Name: Trzy procedury laboratoryjne do oceny różnych objawów impulsywności u szczurów (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-03-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 12 s
Description: Poznaj trzy procedury laboratoryjne do oceny impulsywności u szczurów, w tym wybór międzyczasowy i inhibicję odpowiedzi. Metody te pozwalają badać podstawy neurofizjologiczne i neurochemiczne impulsywności oraz jej związki z zaburzeniami psychicznymi u ludzi.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Chcielibyśmy podziękować Florencii Mata, Maríi Elenie Chávez, Miguelowi Burgosowi i Alejandro Tapii za pomoc techniczną. Pragniemy również podziękować Sarah Gordon Frances za jej przydatne komentarze do poprzedniego szkicu tego artykułu oraz Vladimirowi Orduña za uprzejme udostępnienie surowych danych z opublikowanego artykułu. Podziękowania dla Claudio Nallena za stworzenie diagramu na rysunku 1. Jesteśmy wdzięczni Dirección de Investigación Universidad Iberoamericana Ciudad de México za sfinansowanie usług korekty/edycji oraz koszty produkcji wideo.

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Niniejszy artykuł zawiera opis różnych różnych protokołów badania przesiewowego impulsywności u szczurów. Twierdzi się, że te konkretne protokoły są preferowane ze względu na łatwość programowania i analizy danych oraz wymagają mniejszej liczby urządzeń operacyjnych i stymulacyjnych niż inne dostępne alternatywy. Istnieje kilka kluczowych kroków dla skutecznego wdrożenia tych protokołów, takich jak (1) uzyskanie pytania badawczego, (2) wybór odpowiedniego projektu badania, (3) zaprogramowanie wybranego protokołu, (4) prz...

