Name: Ocena produktywności kolonii os społecznych (Vespinae) i wprowadzenie do tradycyjnej japońskiej techniki polowania na osy Vespula (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-09-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 17 s
Description: Poznaj tradycyjną japońską metodę polowania na osy Vespula i oceny produktywności kolonii społecznych poprzez liczenie mekoniów w plastrach. Technika ta umożliwia badaczom skuteczne lokalizowanie gniazd dziko żyjących os.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autor chciałby podziękować Katsuyuki Takahashi, Hiroo Kobayashi, Fumihiro Sato, Daikichi Ogiso, Toshihiro Hayakawa i Hisaki Imai za nauczenie go tradycyjnej metody polowania na osy. Autor pragnie złożyć specjalne podziękowania Kevinowi J. Loope'owi i Davide Santoro za staranną korektę rękopisu. Autor jest wdzięczny Masato Abe, Yasukazu Okadzie, Yuichiro Kobayashiemu, Masakazu Shimadzie i Koji Tsuchidzie za ich dyskusję. Autor pragnie podziękować Yuyi Shimizu i Harunie Fujioce za ich pomoc techniczną w ocenie produktywności kolonii. Autor chciałby podziękować klubowi czarnych pszczół Tsukechi za wsparcie w kręceniu filmu. Autor pragnie podziękować trzem anonimowym recenzentom za ich uwagi do wczesnej wersji tego artykułu. Badanie to było częściowo wspierane przez Takeda Science Foundation, Fujiwara Natural History Foundation, Funding of the Nagano Society for The Promotion of Science, Shimonaka Memories Foundation, Takara Harmonist Fund oraz Dream Project by Come on UP, Ltd.

