3 czerwca 2020
Ten protokół opisuje indukcję nadciśnienia płucnego (PH) u myszy na podstawie ekspozycji na niedotlenienie i wstrzyknięcia antagonisty receptora VEGF. U zwierząt rozwija się PH i przerost prawej komory (RV) 3 tygodnie po rozpoczęciu protokołu. Przedstawiono również charakterystykę funkcjonalną i morfometryczną modelu.
Protokół ten może być stosowany do indukcji nadciśnienia płucnego i wykonywania pomiarów funkcjonalnych prawej komory. Model hipoksji Sugena jest łatwy do wdrożenia i może podsumować niektóre cechy charakterystyczne nadciśnienia płucnego w ciągu dwóch do trzech tygodni od indukcji. Korzystając z tego modelu, możemy zidentyfikować nowe szlaki zaangażowane w rozwój choroby.
Możemy identyfikować nowe cele i testować ich potencjał terapeutyczny. Przed rozpoczęciem procedury indukcji należy zabezpieczyć zbiorniki z azotem w pobliżu komory hipoksyjnej i ustawić regulator tlenu w punkcie 10% tlenu. Następnie załaduj świeżo przygotowany roztwór SU5416 do jednej mililitrowej strzykawki wyposażonej w igłę o rozmiarze 25 i ręcznie przytrzymuj pierwsze zwierzę, które ma zostać wstrzyknięte.
Chwyć skórę, aby utworzyć namiot równolegle do kręgosłupa, upewniając się, że mocno chwytasz tył głowy, aby uniknąć potencjalnego ugryzienia przez mysz. Wprowadzić igłę podskórnie przez bok w luźnym fałdzie skórnym równolegle do skóry i dostarczyć 100 mikrolitrów zawartości strzykawki. Po 10 sekundach wyjmij igłę i umieść zwierzę z powrotem w klatce.
Po wstrzyknięciu wszystkim zwierzętom umieść myszy w wentylowanej komorze do hipoksji. W przypadku ekspozycji na hipoksję należy upewnić się, że komory są wyposażone w czujnik tlenu do pomiaru poziomu tlenu i otwierać komory na nie więcej niż 20 minut co trzy dni w celu oczyszczenia i dodania pokarmu i wody. Należy codziennie sprawdzać zwierzęta pod kątem oznak stresu i powtarzać wstrzyknięcie SU5416 co tydzień przez trzy kolejne tygodnie.
Przed rozpoczęciem procedury pomiaru ciśnienia należy przygotować łącznik rurki Y i użyć trybu ręcznego, aby sprawdzić działanie wentylatora. Ustaw ciśnienie wdechowe na mniej niż jeden centymetr wody, aby uniknąć barotraumy i ustaw częstość oddechów na 110 oddechów na minutę. Wytnij cewnik wewnątrznaczyniowy o rozmiarze 20, aby utworzyć rurkę dotchawiczą i włącz jednostkę kontroli objętości ciśnienia.
Uruchom oprogramowanie do akwizycji danych i umieść cewnik objętościowy pod ciśnieniem w 15-mililitrowej probówce wirówkowej PBS w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Następnie skalibruj cewnik zgodnie z protokołem producenta. Umieść mysz na poduszce grzewczej i umieść sondę doodbytniczą do monitorowania temperatury ciała.
Następnie potwierdź brak reakcji na szczypanie palców u znieczulonej myszy i ogol okolice szyi i klatki piersiowej. Zabezpiecz kończyny myszy taśmą chirurgiczną i wykonaj jednocentymetrowe nacięcie w przyśrodkowej skórze szyjki macicy. Za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką tępo oddziel śliniankę przyuszną i podżuchwową, aby odsłonić mięśnie leżące pod tchawicą.