Impulsywność można zdefiniować jako wymiar behawioralny związany z nieadaptacyjnymi rezultatami1. Pomimo powszechnego stosowania tego terminu, nie istnieje uniwersalny konsensus co do jego precyzyjnej definicji. W rzeczywistości wielu autorów definiowało impulsywność, podając przykłady zachowań impulsywnych lub ich konsekwencji, zamiast określać, jakie charakterystyczne aspekty rządzą tym zjawiskiem. Przykładowo, przyjmuje się, że impulsywność wiąże się z niezdolnością do czekania, planowania, hamowania zachowań dominujących lub z niewrażliwością na odroczone rezultaty2, a także uznaje się ją za kluczowy czynnik podatności na zachowania uzależniające3. Bari i Robbins4 scharakteryzowali impulsywność jako współwystępowanie silnych impulsów, wyzwalanych przez zmienne dyspozycyjne i sytuacyjne, oraz dysfunkcyjnych procesów hamowania. Inną definicję podali Dalley i Robbins, stwierdzając, że impulsywność można uznać za predyspozycję do szybkich, często przedwczesnych działań bez odpowiedniego wglądu5. Jeszcze inna definicja impulsywności, zaproponowana przez Sosę i dos Santos6, określa ją jako tendencję behawioralną, która odchyla organizm od maksymalizacji dostępnych nagród ze względu na nabytą kontrolę nad reakcjami organizmu, sprawowaną przez bodźce przypadkowo związane z tymi nagrodami.
Ze względu na procesy behawioralne związane z impulsywnością, jej substrat neurofizjologiczny obejmuje struktury wspólne dla zachowań motywowanych, podejmowania decyzji oraz oceny nagrody. Potwierdzają to badania wykazujące, że struktury szlaku korowo-prążkowiowego (np. jądro półleżące [NAc], kora przedczołowa [PFC], ciało migdałowate i jądro ogoniaste oraz skorupa [CPU]), a także wstępujący monoaminergiczny system neurotransmiterów, uczestniczą w ekspresji zachowań impulsywnych7. Jednakże neuralny substrat impulsywności jest bardziej złożony. Choć NAc i PFC są zaangażowane w zachowania impulsywne, struktury te stanowią część bardziej złożonego systemu i składają się z podstruktur o różnych funkcjach (bardziej szczegółową dokumentację można znaleźć u Dalley i Robbinsa5).
Niezależnie od kontrowersji dotyczących jego natury i podłoża biologicznego, wiadomo, że ten wymiar behawioralny różni się między osobnikami, w którym przypadku można go uznać za cechę, oraz w obrębie jednego osobnika, w którym przypadku można go uznać za stan8. Impulsywność od dawna jest uznawana za cechę niektórych schorzeń psychiatrycznych, takich jak zespół nadpobudliwości z deficytem uwagi (ADHD), nadużywanie substancji psychoaktywnych oraz epizody maniakalne9. Wydaje się istnieć wysoki konsensus co do tego, że impulsywność składa się z wielu rozdzielnych czynników, w tym niechęci do czekania (tj. dyskontowania opóźnienia), niezdolności do powstrzymania reakcji dominujących (tj. deficytu hamowania), trudności w koncentracji na istotnych informacjach (tj. nieuwagi) oraz tendencji do angażowania się w ryzykowne sytuacje (tj. poszukiwania doznań)5,10,11. Każdy z tych czynników można ocenić za pomocą specjalnych zadań behawioralnych, które zazwyczaj przypisuje się do dwóch szerokich kategorii: wyboru i hamowania reakcji (mogą one mieć różne nazwy w zależności od taksonomii poszczególnych autorów). Istotnymi cechami takich zadań behawioralnych jest to, że mogą one być stosowane u wielu gatunków zwierząt2 oraz że umożliwiają badanie impulsywności w kontrolowanych warunkach laboratoryjnych.
Modelowanie wymiaru behawioralnego na zwierzętach laboratoryjnych wykazuje szereg zalet, w tym możliwość pomiaru konkretnych, zoperacjonalizowanych tendencji behawioralnych, co pozwala badaczom w znacznym stopniu ograniczyć zmienne zakłócające (np. wpływ przeszłych zdarzeń życiowych4) oraz wprowadzić manipulacje eksperymentalne, takie jak przewlekła podaż farmakologiczna, wykonywanie uszkodzeń neurotoksycznych lub manipulacje genetyczne. Większość tych protokołów posiada wersje analogiczne dla ludzi, co ułatwia przeprowadzanie porównań5. Co istotne, stosowanie analogów tych protokołów laboratoryjnych u ludzi jest skuteczną pomocą w diagnozowaniu zaburzeń psychiatrycznych, takich jak ADHD (zwłaszcza gdy zastosowano więcej niż jeden protokół12).