1. Ocena produktywności kolonii
<ol>
	<li>Szacowanie liczby komórek na plastrze
	<ol>
		<li>Oddzielaj plastry jeden po drugim. Usuń wszystkie dorosłe osy z plastra i wyjmij pęsetą wszystkie larwy oraz poczwarki z komórek.</li>
		<li>Zmierz pole powierzchni 10 losowo wybranych komórek na plastrze, korzystając z oprogramowania do analizy obrazu (np. Image J wersja 1.48, patrz http://imagej.nih.gov/ij/).
		<ol>
			<li>Wykonaj zdjęcie z referencyjną skalą w taki sposób, aby wszystkie komórki były widoczne z góry.</li>
			<li>Na podstawie rzeczywistej długości skali przelicz wszystkie zmierzone długości na piksele.</li>
			<li>Zmierz powierzchnie 10 komórek w pikselach, a następnie przelicz je na powierzchnie rzeczywiste.</li>
			<li>Oblicz średnią powierzchnię komórek robotnic i królowych.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Oszacuj liczbę komórek robotnic i królowych, dzieląc powierzchnię każdego plastra przez średnią powierzchnię komórki na danym plastrze.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zliczanie liczby mekonium w celu oceny produktywności kolonii
	<ol>
		<li>Policz liczbę mekonium na 100 komórek dla każdego plastra, ostrożnie rozłamanie plastra i badając zawartość mekonium. 
		UWAGA: Przyjęto tutaj, że taka liczba komórek jest wystarczająca (błąd standardowy SE liczby mekonium na komórkę mieści się w granicach 0,05, patrz sekcja wyników reprezentatywnych). Mekonium może stwardnieć w komórce w postaci dwóch lub więcej warstw (Rycina 1).</li>
		<li>Oblicz średnią liczbę mekonium na komórkę dla tych 100 komórek.</li>
		<li>Oblicz całkowitą liczbę mekonium dla każdego plastra (tzn. liczbę wyprodukowanych osobników, produktywność kolonii), ekstrapolując ją z oszacowanej liczby komórek oraz średniej liczby mekonium na komórkę dla danego plastra.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Poszukiwanie gniazd Vespula
<ol>
	<li>Wykładanie przynęt
	<ol>
		<li>Zawieś kawałki mątwy, ryb słodkowodnych lub serca kurczaka (łącznie około 10 g) na gałęzi drzewa na wysokości łatwo dostępnej ręką (Rysunek 2).</li>
		<li>Rozmieść przynęty wzdłuż transektu (np. wzdłuż drogi przecinającej las lub wzdłuż rzeki) w 50 do 100 stacjach, zachowując co najmniej 5 m odstępu między stacjami.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Eksperyment dotyczący strategii żerowania: mrówki wydobywające pokarm z kory drzewa, analiza efektywności zadania." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59044/59044fig2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2: Podawanie osom oznakowanej przynęty mięsnej. (A) Przynęcanie os za pomocą mięsa przymocowanego do końcówki patyka. (B) Kawałek mięsa jest przywiązany nitką do plastikowej flagi. (C) Osa trzyma mięso przywiązane do flagi. Takie „oznakowane” przynęty zwiększą widoczność latającego osobnika żerującego. Zdjęcia w panelach B i C zostały wykonane przez Fumihiro Sato. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59044/59044fig2large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
<ol start="2">
	<li>Zapewnienie osom przynęty z „flagą”
	<ol>
		<li>Konstrukcja i mocowanie flagi
		<ol>
			<li>Za pomocą noża segmentowego potnij plastikowe (polietylenowe) worki na paski o szerokości 3 - 5 mm i długości 15 cm.</li>
			<li>Przygotuj 1,5 mm3 serca kurczaka lub mątwy na bambusowym patyczku lub cienkiej gałązce (średnica przynęty mięsnej może wynosić 1 - 2 mm, masa poniżej 15 mg dla robotnicy V. shidai; Rysunek 2).</li>
			<li>Przywiąż nitkę do flagi (plastikowego paska, masa poniżej 10 mg), a następnie do mięsnej przynęty, mocując ją w odległości 3 mm od flagi (tak przygotowaną przynętę nazywa się przynętą z „flagą”). Odetnij wystającą nitkę nad węzłem. 
			UWAGA: Należy użyć bardzo cienkiej nici poliestrowej, zazwyczaj stosowanej w maszynach do szycia.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Prezentowanie przynęty mięsnej osie 
		UWAGA: Gniazdo najskuteczniej znajduje się, podążając za osami, które wielokrotnie wracają do przynęty w ciągu 4 min od momentu odlotu. Wynika to z faktu, że osy, które biorą przynętę i szybko do niej wracają, mają gniazdo w pobliżu.
		<ol>
			<li>Nanieś unikalny znak na każdy przedplecze, aby zidentyfikować poszczególne osy podczas pobierania przynęt (zaleca się stosowanie pisaków z farbą na bazie wody, patrz Tabela materiałów).</li>
			<li>Podczas prezentowania przynęty osie, ustaw flagę wraz z nitką pod owadzie w momencie, gdy ten gryzie przynętę z flagą (umieść flagę tak, aby ona i nitka przechodziły pod odwłokiem osy, poniżej jej przedplecza).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Śledzenie oznakowanej osy
		<ol>
			<li>Przed rozpoczęciem śledzenia osy zbierz przynęty z obszaru wokół, aby zwiększyć prawdopodobieństwo powrotu osy w to samo miejsce. 
			UWAGA: Śledzenie oznakowanych os sprawia się najlepiej w grupie dwóch lub więcej osób. Przynajmniej jedna osoba pozostaje na transekcie, dostarczając żerującym osom przynęty z flagami, podczas gdy pozostali śledzą oznakowaną osę. Gdy więcej niż jedna osa zostanie zwabiona tą samą przynętą, należy oznaczyć i śledzić tylko te osy, które odlatują w tym samym kierunku.</li>
			<li>Podążaj za osą z przynętą z flagą.</li>
			<li>Jeśli śledzona osa wyląduje w którymkolwiek miejscu w drodze do gniazda, delikatnie unieś ją długim patykiem (gałązką) lub wędką i obserwuj, aż ponownie wzbije się w powietrze. 
			UWAGA: Postępuj delikatnie i nie uderzaj w odpoczywającą osę, ponieważ upuści ona przynętę i odleci.</li>
			<li>Gdy osa formuje kolejną kulkę mięsa przed ponownym odlotem do gniazda, w razie potrzeby popraw położenie flagi. 
			UWAGA: Osy czasami lądują i przegryzają nitkę, usuwając flagę z przynęty mięsnej. Jeśli dzieje się to często, skróć flagi, aby zwiększyć zdolność lotną żerujących owadów.</li>
			<li>Jeśli śledzona osa ucieknie z pola widzenia, poczekaj na jej powrót do stacji z przynętami na transekcie przed wznowieniem pościgu. Tym razem, podczas gdy osa gryzie nową przynętę, przenieś patyk z przynętą (i osą) do miejsca, w którym ostatnio utraciłeś ją z oczu. 
			UWAGA: Żerujące osy nie puszczają łatwo swoich przynęt i nie żądlą, jeśli obchodzi się je delikatnie. Zatem osę z przynętą z flagą można przenieść w pożądane miejsce, trzymając za flagę, bez ryzyka ucieczki owada.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Przeniesienie gniazda
<ol>
	<li>Budowa pudełka transportowego
	<ol>
		<li>Skonstruuj skrzynki gniazdowe o różnych wymiarach, od 10 do 20 cm długości i szerokości oraz od 10 do 20 cm wysokości, aby pomieścić gniazda o różnej wielkości. 
		UWAGA: Pudełka o takich wymiarach są wystarczająco duże, aby pomieścić młode gniazda V. shidai (zbierane w środkowej Japonii od połowy lipca do połowy sierpnia). Wykonaj pudełko transportowe zgodnie z wielkością gniazda każdego gatunku dla każdego stadium wzrostu.</li>
