloidalnie w roztworach wodnych, a połączenie z ligandami hydrofobowymi tworzy amfifilową cząstkę, która może być obciążona lekami hydrofobowymi, łączyć się z błonami lipidowymi i być odporna na niespecyficzną adsorpcję białek. Wiele z tych właściwości zależy od wielkości nanocząstek i składu otoczki liganda. Dlatego tak ważne jest posiadanie powtarzalnej metody syntezy i wiarygodnych technik charakteryzacji, które pozwalają na określenie właściwości nanocząstek i składu powłoki liganda. W tym miejscu przedstawiono jednofazową redukcję chemiczną, po której następuje dokładne oczyszczanie w celu syntezy tych nanocząstek o średnicach poniżej 5 nm. Stosunek między dwoma ligandami na powierzchni nanocząstki można dostroić za pomocą ich stosunku stechiometrycznego stosowanego podczas syntezy. Pokazujemy, w jaki sposób różne rutynowe techniki, takie jak transmisyjna mikroskopia elektronowa (TEM), magnetyczny rezonans jądrowy (NMR), analiza termograwimetryczna (TGA) i spektrometria ultrafioletowo-widzialna (UV-Vis), są łączone w celu kompleksowego scharakteryzowania parametrów fizykochemicznych nanocząstek.

Etapy reakcji syntezy MUS przedstawiono na Rysunku 1. Widma 1H NMR produktu z każdego etapu przedstawiono na Rysunku 2. Schemat syntezy binarnych amfifilowych nanocząstek złota MUS:OT opisano na Rysunku 3. Po syntezie oczyszczanie nanocząstek polegało na kilkukrotnym przemyciu cząstek etanolem i wodą dejonizowaną (DI water). Przed przeprowadzeniem charakterystyki nanocząstek, czystość nano...

Amfifilowe nanocząstki złota mogą być używane w wielu zastosowaniach biologicznych. Przedstawiono protokół syntezy nanocząstek złota pokrytych binarną mieszaniną ligandów oraz szczegółową charakterystykę tych cząstek.

Synteza i charakterystyka amfifilowych nanocząstek złota

Gold nanoparticles covered with a mixture of 1-octanethiol (OT) and 11-mercapto-1-undecane sulfonic acid (MUS) have been extensively studied because of ...

Protokół ten dotyczy odtwarzalności poszczególnych partii sulfonianów i amfifilowych nanocząstek złota, które nasze laboratorium wykorzystuje w eksperymentach na komórkach, wirusach i białkach. Technika ta odnosi się do zanieczyszczeń nieorganicznych typowych dla tego typu syntezy. Wprowadza również mechanizmy kontroli i równowagi po każdym kroku, aby zapewnić odtwarzalność amfifilowych nanocząstek złota.Ta technika jest pracochłonna i wymaga cierpliwości. Poziom trudności zależy od skali, więc zacznij od małej skali i zapoznaj się z każdym instrumentem i krokiem przed skalowaniem w górę. Najpierw dodaj 11-bromo-1-undecen, siarczyn sodu i bromek benzylotrietyloamoniowy do 200 mililitrów metanolu i 450 mililitrów wody dejonizowanej w jednolitrowej kolbie okrągłodennej.Mieszaninę reakcyjną należy przelać do 102 stopni Celsjusza przez 48 godzin, aż roztwór stanie się bezbarwny. Po zakończeniu pracy zawiesić wyizolowany biały proszek w 400 mililitrach metanolu w kolbie okrągłodennej. Używając kolby filtracyjnej i filtra borokrzemianowego, przefiltruj roztwór, aby usunąć nierozpuszczalne w metanolu nieorganiczne produkty uboczne.Następnie rozpuścić około 30 gramów undec-10-enesulfonianu

synthesis-and-characterization-of-amphiphilic-gold-nanoparticles

Research

JoVE Journal

Chemistry

Chemia

Koloidy złota stabilizowane alkanotiolanami, znane jako klastry chronione monowarstwą (MPCs), są syntetyzowane, charakteryzowane i montowane w cienkie filmy służące jako interfejs adsorpcyjny dla elektrochemii monowarstw białkowych w przypadku prostych białek redoks, takich jak azuryna (AZ) z Pseudomonas aeruginosa oraz cytochrom c (cyt c).

Synteza, montaż i charakterystyka filmów z nanocząsteczek złota chronionych monowarstwą do elektrochemii monowarstw białek

Zsyntetyzowaliśmy złote nanogwiazdy o kształcie gwiazdy, wykorzystując metodę wzrostu wspomaganego srebrnymi zarodkami. Średnica nanogwiazd wynosi od 200 do 300 nm, a liczba ramion waha się od 7 do 10. Nanocząstki wykazują szeroki mod powierzchniowego rezonansu plazmonowego z maksimum w bliskiej podczerwieni.