Podobnie jak każdy inny pomiar psychologiczny, protokoły laboratoryjne służące do oceny impulsywności muszą spełniać określone kryteria, aby osiągnąć cel zapewnienia wglądu w badane zjawisko. Aby protokół laboratoryjny mógł zostać uznany za odpowiedni model zachowania impulsywnego, powinien być on rzetelny oraz posiadać (przynajmniej w pewnym stopniu) trafność treściową, teoretyczną i/lub prognostyczną13. Rzetelność może oznaczać albo to, że efekt pomiaru powtórzy się, jeśli manipulacja zostanie przeprowadzona dwa lub więcej razy, albo to, że pomiar jest spójny w czasie lub w różnych sytuacjach14,15. Pierwsza z tych cech byłaby szczególnie użyteczna w badaniach eksperymentalnych, natomiast druga w badaniach korelacyjnych14. Trafność treściowa odnosi się do stopnia, w jakim mierzona cecha przypomina zjawisko, które ma być modelowane, na przykład poprzez bycie pod wpływem tych samych zmiennych. Trafność prognostyczna odnosi się do zdolności pomiaru do przewidywania przyszłych wyników w protokołach, których celem jest pomiar tego samego lub powiązanego konstruktu. Wreszcie, trafność teoretyczna odnosi się do tego, czy protokół odtwarza zachowanie, które jest teoretycznie uzasadnione w odniesieniu do procesu lub procesów, które zakłada się, że są zaangażowane w badane zjawisko. Jednakże, mimo że są to cechy wysoce pożądane, należy zachować ostrożność przy stwierdzaniu, że protokół jest trafny wyłącznie na podstawie tych kryteriów16.
Istnieje kilka protokołów służących do pomiaru impulsywności w warunkach laboratoryjnych. Niniejszy artykuł przedstawia jednak tylko trzy takie metody: wybór intertemporalny, różnicowe wzmacnianie niskich częstotliwości oraz dyskryminację cech negatywnych. Procedury intertemporalne mają na celu ocenę komponentu impulsywności związanego z dyskontowaniem opóźnienia (tj. trudnością w kontrolowaniu zachowania przez odroczone wyniki). Podstawą tego protokołu jest skonfrontowanie badanych z dwiema nagrodami różniącymi się zarówno wielkością, jak i czasem oczekiwania17. Jedna z alternatyw oferuje małą natychmiastową nagrodę (określaną jako mniejsza wcześniej, SS), a druga większą, ale odroczoną nagrodę (określaną jako większa później, LL). Proporcja odpowiedzi na alternatywę SS może być wykorzystywana jako wskaźnik impulsywności18. W procedurach różnicowego wzmacniania niskich częstotliwości ocenianym czynnikiem impulsywności jest hamowanie odpowiedzi (tj. niezdolność do powstrzymania odpowiedzi prepotentnych) w sytuacji, gdy niewłaściwa odpowiedź wiąże się z warunkowaniem kary negatywnej. Podstawą tego protokołu jest wprowadzenie badanych w sytuację, w której jedynym sposobem uzyskania nagród jest zaprzestanie reagowania19. Wreszcie, procedura dyskryminacji cech negatywnych ocenia hamowanie odpowiedzi w sytuacji, gdy nie występuje wyraźna kara za niewłaściwe reagowanie. Podstawą tego protokołu (znanego również jako Pawłowowskie hamowanie warunkowe lub procedura A+/AX-) jest ocena zdolności badanych do powstrzymywania niepotrzebnych odpowiedzi20.
Procedury te wyróżniają się na tle innych kilkoma wygodnymi cechami. Na przykład przedstawione tutaj procedury nadają się do przeprowadzania w minimalnie wyposażonych komorach warunkowania (znanych również jako „skrzynka Skinnera”). Rysunek 1 przedstawia schemat typowej komory warunkowania. Komory warunkowania są użytecznymi instrumentami badawczymi ze względu na szereg zalet. Pozwalają one na zautomatyzowany zbiór stosunkowo dużej ilości danych, maksymalizując liczbę badanych obiektów w tej samej jednostce czasu i przestrzeni21. Co więcej, badania behawioralne prowadzone w komorach warunkowania wymagają minimalnej interwencji badacza, co zmniejsza nakład czasu i pracy personelu laboratoryjnego, w przeciwieństwie do innych dostępnych metod (np. nieautomatycznych labiryntów w kształcie litery T, pudełek do przesunięcia zestawu [set-shifting boxes])21. Minimalizacja interwencji badaczy pomaga również w redukcji błędu poznawczego badacza, zmniejsza wpływ krzywej uczenia się personelu oraz ogranicza stres wywołany kontaktem z człowiekiem22. Typowe komory warunkowania są w znacznym stopniu standaryzowane pod kątem użytkowania z gryzoniami średniej wielkości, takimi jak szczury (R. norvegicus), ale mogą być stosowane do badania innych taksonów, np. torbaczy o podobnej wielkości (np. D. albiventris* i L. crassicaudata23). Dostępne są również komercyjne komory warunkowania przystosowane dla gatunków mniejszych (np. myszy [M. musculus]) oraz większych (np. naczelnych). Konfiguracja i przeprowadzanie protokołów przedstawionych w tym artykule wymagają minimalnych umiejętności programistycznych i niewielkiej liczby dostępnych urządzeń wejścia i wyjścia, w przeciwieństwie do bardziej zaawansowanych metod alternatywnych (np. zadania z seryjnym czasem reakcji z 5 wyborami [5-CSRTT]24 oraz śledzenia sygnałów [sign-tracking]25).
<img alt="Schemat koncepcji równowagi statycznej; przedstawia wektory sił w pudełku, układ eksperymentalny dynamiki przepływu." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59070/59070fig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="Rycina 1"> 
Rycina 1: Schemat prototypu komory warunkowania. Główne elementy komory warunkowania obejmują: (1) lewar lewy, (2) pojemnik na pokarm (wyposażony w boczne diody podczerwieni do wykrywania wkładania głowy), (3) światło skupione, (4) głośnik do emisji sygnału dźwiękowego (widok z tyłu), (5) światło pokojowe (widok z tyłu), (6) dozownik pokarmu. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59070/59070fig1large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.</a>