		<li>Wykonaj bambusową kratkę i przymocuj ją do wnętrza pudełka, około 2 cm nad jego dnem, aby ułatwić umieszczenie gniazda wewnątrz pudełka transportowego.</li>
		<li>Wyłóż dno pudełka transportowego gazetą i przyklej ją do drewnianej, wyjmowanej deski (Rysunek 3). 
		UWAGA: Gazeta pozwoli później osom przegryźć się przez nią podczas budowy dodatkowych plastrów poniżej pudełka transportowego, gdy zostanie ono umieszczone w skrzynce gniazdowej (patrz sekcja 3.2).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wykopywanie gniazda
	<ol>
		<li>Przed odsłonięciem całego gniazda 
		UWAGA: Należy nosić odzież ochronną, aby uniknąć użądleń przez osy broniące swojego gniazda.
		<ol>
			<li>Po odnalezieniu gniazda os i rozpocznij jego wykopywanie.</li>
			<li>Energicznie uderzaj stopami o ziemię wokół gniazda przez około 10 do 20 min, aby robotnice opuszczające gniazdo i wracające do niego pozostały wewnątrz w celu jego ochrony, co pozwoli zebrać jak najwięcej osobników. 
			UWAGA: Jeśli osy nadal przebywają poza gniazdem, lepiej schwytać je za pomocą siatki na owady. Chociaż uderzanie w ziemię jest skuteczne w przypadku V. flaviceps, V. shidai oraz V. vulgaris, robotnice innych gatunków mogą zaatakować osobę wykonującą tę czynność. W takim przypadku pomiń ten krok.</li>
			<li>Kieruj światło bezpośrednio do wejścia do gniazda, aby określić kierunek, w którym prowadzi wejście. Użyj palca, aby potwierdzić orientację otworu gniazda, jednocześnie delikatnie usuwając ziemię z okolic gniazda.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Po odsłonięciu całego gniazda
		<ol>
			<li>Gdy całe gniazdo zostanie odsłonięte, rozłóż tkaninę i połóż na niej gniazdo, aby zapobiec ucieczce os w ziemię pod gniazdem.</li>
			<li>Umieść wykopane gniazdo w drewnianym pudełku (transportowym) w celu przewiezienia do laboratorium (Rysunek 3); następnie przykryj je gałązkami i gazetą. Pozostaw górną część gniazda odsłoniętą podczas przebywania w pudełku.</li>
			<li>Postaw pudełko transportowe na tkaninie na 5 do 10 min, aż osy się uspokoją.</li>
			<li>Zbierz wszystkie osy znajdujące się w pobliżu za pomocą siatki na owady i przetransportuj je do laboratorium wraz z gniazdem. 
			UWAGA: Jako alternatywna procedura zbioru można znieczulić mieszkańców gniazda, wprowadzając do niego dym z celuloidu lub eter dietylowy przed jego wykopaniem.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Układ badania rozkładu z drewnianymi skrzynkami na ściółkę; złoże z kory i skrzynki z próbkami do analizy." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59044/59044fig3.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina 3"> 
Rycina 3: Skrzynka transportowa. (A) Skrzynka do transportu gniazd zebranych w terenie. (B) Na dnie skrzynki umieszczono bambusową kratkę. Dwie skrzynki na zdjęciu po prawej stronie są odwrócone do góry dnem. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59044/59044fig3large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>
4. Hodowla Vespula
<ol>
	<li>Budowa skrzyni gniazdowej 
	UWAGA: Skrzynia gniazdowa wykonana jest z drewna, o wymiarach 50 cm długości i szerokości oraz 70 cm wysokości, przeznaczona do hodowli V. shidai (dojrzałe gniazdo w naturze ma średnicę około 40 cm). Należy wykonać skrzynię gniazdową zgodnie z wielkością gniazda gatunku przeznaczonego do hodowli.
	<ol>
		<li>W skrzyni gniazdowej należy wykonać otwór wejściowy (zazwyczaj umieszczony w górnej części skrzyni), aby umożliwić osom opuszczenie gniazda w celu żerowania.</li>
		<li>Około 1/3 skrzyni gniazdowej należy wypełnić glebą o składzie odpowiadającym podłożu z miejsca, w którym pobrano gniazdo.</li>
		<li>W wejściu do skrzyni gniazdowej należy zainstalować siatkę drucianą (o oczkach o wielkości 1,5 cm2), aby zapobiec wnikaniu innych os (drapieżników, takich jak Vespa mandarinia i Vespa simillima).</li>
		<li>W skrzyni gniazdowej należy umieścić dwie drewniane listwy, które będą podtrzymywać skrzynię transportową (Rysunek 4).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Konfiguracja pszczelarska w pasiece; pszczelarz w odzieży ochronnej sprawdzający ramkę w ulu oraz ule w pomieszczeniu." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59044/59044fig4.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 4"> 
Rysunek 4: Konfiguracja laboratoryjna. (A) Umieszczanie skrzynki transportowej w ulu wykorzystywanym do badania długoterminowego. Przed umieszczeniem skrzynki transportowej w ulu, usunięto drewnianą płytę z dna skrzynki transportowej, pozostawiając jedynie gazetę w celu przykrycia dna ula. (B) Szereg uli z zasobami pokarmowymi zawieszonymi na drucie. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59044/59044fig4large.jpg" target="_blank">Proszę kliknąć tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<ol start="2">
	<li>Przeniesienie skrzynki transportowej do skrzynki gniazdowej
	<ol>
		<li>Podczas hodowli os w zebranych gniazdach należy przechowywać skrzynkę gniazdową w suchym miejscu (t.j. w miejscu nieeksponowanym na działanie deszczu).</li>
		<li>Usuń drewnianą płytkę z dna skrzynki transportowej i umieść ją w skrzynce gniazdowej przeznaczonej do długoterminowych badań (Rycina 4). 
		UWAGA: Osy często przegryzają dziury w gazecie wyściełającej dno skrzynki transportowej, co stwarza ryzyko użądlenia przez owady uciekające przez otwory. Dlatego podczas przenoszenia gniazda należy nosić odzież ochronną.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Karmienie os
	<ol>
		<li>W odległości około 3 m od skrzynki gniazdowej umieść różne rodzaje mięsa (kałamarnicę, ryby słodkowodne, pierś z kurczaka lub serca drobiowe) oraz roztwór miodu i wody w proporcji 1:3.</li>
		<li>Zapewnij ilość pożywienia wystarczającą na potrzeby żywieniowe jednego dnia. Codziennie uzupełniaj świeżą karmę (podrodzina Vespinae nie żeruje na starym/psującym się mięsie).</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Davies, N. B., Krebs, J. R., West, S. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDavies%2C+NB+%22An+introduction+to+Behavioural+Ecology%22">An introduction to Behavioural Ecology</a>. , John Wiley & Sons. (2012).</li>
<li>Tibbetts, E. A., Reeve, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Benefits+of+foundress+associations+in+the+paper+wasp+Polistes+dominulus%3A+increased+productivity+and+survival%2C+but+no+assurance+of+fitness+returns%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Ecology%22%5BJournal%5D)">Benefits of foundress associations in the paper wasp Polistes dominulus: increased productivity and survival, but no assurance of fitness returns.</a> Behavioural Ecology. 14, 510-514 (2003).</li>