Synteza nanogwiazd złota metodą wzrostu sterowanego srebrnymi nasionami

Tutaj prezentujemy protokół z procesem zol-żel do syntezy złota interkalowanego w ściankach materiałów mezoporowatych (GMS), który potwierdza, że posiada mezoporowatą matrycę ze złotem interkalowanym w ściankach, co zapewnia dużą stabilność i możliwość recyklingu.

Synteza i wydajność katalityczna złota interkalowanego w ściankach mezoporowatej krzemionki

Przeprowadzana jest synteza jednolitych nanocząstek złota pokrytych półprzewodnikowymi powłokami CdS lub ZnS. Powłoka półprzewodnikowa jest przeprowadzana przez pierwsze osadzenie powłoki siarczku srebra i wymianę kationów srebra na kationy lub kadmu.

Synteza, charakterystyka i funkcjonalizacja hybrydowych nanocząstek rdzenia/powłoki Au/CdS i Au/ZnS

Opisujemy prostą metodę wytwarzania wysoce stabilnych oligomerycznych klastrów nanocząstek złota poprzez redukcję kwasu chloroaurowego (HAuCl4) tiocyjanianem sodu (NaSCN). Oligoklastry mają wąski rozkład wielkości i mogą być produkowane w szerokim zakresie rozmiarów i powłok powierzchniowych.

Prosta metoda kontrolowanej wielkości syntezy stabilnych oligomerycznych klastrów nanocząstek złota w warunkach otoczenia

Ten artykuł opisuje protokół syntezy nanoprętów złota, oparty na użyciu hydrochinonu jako środka redukującego, a także różne mechanizmy kontroli ich wielkości i proporcji.

Synteza nanoprętów złota oparta na hydrochinonach

Opisujemy metodę syntezy biokompatybilnych nanocząsteczek złota 10 nm, funkcjonalizowanych przez powlekanie powierzchni glikolu polietylenowego. Cząstki te mogą być wykorzystywane in vitro i in vivo do dostarczania środków terapeutycznych do nanoskalowych przestrzeni komórkowych i zewnątrzkomórkowych, które są trudno dostępne przy konwencjonalnych rozmiarach nanocząstek.

Synteza funkcjonalizowanych cząstek złota pokrytych polimerem 10 nm do celowania w śródbłonek i dostarczania leków

Opisana jest niezawodna i łatwo odtwarzalna metoda przygotowania funkcjonalnych, emitujących światło podczerwone fotoluminescencyjnych nanoklastrów złota i ich bezpośredniego wykrywania wewnątrz komórek HeLa za pomocą cytometrii przepływowej i konfokalnej laserowej mikroskopii skaningowej.

Synteza nanoklastrów złota emitujących promieniowanie bliskiej podczerwieni do zastosowań biologicznych

Przedstawiono protokół syntezy nanocząstek złota o średnicy ~12 nm (nanocząstek Au) w rozpuszczalniku organicznym. Nanocząstki złota są pokryte ligandami oleiloaminy, aby zapobiec aglomeracji. Nanocząstki złota są rozpuszczalne w rozpuszczalnikach organicznych, takich jak toluen.

Synteza nanocząstek złota

Tutaj synteza nasion złota (Au) jest opisana za pomocą metody Turkewicza. Nasiona te są następnie wykorzystywane do syntezy nanocząstek ze stopu złota i cyny (Au-Sn) o przestrajalnych właściwościach plazmonicznych.

Wodna synteza plazmonicznych nanocząstek ze stopu złota i cyny

Tutaj prezentujemy systematyczną metodę opisującą quasi-odwracalną samoorganizację agregatów złota o długości 20 nm pokrytych amyloidem beta 1-40 (Aβ 1-40). Zależna od nanorozmiaru, quasi-odwracalna sieć między peptydami została skorelowana z określonymi aminokwasami lub sekcjami monomeru Aβ 1-40.

Charakterystyka zależnej od pH odwracalnej samoorganizacji koloidów złota pokrytych amyloidem beta 1-40

Poznaj protokół syntezy amfifilowych nanocząstek złota zapewniający powtarzalność między partiami. Metoda obejmuje kontrolę jakości i charakteryzację dla zastosowań biologicznych z komórkami, wirusami i białkami.

Synteza i charakterystyka amfifilowych nanocząstek złota

Przeglądaj więcej filmów