<table><tbody><tr><td>25-pinowe</td><td>Med Associates</td><td>SG-213F</td><td>Podłącz inteligentne karty sterujące do inteligentnych paneli sterowania</td></tr><tr><td>40-pinowy taśmowy</td><td>Med Associates</td><td>DIG-700C</td><td>Łączy komputer z szafą interfejsu</td></tr><tr><td>Komputer</td><td>Dell Computer Company</td><td>T8P8T-7G8MR-4YPQV-96C2F-7THHB</td><td>Do sterowania i monitorowania procesów protokołów</td></tr><tr><td>dyrygenckie</td><td>Med Associates</td><td>SG-210CP-8</td><td>Dostarcza zasilanie do inteligentnych paneli sterowania za pośrednictwem zasilacza do montażu w szafie</td></tr><tr><td>Dozownik żywności z cokołem</td><td>Med Associates</td><td>ENV-203M-45 (12937)</td><td>Cicho dostarcza granulki spożywcze 45 mg&nbsp;</td></tr><tr><td>Detektor wejścia w głowę</td><td>Med Associates</td><td>ENV-254-CB</td><td>Wykorzystuje wiązkę światła podczerwonego do wykrywania wejścia głowy do pojemnika na żywność</td></tr><tr><td>House</td><td>Light Med Associates</td><td>ENV-215M</td><td>Do zapewniania&nbsp; rozproszonego oświetlenia wewnątrz komory&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Interfejs Cabinet</td><td>Med Associates</td><td>SG-6080D</td><td>Pod, który może pomieścić do ośmiu inteligentnych kart sterujących</td></tr><tr><td>Med-PC IV Software</td><td>Med Associates</td><td>SOF-735</td><td>Tłumaczenie kodów na polecenia dla wyjść operacyjnych i rejestrowania/przechowywania informacji wejściowych</td></tr><tr><td>Generator wielotonowy&nbsp;</td><td>Med Associates</td><td>ENV-223 (597)</td><td>Do kontrolowania częstotliwości tonów</td></tr><tr><td>Wypełniacze paneli</td><td>Med Associates</td><td>ENV-007-FP</td><td>Do wypełniania ścian modułowych, gdy urządzenia nie są używane</td></tr><tr><td>Pojemnik na pelety</td><td>Med Associates</td><td>ENV-200R2M</td><td>Odbiera i przechowuje granulki spożywcze dostarczane przez dozownik</td></tr><tr><td>Zasilacz do montażu w szafie</td><td>Med Associates</td><td>DIG-700F</td><td>Dostarcza energię do Szafa interfejsowa</td></tr><tr><td>Wysuwana dźwignia</td><td>Med Associates</td><td>ENV-112CM (10455)</td><td>Wykrywa reakcje naciśnięcia dźwigni; wysuwa się do komory lub chowa w razie potrzeby</td></tr><tr><td>Inteligentne karty kontrolne</td><td>Med Associates</td><td>DIG-716</td><td>Steruje maksymalnie ośmioma wejściami i czterema wyjściami komory kondycjonowania&nbsp;</td></tr><tr><td>Inteligentne panele sterowania</td><td>Med Associates</td><td>SG-716 (3341)</td><td>Podłącz karty inteligentne do urządzeń w komorach kondycjonujących</td></tr><tr><td>Głośnik&nbsp;</td><td>Med Associates</td><td>ENV-224AM</td><td>Do dostarczania tonów wewnątrz komory</td></tr><tr><td>Standardowe komory modułowe dla Rat</td><td>Med Associates</td><td>ENV-008</td><td>Wykonane z aluminiowych kanałów przeznaczone do utrzymywania urządzeń modułowych&nbsp;</td></tr><tr><td>Standardowe powłoki izolujące dźwięk, światło i temperaturę</td><td>Med Associates</td><td>ENV-022MD</td><td>Służą do przechowywania każdej komory kondycjonowania</td></tr><tr><td>Stimulus Light</td><td>Med Associates</td><td>ENV-221M</td><td>Do dostarczania okrągłego ogniskowego bodźca świetlnego</td></tr> Trzy <tr><td>pinowe</td><td>Med Associates</td><td>SG-216A-2</td><td>Łączy inteligentny panel sterowania z każdym z urządzeń wejściowych i wyjściowych w komorach kondycjonowania</td></tr></tbody></table>