<li>Mattila, H. R., Seeley, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+Diversity+in+Honey+Bee+colonies+Enhances+Productivity+and+Fitness%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Genetic Diversity in Honey Bee colonies Enhances Productivity and Fitness.</a> Science. 317, 362(2007).</li>
<li>Weber, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gardening+Ants%2C+the+Attines%5BTitle%5D)+AND+%22American+Philosophical+Society%22%5BJournal%5D)">Gardening Ants, the Attines.</a> American Philosophical Society. , Philadelphia, PA. (1972).</li>
<li>Baer, B., Schmid-Hempel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sperm+influences+female+hibernation+success%2C+survival+and+fitness+in+the+bumble-bee+Bombus+terrestris%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings%3A+Biological+Science%22%5BJournal%5D)">Sperm influences female hibernation success, survival and fitness in the bumble-bee Bombus terrestris.</a> Proceedings: Biological Science. 272 (1560), 319-323 (2005).</li>
<li>Spradbery, J. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSpradbery%2C+JP+%22Wasps.+An+Account+of+the+Biology+and+Natural+History+of+Social+and+Solitary+Wasps%2C+with+Particular+Reference+to+Those+of+the+British+Isles%22">Wasps. An Account of the Biology and Natural History of Social and Solitary Wasps, with Particular Reference to Those of the British Isles</a>. , Sidwick & Jackson Ltd. (1973).</li>
<li>Matsuura, M., Yamane, S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMatsuura%2C+M+%22Comparative+Ethology+of+the+Vespine+Wasps%22">Comparative Ethology of the Vespine Wasps</a>. , Hokkaido University Press. Sapporo, Japan. in Japanese (1984).</li>
<li>Greene, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+schedules+of+vespine+wasps%3A+an+empirical+test+of+the+bang-bang+optimization+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Kansas+Entomological+Society%22%5BJournal%5D)">Production schedules of vespine wasps: an empirical test of the bang-bang optimization model.</a> Journal of Kansas Entomological Society. 57 (4), 545-568 (1984).</li>
<li>Cole, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+mating+and+the+evolution+of+social+behavior+in+the+Hymenoptera%5BTitle%5D)+AND+%22Behavior+Ecology+Sociobiology%22%5BJournal%5D)">Multiple mating and the evolution of social behavior in the Hymenoptera.</a> Behavior Ecology Sociobiology. 12, 191-201 (1983).</li>
<li>Goodisman, M. A. D., Kovacs, J. L., Hoffman, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+significance+of+multiple+mating+in+the+social+wasps+Vespula+maculifrons%5BTitle%5D)+AND+%22Evolution%22%5BJournal%5D)">The significance of multiple mating in the social wasps Vespula maculifrons.</a> Evolution. 61 (9), 2260-2267 (2007).</li>
<li>Greene, A. Dolichovespula and Vespula. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGreene%2C+A+%22The+Social+Biology+of+Wasps%22">The Social Biology of Wasps</a>. Ross, K. G., Matthews, R. W. , Cornell University Press. Ithaca, NY. 263-305 (1991).</li>
<li>Yamane, S., Yamane, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+methods+of+dead+vespine+nests+%28Hymenoptera%2C+Vespidae%29+%28Methods+of+taxonomic+and+bio-sociological+studies+on+social+wasps.+II%29%5BTitle%5D)+AND+%22Teaching+Materials+for+Biology%22%5BJournal%5D)">Investigating methods of dead vespine nests (Hymenoptera, Vespidae) (Methods of taxonomic and bio-sociological studies on social wasps. II).</a> Teaching Materials for Biology. 12, in Japanese 18-39 (1975).</li>
<li>Loope, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matricide+and+queen+sex+allocation+in+a+yellowjacket+wasp%5BTitle%5D)+AND+%22The+Science+of+Nature%22%5BJournal%5D)">Matricide and queen sex allocation in a yellowjacket wasp.</a> The Science of Nature. 103 (57), 1-11 (2016).</li>
<li>Matsuura, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMatsuura%2C+M+%22Social+Wasps+of+Japan+in+Color%22">Social Wasps of Japan in Color</a>. , Hokkaido University Press. Sapporo, Japan. in Japanese (1995).</li>
<li>Foster, K. R., Ratnieks, F. L. W., Gyllenstrand, N., Thoren, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colony+kin+structure+and+male+production+in+Dolichovespula+wasps%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Ecology%22%5BJournal%5D)">Colony kin structure and male production in Dolichovespula wasps.</a> Molecular Ecology. 10 (4), 1003-1010 (2001).</li>
<li>Loope, K. J., Chien, C., Juhl, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colony+size+is+linked+to+paternity+frequency+and+paternity+skew+in+yellowjacket+wasps+and+hornets%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Evolutionary+Biology%22%5BJournal%5D)">Colony size is linked to paternity frequency and paternity skew in yellowjacket wasps and hornets.</a> BMC Evolutionary Biology. 14 (1), 1-12 (2014).</li>
<li>Nonaka, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cultural+and+commercial+roles+of+edible+wasps+in+Japan%5BTitle%5D)+AND+%22Forest+Insects+as+Food%3A+Humans+Bite+Back.+Proceedings+of+a+workshop+on+Asia-Pacific+resources+and+their+potential+for+development%22%5BJournal%5D)">Cultural and commercial roles of edible wasps in Japan.</a> Forest Insects as Food: Humans Bite Back. Proceedings of a workshop on Asia-Pacific resources and their potential for development. , Chiang Mai, Thailand. 123-130 (2010).</li>
<li>Yamane, S. The unique ecology of Vespula shidai amamiana and the origin of distribution. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aYamane%2C+S+%22Ecological+Society+of+Japan.+Biodiversity+of+the+Nansei+Islands%2C+its+formation+and+conservation%22">Ecological Society of Japan. Biodiversity of the Nansei Islands, its formation and conservation</a>. Funakoshi, K. , in Japanese (2015).</li>
<li>R: The R Project for Statistical Computing. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.R-project.org/">https://www.R-project.org/</a> (2018).</li>
<li>Saga, T., Kanai, M., Shimada, M., Okada, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutual+intra-+and+interspecific+social+parasitism+between+parapatric+sister+species+of+Vespula+wasps%5BTitle%5D)+AND+%22Insectes+Sociaux%22%5BJournal%5D)">Mutual intra- and interspecific social parasitism between parapatric sister species of Vespula wasps.</a> Insectes Sociaux. 64 (1), 95-101 (2017).</li>
<li>Van Huis, A., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aVan+Huis%2C+A+%22Edible+insects%3A+future+prospects+for+food+and+feed+security%22">Edible insects: future prospects for food and feed security</a>. , Food and Agriculture Organization of the United Nations. Rome, Italy. (2013).</li>
</ol>

Autor nie ma nic do zdradzienia.

Produktywność kolonii pszczół, mrówek i os była wcześniej szacowana na podstawie liczby robotnic i komórek w gniazdach lub na podstawie masy gniazd 3,9,10. Badanie to pokazuje, że oszacowanie liczby mekonii zapewnia lepsze oszacowanie ogólnej liczby wyprodukowanych osobników (tj. lepszy wskaźnik produktywności kolonii). W rzeczywistości stwierdzono, że zarówno w przypadku grzebieni robotnic, jak i królowych, liczba meko...

Uważa się, że każdy gatunek wykształca optymalną strategię przetrwania i rozmnażania spośród ogromnego wachlarza możliwych strategii. W procesie doboru naturalnego osobniki posiadające cechy maksymalizujące sukces rozrodczy pozostawią więcej potomstwa (i genów) następnym pokoleniom. Zatem liczba potomstwa wyprodukowana przez osobnika może służyć jako wskaźnik jego względnej dostosowania ewolucyjnego. W określonym kontekście ekologicznym porównanie liczby potomstwa w odniesieniu do alternatywnych strategii behawioralnych może pomóc badaczom w przewidzeniu najlepszej strategii optymalizacji dostosowania1.
Społeczne błonkówki (takie jak osy, pszczoły i mrówki) posiadają system trzech różnych kast, którymi są robotnice (sterylne samice), królowe (gyny) oraz samce1W przypadku społecznych błonkoskrzydłych (Hymenoptera) do przystosowania wliczane są wyłącznie nowe królowe (gine) i samce. Produkcja robotnic nie przyczynia się bezpośrednio do przystosowania, ponieważ robotnice są bezpłodne. Z drugiej strony, za osobnik o wyższym przystosowaniu w społecznych błonkoskrzydłych uznaje się królową, która może zapewnić wyższą produktywność kolonii (np. większą całkowitą liczbę komórek lub cięższe gniazdo), niezależnie od liczby faktycznie wyprodukowanych nowych królowych i samców (patrz, np.,Tibbetts i Reeve2 oraz Mattila i Seeley3). W ogólności trudno jest precyzyjnie określić liczbę potomstwa wytworzonego przez kolonię społecznych błonkówek (Hymenoptera). W rzeczywistości królowe wielu owadów społecznych żyją ponad rok (np., królowe mrówek tnących mogą żyć &gt;20 lat4 a królowe pszczół miodnych mogą żyć do 8 lat5). Ponadto jedna królowa może wyprodukować tysiące potomstwa rozrodczego w ciągu kilku tygodni lub miesięcy, nawet w gatunkach jednorocznych z rodzajów Vespa i Vespula6,7,8Ponadto długość życia robotnic jest krótsza niż ich matki królowej, a robotnice często giną z dala od gniazd. W związku z tym, nawet gdyby można było dokładnie policzyć wszystkie osobniki dorosłe w gnieździe w dowolnym momencie, taki pomiar nie oddawałby precyzyjnie liczby wyprodukowanego potomstwa. Dlatego też liczbę wyprodukowanego potomstwa szacowano w przybliżeniu na podstawie wielkości gniazda, liczby robotnic w gnieździe lub wagi gniazda w danym momencie.3,9,10Liczba komórek z larwami może prowadzić do przeszacowania produkcji potomstwa w przypadku, gdy niektóre komórki są puste. Ta sama metoda może również skutkować potencjalnym niedoszacowaniem produkcji potomstwa, ponieważ plastry z małymi komórkami zawierającymi czerw robotnic może produkować dwie lub trzy kohorty larw.6,7,11.
Pierwszym celem niniejszej pracy jest przedstawienie ulepszonej metody szacowania produktywności kolonii os w rodzinie Vespinae w odniesieniu do liczby wyprodukowanych osobników dorosłych. Yamane i Yamane zasugerowali, że najlepszym sposobem szacowania liczby potomstwa wyprodukowanego przez kolonię jest zliczanie mekonium w gnieździe12. Mekonium to odchód składający się z kutykuli larwalnej, jelita oraz treści jelitowej, który larwa pozostawia w komórce podczas przepocierania (Rycina 1A). Całkowita liczba mekonium wyprodukowanych na plaster jest obliczana poprzez pomnożenie całkowitej liczby komórek przez średnią liczbę mekonium na komórkę. W jednej komórce często znajduje się kilka warstw mekonium, a każda z nich wskazuje na to, że dany osobnik pomyślnie przeszedł w stadium poczwarki w tej komórce6,11 (Rycina 1B). Podczas szacowania średniej liczby mekonium na komórkę, jeśli liczba badanych komórek jest mała (mała wielkość próby), błąd standardowy (SE) rośnie, w wyniku czego błąd dla całkowitej liczby mekonium na plaster staje się wyższy niż w przypadku większej próby. Błąd standardowy średniej (SEM) jest miarą rozproszenia średnich z próby wokół średniej populacyjnej. Dlatego w niniejszym badaniu skupiam się na SEM liczby mekonium na komórkę, aby oszacować populację (liczbę wyprodukowanych osobników dorosłych) na podstawie średniej z próby (średniej liczby mekonium na komórkę). Niniejsze badanie ma na celu ustalenie, ile próbek jest wymaganych do uzyskania poziomu SE mniejszego niż 0,05 na komórkę. W tym celu przeprowadzono symulację numeryczną z wykorzystaniem rzeczywistych danych dotyczących liczby mekonium na plaster, aby określić minimalną wielkość próby (zarówno dla plastrów robotnic, jak i królowych) niezbędną do dokładnego oszacowania tej wartości w zdefiniowanym zakresie SE wynoszącym 0,05.
Kolonie os w linii Vespinae żyją w ukrytych gniazdach (podziemnych lub nadziemnych), które składają się z wielu poziomych plastrów, budowanych seryjnie od góry do dołu6,7,11. Średnia wielkość oczek zwiększa się od pierwszego (górnego) do ostatniego (dolnego) plastra. W dolnych plastrach można zauważyć gwałtowną zmianę średniej wielkości oczek. Te szersze oczka są budowane w celu rozwoju nowych królowych. Zatem bardziej dokładną ocenę produktywności kolonii (t.j. liczby wyprodukowanych osobników) można uzyskać, biorąc pod uwagę całkowitą liczbę mekonium w oczkach robotniczych (małych oczkach) i oczkach królowych (dużych oczkach). Aby ocenić dostosowanie na poziomie kolonii, badacze mogliby oszacować liczbę wyprodukowanych królowych i skupić się wyłącznie na mekonium w oczkach królowych. Jeśli chodzi o samce rozrodcze, są one hodowane albo w oczkach robotniczych, albo w oczkach królowych, w zależności od gatunku. W związku z tym może być trudno oszacować produkcję samców w kolonii, z wyjątkiem gatunków, w których samce mają trzeci, unikalny rozmiar oczka13 (np., Dolichovespula arenaria).
Drugim celem niniejszej pracy jest przedstawienie użytecznej techniki lokalizowania w terenie dzikich kolonii os z rodzaju Vespula i ich przenoszenia do laboratoryjnych skrzyń gniazdowych. Chociaż niektórzy badacze pozyskują gniazda os z wezwań do deratyzacji i dezynsekcji (t.j., osoby zgłaszające je jako szkodniki14,15), ta metoda nie zawsze jest możliwa lub pożądana. Badacze mogą potrzebować zbierania gniazd na terenach dzikich i zamieszkanych, gdzie nie działają firmy zwalczające szkodniki, lub prowadzić badania, pozyskując gniazda w sposób bardziej elastyczny w określonych ramach czasowych. Co ciekawe, osoby zamieszkujące tereny górzyste w środkowej Japonii tradycyjnie zbierają i hodują osy (Vespula shidai, Vespula flavicepsi Vespula vulgaris) jako pokarm. W związku z tym w tych obszarach dobrze rozwinięte są techniki odłowu i sztucznej hodowli tych os.17.
Niniejszy artykuł podsumowuje również metody stosowane do hodowli Vespula osy. Organizmem eksperymentalnym w niniejszym badaniu był V. shidai, społeczna osa gniazdująca w ziemi, występująca w Azji Zachodniej i Japonii. V. shidai posiada największe kolonie spośród wszystkich japońskich os vespine, z łączną liczbą od 8 000 do 12 000 komórek na gniazdo, przy maksymalnej liczbie 33 400 komórek14,18Robotnice V. shidai mają średnią masę mokrą 67,62 ± 9,56 mg. Samce są zazwyczaj hodowane w komórkach robotniczych; z kolei nowe królowe są hodowane w specjalnie zbudowanych, szerszych komórkach matecznych14.
<img alt="Test naprężeń struktury plastra miodu; schemat przedstawiający analizę kompresji i deformacji." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59044/59044fig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rysunek 1"> 
Rysunek 1: Mekonium w komórce larwalnej. (A) Przekrój poprzeczny plastra Vespula shidai. Mekonia wskazano czerwonymi strzałkami. (B) Dwie warstwy mekonium. Każda niebieska strzałka wskazuje jedno mekonium. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59044/59044fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>