trzy procedury laboratoryjne do oceny różnych objawów impulsywności u szczurów

Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats

Niniejszy artykuł zawiera przewodnik do przeprowadzania i analizy trzech protokołów opartych na warunkowaniu do oceny impulsywności u szczurów. Impulsywność jest znaczącym pojęciem, ponieważ jest związana z zaburzeniami psychicznymi u ludzi i z nieprzystosowawczym zachowaniem u zwierząt innych niż ludzie. Uważa się, że impulsywność składa się z oddzielnych czynników. Istnieją protokoły laboratoryjne opracowane w celu oceny każdego z tych czynników przy użyciu znormalizowanego zautomatyzowanego sprzętu. Dyskontowanie opóźnień wiąże się z niezdolnością do motywowania się opóźnionymi wynikami. Czynnik ten jest oceniany za pomocą protokołów wyboru międzyokresowego, które polegają na przedstawieniu osobie sytuacji wyboru obejmującej natychmiastową nagrodę i większą, ale opóźnioną nagrodę. Deficyt hamowania odpowiedzi wiąże się z niezdolnością do powstrzymania silnych reakcji. Protokoły różnicowego wzmacniania niskich wskaźników (DLR) i dyskryminacji negatywnej cech oceniają czynnik deficytu hamowania odpowiedzi impulsywności. Pierwsza z nich narzuca zmotywowanej osobie warunek, w którym większość czeka minimalny okres czasu na odpowiedź, która ma zostać nagrodzona. Ta ostatnia ocenia zdolność osobników do powstrzymania się od reakcji związanych z poszukiwaniem pożywienia, gdy prezentowany jest sygnał braku pożywienia. Celem tych protokołów jest skonstruowanie obiektywnej ilościowej miary impulsywności, która służy do dokonywania porównań międzygatunkowych, umożliwiając badania translacyjne. Do zalet tych konkretnych protokołów należy ich łatwa konfiguracja i aplikacja, co wynika ze stosunkowo niewielkiej ilości potrzebnego sprzętu oraz zautomatyzowanego charakteru tych protokołów.

Trzy protokoły opisane w niniejszym artykule mogą być przeprowadzane osobno lub w połączeniu z innymi procedurami; zależy to od pytania badawczego, które z kolei determinuje plan badania. Przykłady planów badań kompatybilnych z tymi protokołami to: (1) badania szeregów czasowych, których celem jest opisanie podłużnych zmian w wynikach; (2) kwantyfikacja zmienności indywidualnej, mająca na celu określenie niezawodności pomiarów; (3) przekrojowe badania korelacyjne, których celem jest ocena...

Przedstawiamy trzy protokoły, które oceniają różne formy impulsywności u szczurów i innych małych ssaków. Procedury wyboru międzyokresowego oceniają tendencję do dyskontowania wartości opóźnionych wyników. Zróżnicowane wzmocnienie niskich wskaźników i dyskryminacja cechowo-negatywna oceniają zdolność hamowania reakcji odpowiednio z karą i bez kary za niewłaściwe reakcje.

Trzy procedury laboratoryjne do oceny różnych objawów impulsywności u szczurów

The present article provides a guide for the conduction and analysis of three conditioning-based protocols to evaluate impulsivity in rats. Impulsivity is ...

Przeprowadzanie procedur behawioralnych w celu oceny impulsywności u szczurów zapewnia wgląd w środowiskowe, neurofizjologiczne i neurochemiczne podstawy impulsywności, czyli w czynniki, które wyzwalają i leżą u podstaw tych zachowań. Protokół ten pozwala na badanie impulsywności z dobrą równowagą wydajności i dostępności oraz instrukcje dotyczące danych odpowiednich do analizy ilościowej. Wydajność w tych protokołach może być uważana za analogię impulsywności u ludzi.W związku z tym ich ludzkie wersje służą do diagnozowania i leczenia powiązanych zaburzeń psychicznych, takich jak ADHD lub patologiczny hazard. Procedurę z Patsy Moreno zademonstrują Gustavo Lago, technik, i Pablo Saavedra, student studiów licencjackich z naszego laboratorium. Po rozpoczęciu reżimu ograniczania żywności, dodaj 60 granulek żywności do pojemnika na żywność, aby przyzwyczaić się do neofobii żywieniowej przed wprowadzeniem szczurów do komór kondycjonujących bez inicjowania jakiegokolwiek protokołu na 30 minut, aby przyzwyczaić się do reakcji eksploracyjnych.Po etapie przyzwyczajenia wprowadź szczury do komór kondycjonujących na dwie dodatkowe codzienne 30-minutowe sesje dostarczania granulki pokarmowej co 45 sekund, aby pomóc szczurom zidentyfikować źródło granulek. W celu wyboru międzyokresowego i różnicowego wzmocnienia niskich wskaźników odpowiedzi lub protokołów DRL, umieść jedną lub dwie dźwignie w komorze i dostarczaj żywność dla każdego poziomu naciśnięcia w połączeniu z bezpłatnym podawaniem granulek żywności co 45 sekund. W przypadku protokołu wyboru międzyokresowego wybierz wartości opóźnienia i wielkości nagrody.Na przykład, opcje dla opcji większej-później lub LL dostarczają pięć granulek żywności po 20-sekundowym ustalonym opóźnieniu, a opcje dla opcji małej-prędzej lub SS dostarczają natychmiast jedną granulkę żywności. Wybierz kryterium końcowe i zakończ sesje automatycznie po spełnieniu określonego kryterium, na przykład po 40 próbach wyboru lub po 50 minutach. Połącz każdą alternatywę z dźwignią w komorze kondycjonowania, równoważąc lateralizację alternatyw między badanymi i udostępnij alternatywy SS i LL po osiągnięciu harmonogramu zmiennych interwałów.W próbach swobodnego wyboru, gdy jedna z dźwigni zostanie naciśnięta po upływie określonego czasu, aktywowana zostanie powiązana alternatywa. Obie dźwignie zostaną cofnięte, a konsekwencja związana z alternatywami SS lub LL po osiągnięciu harmonogramu zbrojenia o zmiennym interwałze zostanie aktywowana. Po dostarczeniu nagrody wykonaj warunek limitu czasu, dostosowując czas trwania tego warunku, aby zrównać średni czas trwania interwałów międzypróbnych dla obu alternatyw.Próba następnego wyboru rozpoczyna się po zakończeniu limitu czasu. Jeśli uczestnik wybierze jedną alternatywę na dwie kolejne próby, program określi, że następna próba będzie wymuszoną próbą pozostałej alternatywy, to znaczy, że w następnej próbie obie dźwignie będą dostępne, ale tylko jedna będzie działać, aby zapewnić, że uczestnik doświadczy wyników związanych z obiema alternatywami. W przypadku programowania DRL wybierz wartość minimalnego czasu, po którym odpowiedź przyniesie nagrodę.Po rozpoczęciu sesji lub po dowolnej reakcji naciśnięcia dźwigni uruchom minutnik odliczający czas od wybranej wartości czasu do zera. Jeśli podmiot wyświetli odpowiedź, zanim licznik czasu osiągnie wartość zero, czasomierz zostanie zresetowany, tak że podmiot będzie musiał poczekać na nową okazję, aby uzyskać nagrodę. Jeśli tester wyemituje odpowiedź po tym, jak licznik czasu osiągnie wartość zero, dostarcz granulkę jedzenia.Zegar zostanie zresetowany po dwóch sekundach, aby zwierzę mogło spożyć pellet. W przypadku dyskryminacji cech negatywnych, najpierw wybierz czas trwania bodźców, czas trwania interwałów międzypróbnych i kryteria zakończenia sesji. Po przedstawieniu bodźca A w próbach A-plus, podaj granulkę pokarmu.Po przedstawieniu tego samego bodźca A wraz z dodatkowym bodźcem X w badaniach AX-minus, nie należy podawać żadnego pokarmu. Po skonfigurowaniu protokołów w oprogramowaniu komputerowym wyczyść wewnętrzne ściany, sufit i podłogę grilla komór operacyjnych odpowiednim roztworem dezynfekującym, aby usunąć zapachy z poprzednich sesji lub poprzednich badań. Użyj komputera, aby ręcznie aktywować i monitorować kluczowe wejścia i wyjścia, aby upewnić się, że działają i sprawdzić, czy dozownik żywności zawiera wystarczającą ilość jedzenia do dostarczenia podczas sesji.Przesunąć klatki z szczurami w środku, zbliżyć do komór kondycjonowania i otworzyć klatkę w obudowie. Delikatnie umieść szczura w odpowiedniej komorze kondycjonującej przed zamknięciem komór kondycjonujących w skorupach izolacyjnych. Uruchom program i poczekaj, aż program się zakończy.Jeśli dane nie zostaną zapisane automatycznie, zapisz pliki wyjściowe sesji na dysku komputera lub w innym miejscu. Po zakończeniu programu delikatnie wróć szczury do odpowiednich klatek i podaj zwierzętom pokarm uzupełniający zgodnie z wybranym reżimem ograniczeń żywieniowych. W tej procedurze wyboru międzyokresowego stosunek logarytmiczny wskaźnika odpowiedzi dźwigni związany z alternatywą SS był wyższy u szczurów ze spontanicznym nadciśnieniem tętniczym w porównaniu ze szczurami typu dzikiego, co sugeruje, że szczury z modelem ADHD wolą natychmiastową nagrodę kosztem bogatszej, ale opóźnionej alternatywy.W tym reprezentatywnym eksperymencie z protokołem DRL dane podłużne pojedynczego szczura z 10-sekundowym ograniczeniem czasowym w odpowiedzi pokazują, że z biegiem czasu zwierzę nabrało doświadczenia w zadaniu, ostatecznie ucząc się reagować około 10 sekund. W tym eksperymencie farmakologicznym sprawdzono, czy impulsywna wydajność w procedurze DRL z ograniczeniem czasowym do 10 sekund uległa zmniejszeniu w przypadku leczenia polegającego na niskim poziomie leku przeciwpsychotycznego. Wykresy gęstości niebieskiej reprezentują rozkład reakcji po podaniu soli fizjologicznej, a wykresy łososia reprezentują rozkład takich reakcji po podaniu haloperidolu.Górne wykresy osadzone pokazują wskaźniki odpowiedzi, a dolne pokazują wskaźniki nagrody dla soli fizjologicznej i haloperidolu z tym samym kodem kolorystycznym, co poprzednie wykresy. Można zauważyć, że odsetek odpowiedzi był zmniejszony u trzech do pięciu osób, szczególnie u osób z wysokim odsetkiem odpowiedzi wybuchowych w stanie soli fizjologicznej. Zazwyczaj w protokole dyskryminacji cech ujemnych, reagowanie podczas prób z pojedynczym bodźcem i jedzeniem oraz podczas prób z bodźcem złożonym bez jedzenia nie różni się znacząco we wczesnych sesjach.Jednak po kilku sesjach szczury reagują różnie w obu typach prób, ujawniając, że dodanie drugiego bodźca przeciwdziała tendencji do reakcji kontrolowanej przez pierwszy. Co ważne, badani wykazują dość silne różnice indywidualne w obu typach badań. Upewnij się, że odpowiednie protokoły są załadowane do odpowiednich komór kondycjonowania, że szczury są prawidłowo przypisane do każdej komory i że wszystkie komory są zamknięte.Po zakończeniu procedury podstawowej można zastosować leczenie behawioralne, farmakologiczne lub chirurgiczne w celu sprawdzenia ich wpływu na wydajność. Wyniki nie zawsze są jednoznaczne, dlatego badacze mogą chcieć rozważyć, czy obserwowane dane są zależne od wybranych parametrów, czy też są w rzeczywistości wywołane przez czynniki zakłócające. Upewnij się, że odpowiednio obchodzisz się ze szczurami, aby uniknąć krzywdzenia szczurów i aby szczury nie skrzywdziły ciebie.