<table><tbody><tr><td>Mątwy</td><td>Dowolna</td><td></td><td>świeża/ jako przynęta</td></tr><tr><td>jelec</td><td>Dowolna</td><td></td><td>świeża/ jako przynęta</td></tr><tr><td>chichken heart</td><td>Dowolna</td><td></td><td>świeża/ jako plastikowa torba na przynętę</td></tr><tr><td>(polietylen)</td><td>Dowolna</td><td></td><td>jako</td></tr><tr><td>flagowy bambusowy szpikulec</td><td>Dowolna</td><td></td><td></td></tr><tr><td>przemysłowa nić do szycia</td><td>FUJIX Ltd.</td><td>Król poliester, marker olejowy nr 100</td><td></td></tr><tr><td></td><td>ołówek Mitsubishi</td><td>UNI, POSCA, PC5M</td><td></td></tr><tr><td>wędka</td><td>DOWOLNA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>skrzynka transportowa</td><td></td><td></td><td>wykonana z drewna</td></tr><tr><td>budka</td><td></td><td></td> lęgowa <td>wykonana z drewna</td></tr></tbody></table>

ocena produktywności kolonii os społecznych (vespinae) i wprowadzenie do tradycyjnej japońskiej techniki polowania na osy vespula

Evaluation of the Productivity of Social Wasp Colonies (Vespinae) and an Introduction to the Traditional Japanese Vespula Wasp Hunting Technique

Dla os vespine, produktywność kolonii jest zazwyczaj szacowana poprzez liczenie liczby komórek larwalnych. W artykule przedstawiono ulepszoną metodę, która umożliwia naukowcom dokładniejsze oszacowanie liczby wyprodukowanych osobników dorosłych, licząc liczbę mekonii (stolców pozostawionych w komórkach przez larwy os podczas przepoczwarzania się w dorosłe osobniki, na 100 komórek) w każdym plastrze. Metoda ta może być stosowana przed lub po załamaniu się rodziny (tj. w gniazdach aktywnych lub nieaktywnych). Artykuł opisuje również, jak zlokalizować dzikie kolonie os Vespula poprzez "oznaczanie" przynęt na osy i ściganie osy, która je zbiera, przy użyciu metody tradycyjnie stosowanej przez lokalną ludność w środkowej Japonii (jak pokazano na powiązanym filmie). Opisana metoda pogoni Vespula ma kilka zalet: łatwo jest ponownie zainicjować pościg z punktu, w którym zgubił się zbieracz lecący z powrotem do gniazda, a także łatwo jest wskazać lokalizację gniazda, ponieważ oznaczone osy często gubią flagę przy wejściu do gniazda. Te metody szacowania produktywności kolonii i zbierania gniazd mogą być cenne dla naukowców badających osy społeczne.

Jednym z celów niniejszego badania było określenie liczby próbek wymaganych do uzyskania błędu standardowego średniej (SEM) dla liczby mekonium na komórkę, który wynosiłby mniej niż 0,05. W badaniu plastry o średniej wielkości komórki &lt;20 mm2 zdefiniowano jako plastry robotnicze, natomiast większe plastry zdefiniowano jako plastry królowe. Policzono liczbę komórek dla plastrów królowych i robotniczych (w badaniu dokonano obliczeń dla sześciu plastrów królowych i sześciu plas...

Ten artykuł metodologiczny ocenia produktywność kolonii os społecznych, badając liczbę mekonii na 100 komórek grzebienia, aby oszacować całkowitą liczbę dorosłych os, które wyprodukowały. Powiązany film opisuje, jak szukać gniazd os Vespula, metody opracowanej przez amatorskich łowców os.

Ocena produktywności kolonii os społecznych (Vespinae) i wprowadzenie do tradycyjnej japońskiej techniki polowania na osy Vespula

For vespine wasps, colony productivity is typically estimated by counting the number of larval cells. This paper presents an improved method that enables ...

Ponieważ kolonii os Vespula nie można zwabić z popiersi, gniazda należy zbierać na wolności. Tutaj pokazuję tradycyjne polowanie na osy, które zostało rozwinięte w kulturze japońskiej. Podążając za osami do ich gniazd, technika ta może pomóc we wznowieniu lokalizacji gniazda od punktu, w którym osa uniknęła wykrycia.Aby zwabić vespulę, zawieś 10-gramowe kawałki nieoflagowanej przynęty na gałęzi drzewa na wysokości, do której można łatwo dotrzeć ręcznie wzdłuż transektu w odległości od 500 do 100 stacji, z zachowaniem co najmniej 5 metrów między każdą stacją. Czekając na osy, użyj nożyczek, aby pociąć plastikowe torby polietylenowe na paski o szerokości od trzech do pięciu milimetrów i długości 15 centymetrów. I pokrój mątwy, ryby słodkowodne lub serca kurczaka na 10 miligramowe kawałki.Następnie przywiąż jeden koniec bardzo cienkiej nici poliestrowej do jednego plastikowego paska, a drugi koniec do jednego kawałka mięsa. Następnie odetnij luźną nić nad węzłami. przed zamontowaniem przynęty na poszczególnych bambusowych szaszłykach, Gdy osy zaczną zbliżać się do wiszącej przynęty, przytrzymaj oflagowaną przynętę na bambusowych szaszłykach, aby umożliwić łatwiejszy dostęp do żerujących os.Podczas gdy osy gryzą przynętę, użyj pisaka na bazie wody, aby namalować unikalny znak na klatce piersiowej każdej osy. Ustaw flagę z nitką pod osą, podczas gdy gryzie oflagowaną przynętę, tak aby nić przechodziła pod brzuchem osy od dołu jej klatki piersiowej. Po zidentyfikowaniu osy, która wielokrotnie wraca do przynęty w ciągu czterech minut od opuszczenia obiektu, zbierz przynęty z okolicznych obszarów, aby powracająca osa z większym prawdopodobieństwem wróciła w to samo miejsce i podążała za oznaczoną osą, która Cię interesuje.Kiedy podążana za nią osa wyląduje gdzieś w drodze do swojego gniazda, delikatnie podnieś osę długim kijem lub wędką i obserwuj osę, aż wznowi lot. Jeśli osa uciekła wykryciu, gdy była śledzona, poczekaj, aż osa powróci do stacji przynęty na transekcie przed wznowieniem pościgu i przenieś kij przynęty i osę do punktu, w którym osa po raz ostatni uciekła wykryciu. Żerujące osy nie wypuszczają łatwo swoich przynęt i nie żądlą, jeśli są delikatnie traktowane, dlatego można je przenieść w żądane miejsce, trzymając flagę bez ucieczki osy.Po zlokalizowaniu gniazda załóż odpowiednią odzież ochronną i zbierz jak najwięcej robotnic do gniazda, energicznie tupiąc po ziemi wokół gniazda przez 10 do 20 minut, aby robotnice pozostały w środku i chroniły gniazdo. Kiedy wszystkie osy powrócą do gniazda, skieruj światło bezpośrednio do wejścia do gniazda, aby określić kierunek, w którym biegnie wejście do gniazda i użyj palca, aby potwierdzić orientację otworu gniazdowego, delikatnie wykopując ziemię z okolic gniazda. Kiedy osy się uspokoją, umieść wykopane gniazdo w drewnianym, specjalnie wykonanym pudełku do przenoszenia i przykryj wszystko, oprócz górnej części gniazda, gałęziami i gazetą.Aby oszacować liczbę komórek na grzebień, oddziel grzebienie jeden po drugim i zmieść wszystkie dorosłe osy z grzebienia. Użyj pęsety, aby wyciągnąć wszystkie larwy i poczwarki z komórek i umieść odniesienie do skali na grzebieniu. Zrób zdjęcie grzebienia z góry i otwórz obraz w ImageJ.Zmierz kwadratowe obszary dziesięciu losowo wybranych komórek na grzebień w pikselach i przekonwertuj pomiary na rzeczywiste obszary. Następnie podziel obszar każdego grzebienia przez średnią powierzchnię komórek na grzebień, aby oszacować liczbę robotnic i mateczników. Aby policzyć liczbę mikonii na 100 komórek dla każdego grzebienia, ostrożnie rozbij grzebień i zbadaj mikonia.Mikonia mogła zestalić się na dwie lub więcej warstw w komórkach. W tym badaniu grzebień o średniej komórce mniejszej niż 20 milimetrów kwadratowych został zdefiniowany jako grzebień robotnicy, a większe grzebienie zdefiniowano jako grzebienie królowej. Po zliczeniu liczby komórek dla grzebieni królowej i robotnic, rzeczywistą liczbę komórek na grzebień można oszacować poprzez ekstrapolację.Korzystając z rzeczywistych danych, średnią i odchylenie standardowe liczby mikonów na komórkę można obliczyć przy użyciu liczby próbek ustawionej na 1000 dla każdej wielkości próbki. Analiza ta wykazała, że błąd standardowy średniej był mniejszy niż 0,05, gdy wielkość próby wynosiła 100 komórek zarówno dla grzebieni robotnic, jak i królowej. Rzeczywista liczba mikonii w komórkach grzebieni robotnic, która reprezentuje liczbę wyprodukowanych robotnic, wahała się od 1,96 razy więcej niż szacowana liczba komórek larwalnych do 0,89 razy mniej niż szacowana liczba komórek.U królowych grzebieni rzeczywista liczba komórek była często mniejsza niż szacowana liczba komórek. Liczba mikonii w grzebieniach królowej, które mogą reprezentować składnik przystosowania, była od 0,69 do 1,97 razy większa niż szacowana liczba komórek. Jeśli osa uniknie wykrycia, gdy będzie śledzona, kij z przynętą może zostać przeniesiony do punktu, w którym osa była ostatnio obserwowana.Flagi można również przymocować bezpośrednio do ciał os o dużych rozmiarach ciała, aby pomóc w lokalizacji gniazda. Ta metoda nie tylko ułatwia znajdowanie gniazd os, ale może również pomóc naukowcom w analizie zachowań naprowadzających osy. Zawsze upewnij się, że nikogo innego nie ma w pobliżu gniazda przed zbliżeniem się, aby zapobiec atakom innych gości.Usuń robotnice po zebraniu gniazda.