three-laboratory-procedures-for-assessing-different-manifestations

Research

JoVE Journal

Behavior

Zachowanie

Obecne badanie ocenia nowatorską procedurę oceny wzmacniających efektów smacznych roztworów u szczurów laboratoryjnych: samodzielne podawanie wewnątrzustne. W tym celu mierzono reakcję instrumentalną (tj. naciskanie dźwignią) na wewnątrzustne wlewy słodkich roztworów o różnych stężeniach na podstawie ciągłych i progresywnych harmonogramów współczynników wzmocnienia.

Nowatorska procedura oceny wzmacniających właściwości degustatorów u szczurów laboratoryjnych: instrumentalne samodzielne podawanie wewnątrzustne

Ten protokół opisuje zadanie czasu reakcji szeregowej do wyboru 5 opcji, które jest zadaniem opartym na instrumentacji, używanym do badania uwagi i kontroli impulsów u gryzoni. Wyzwania dnia testowego, które są modyfikacjami standardowego zadania, zwiększają elastyczność zadania i mogą być łączone z innymi manipulacjami, aby pełniej scharakteryzować zachowanie.

Zadanie 5-Choice Serial Reaction Time Task: zadanie skupienia uwagi i kontroli impulsów dla gryzoni

Zdolność do oceny funkcji wykonawczych, takich jak elastyczność behawioralna u szczurów, jest przydatna do badania neurobiologii funkcji poznawczych zarówno u nienaruszonych zwierząt, jak i w modelach chorób. W tym miejscu opisujemy zautomatyzowane zadania do oceny zmiany strategii i odwróconego uczenia się, które są szczególnie wrażliwe na zakłócenia w sieciach kory przedczołowej.