evaluation-productivity-social-wasp-colonies-vespinae-an-introduction

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

Osy pasożytnicze stanowią główną grupę naturalnych wrogów wielu owadów, w tym Drosophila melanogaster. Przedstawimy techniki rozmnażania tych pasożytów w gatunkach Drosophila spp. oraz zademonstrujemy sposób analizy ich wpływu na tkanki odpornościowe larw Drosophila.

Wprowadzenie do os w pasożytach Drosophila i odpowiedzi immunologicznej przeciwpasożytniczej

Mikroiniekcja zarodków Nasonia vitripennis jest podstawową metodą generowania dziedzicznych modyfikacji genomu. Opisano tutaj szczegółową procedurę mikroiniekcji i przeszczepu zarodków Nasonia vitripennis, która znacznie ułatwi przyszłą manipulację genomem w tym organizmie.

Technika mikroiniekcji i przeszczepu zarodka w celu manipulacji genomem nosa vitripennis

Chociaż wiele owadów z podrzędu Heteroptera (Insecta: Hemiptera) jest jadowitych, ich skład jadu i funkcje toksyn jadowych są w większości nieznane. Protokół ten opisuje metody zbierania jadów heteropterów w celu dalszej charakterystyki, przy użyciu elektrostymulacji, nękania i sekcji gruczołów.

Zbieranie toksyn jadowych z robaków zabójców i innych owadów heteroptera

W tym protokole, metody przeprowadzania krzyżówek wsobnych i oceny sukcesu tych krzyżówek, są opisane dla mrówki Vollenhovia emeryi. Protokoły te są ważne dla eksperymentów mających na celu zrozumienie genetycznych podstaw systemów determinacji płci u błonkoskrzydłych.

Indukcja i ocena krzyżówek wsobnych z wykorzystaniem mrówki, Vollenhovia emeryi

Tutaj opisujemy metody efektywnych iniekcji poczwarek i dorosłych osobników w Nasonia vitripennis jako dostępne alternatywy dla mikroiniekcji zarodków, umożliwiając funkcjonalną analizę interesujących genów za pomocą wyciszania RNA poprzez interferencję RNA (RNAi) lub nokautowania genów za pomocą edycji genomu CRISPR/Cas9.

Zastrzyki z poczwarek i dorosłych osobników do edycji genów RNAi i CRISPR w nosonia vitripennis

Ganaspis brasiliensis - larwalny parazytoid Drosophila suzukii (globalny inwazyjny szkodnik upraw owocowych) - został zatwierdzony lub jest rozważany do wprowadzenia do Europy i Stanów Zjednoczonych w celu biologicznego zwalczania tego szkodnika. W tym artykule przedstawiono protokoły hodowli tego parazytoida zarówno na małą, jak i dużą skalę.

Metody hodowli parazytoida Ganaspis brasiliensis, obiecującego środka kontroli biologicznej inwazyjnej Drosophila suzukii

Zarodki osy Nasonia zostały wypreparowane z poczwarek Lucillia sericata po pasożytowaniu przez 12-24 godziny i przemyte alkoholem i 10% roztworem podchlorynu sodu w celu uzyskania wolnych od zarazków zarodków. Po wyhodowaniu zarodków wolnych od zarazków i dostarczeniu im podłoża hodowlanego Nasonia do wzrostu i rozwoju in vitro, uzyskano dorosłe osobniki Nasonia wolne od zarazków.

Optymalizacja procedury chowu os wolnych od zarazków

Tutaj prezentujemy protokół ekstrakcji jadu z Trichogramma dendrolimi za pomocą sztucznego gospodarza stworzonego z folii polietylenowej i roztworu aminokwasów.

Ekstrakcja jadu z pasożytniczej osy Trichogramma dendrolimi przy użyciu sztucznego żywiciela

Pokazujemy sprawdzoną metodę bezpiecznego obchodzenia się z pszczołami zebranymi na polu. Metoda ta umożliwia szybką manipulację, identyfikację, pobieranie próbek genetycznych i potwierdzanie interakcji między roślinami a owadami za pomocą pyłku pobranego podczas pobierania próbek. Podejście to, łatwe do adaptacji, oferuje opłacalny, nieśmiercionośny sposób badania rzadkich grup owadów.

Szybka metoda ograniczania i bezpiecznego obchodzenia się z pszczołami w terenie

Celem tego protokołu jest ułatwienie analizy funkcjonalnej interakcji parazytoid-gospodarz w Asobara japonica i Drosophila melanogaster poprzez zoptymalizowane metody chowu, pojedynczy test infekcji jajorodności i wyciszenia genu z wykorzystaniem RNAi.

Protokoły efektywnego hodowania i analizy funkcjonalnej endoparazitoida Asobara japonica oraz jego żywiciela Drosophila melanogaster

Poznaj tradycyjną japońską metodę polowania na osy Vespula i oceny produktywności kolonii społecznych poprzez liczenie mekoniów w plastrach. Technika ta umożliwia badaczom skuteczne lokalizowanie gniazd dziko żyjących os.

Ocena produktywności kolonii os społecznych (Vespinae) i wprowadzenie do tradycyjnej japońskiej techniki polowania na osy Vespula (Wideo) | JoVE Journal

Ocena produktywności kolonii os społecznych (Vespinae) i wprowadzenie do tradycyjnej japońskiej techniki polowania na osy Vespula

Przeglądaj więcej filmów