Procedury instrumentalne do oceny elastyczności behawioralnej u szczurów

Opisana jest szczurza wersja ludzkiego Testu Czujności Psychomotorycznej (PVT), która mierzy aspekty uwagi podobne do tych mierzonych za pomocą ludzkiego PVT, w tym aspekty ludzkiej czujności, takie jak dokładność działania, szybkość motoryczna, przedwczesne reagowanie i spadki uwagi.

Test czujności psychomotorycznej gryzoni (rPVT): metoda oceny sprawności neurobehawioralnej u szczurów i myszy

Celem prezentowanych tutaj testów behawioralnych jest wykrycie deficytów funkcjonalnych u szczurów po urazowym uszkodzeniu mózgu. Przedstawiono cztery specyficzne testy, które wykrywają deficyty w zachowaniach, aby odzwierciedlić uszkodzenie określonych obszarów mózgu, czasami trwające do jednego roku po urazie.

Wykrywanie deficytów behawioralnych u szczurów po urazowym uszkodzeniu mózgu

Ten artykuł opisuje protokół oceny funkcji poznawczych dla modeli genetycznych choroby Alzheimera przy użyciu systemu IntelliCage, który jest wysokowydajnym zautomatyzowanym systemem monitorowania zachowań z warunkowaniem instrumentalnym.

Zautomatyzowany, długoterminowy test behawioralny funkcji poznawczych w wielu modelach genetycznych choroby Alzheimera z wykorzystaniem IntelliCage

Kompleksowy test behawioralny obejmujący umiejętności motoryczne, nastrój - w tym interakcje społeczne, depresję i lęk - oraz funkcje poznawcze jest przeznaczony do wielokrotnej oceny zmian behawioralnych związanych z neurodegeneracją u myszy.

Bateria testów behawioralnych do wielokrotnej oceny zdolności motorycznych, nastroju i funkcji poznawczych u myszy

Opisano procedurę pomiaru szybkości i dokładności sprawności motorycznej szczurów w warunkach społecznych. Protokół umożliwia nam zbadanie wpływu samej obecności innych osób na szybkość i dokładność sprawności motorycznej w jednym eksperymencie.

Zadanie polegające na ocenie wpływu partnera na szybkość i dokładność sprawności motorycznej u szczurów

Prezentowany tutaj jest protokół do ustalenia ostrego zawału mostu w modelu szczurzym za pomocą stymulacji elektrycznej za pomocą pojedynczego impulsu.

Ustalenie ostrego zawału mostu u szczurów za pomocą stymulacji elektrycznej

Stresujące wydarzenia życiowe upośledzają funkcje poznawcze, zwiększając ryzyko zaburzeń psychicznych. Protokół ten ilustruje, w jaki sposób stres wpływa na elastyczność poznawczą przy użyciu paradygmatu automatycznej zmiany strategii operacyjnej u samców i samic szczurów Sprague Dawley. Omówiono konkretne obszary mózgu leżące u podstaw określonych zachowań i zbadano znaczenie translacyjne wyników.

Ocena wpływu stresu na elastyczność poznawczą przy użyciu paradygmatu zmiany strategii instrumentalnej

Obecny protokół opisuje rozwój open-source'owego zestawu narzędzi do szeregowego czasu reakcji 5 wyborów dla modeli gryzoni, przy użyciu Arduino i pokrewnego sprzętu oraz wszechstronnego zestawu narzędzi Matlab, w tym opcjonalnego skryptu do automatycznego treningu behawioralnego. Skrypty są konfigurowalne i ułatwiają wdrażanie różnych projektów próbnych i testowych.

Otwarty kod źródłowy, w pełni konfigurowalny zestaw zadań czasu reakcji szeregowej do wyboru 5 do zautomatyzowanego treningu behawioralnego gryzoni

Poznaj trzy procedury laboratoryjne do oceny impulsywności u szczurów, w tym wybór międzyczasowy i inhibicję odpowiedzi. Metody te pozwalają badać podstawy neurofizjologiczne i neurochemiczne impulsywności oraz jej związki z zaburzeniami psychicznymi u ludzi.

Trzy procedury laboratoryjne do oceny różnych objawów impulsywności u szczurów

Przeglądaj więcej filmów