Ostrożnie przeciąć mięśnie, aby całkowicie odsłonić tchawicę i użyj nożyczek, aby wykonać małe nacięcie między chrząstkami tchawicy. Włóż przygotowaną rurkę dotchawiczą i wyjmij metalową prowadnicę cewnika wewnątrznaczyniowego. Następnie podłącz cewnik do respiratora i sprawdź położenie rurki dotchawiczej, ręcznie delikatnie napompowując płuca.
Zabezpiecz pozycję taśmą. W celu pomiaru ciśnienia w prawej komorze wykonaj jednocentymetrowe nacięcie skóry nad wyrostkiem mieczykowatym i górną częścią brzucha i zaczynając od środkowej linii dystalnie do mieczykowatej i ostrożnie przesuwając się na boki po obu stronach, oddziel skórę nad klatką piersiową i ścianą brzucha. Otwierając jamę brzuszną, ostrożnie przetnij przeponę, uważając, aby nie uszkodzić bijącego serca lub płuc.
I użyj aplikatora z bawełnianą końcówką, aby delikatnie usunąć osierdzie. Zbliż cewnik ciśnieniowy do myszy i za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką wyposażonego w igłę wykonaj ranę kłutą w nietypowej dystalnej części prawej komory. Ostrożnie zastąp igłę cewnikiem ciśnieniowym, wprowadzając cewnik ciśnieniowy równolegle do kierunku prawej komory z końcówką skierowaną w stronę tętnicy płucnej.
Obserwuj śledzenie fali ciśnienia, aby zapewnić prawidłowe ustawienie cewnika. Gdy sygnał ciśnienia się ustabilizuje, przerwij oddychanie i wykonaj co najmniej trzy pomiary. Po zarejestrowaniu wszystkich pomiarów ostrożnie umieścić cewnik z powrotem w probówce wirówkowej wypełnionej PBS w łaźni wodnej.
W tym miejscu przedstawiono reprezentatywne krzywe ciśnienia oraz analizę ilościową ciśnienia w prawej komorze pod koniec okresu obserwacji. Analiza histologiczna przebudowanych tętnic płucnych po niedotlenieniu w połączeniu z leczeniem SU5416 ujawnia wzrost grubości ściany przyśrodkowej w porównaniu ze zwierzętami normoksycznymi. Barwienie aglutyniną z kiełków pszenicy w celu oceny przerostu kardiomiocytów wskazuje, że niedotlenienie w połączeniu z ekspozycją na SU5416 powoduje wyraźny wzrost wielkości kardiomiocytów i przerost prawej komory.
Ponadto morfometryczna ocena przerostu prawej komory za pomocą pomiaru wskaźnika Fultona potwierdza wzrost przerostu prawej komory u zwierząt niedotlenionych. Wykonanie pomiarów funkcjonalnych jest ważne, aby uniknąć krwawienia, ponieważ może to negatywnie wpłynąć na wyniki badania. Protokół ten może być również stosowany do wywoływania nadciśnienia płucnego u szczurów z niewielkimi modyfikacjami.
Warto zauważyć, że tylko jedno wstrzyknięcie leku Sugen u szczurów wystarcza do wywołania nadciśnienia płucnego.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół opisuje indukcję nadciśnienia płucnego (PH) u myszy poprzez ekspozycję na hipoksję oraz wstrzyknięcie antagonisty receptora VEGF. Model ten umożliwia funkcjonalną i morfometryczną charakterystykę PH oraz przerostu prawej komory w ciągu trzech tygodni.
Model mysi oparty na hipoksji/SU5416 stanowi szybki i kosztowo efektywny system do badania przebudowy naczyniowej oraz dysfunkcji prawej komory w nadciśnieniu płucnym, umożliwiając walidację celów na wczesnym etapie oraz ograniczanie ryzyka mechanistycznego. Jego kompatybilność z myszami typu dzikiego oraz myszami modyfikowanymi genetycznie wspiera analizę szlaków sygnałowych i testowanie hipotez terapeutycznych w okresie trzech tygodni. Model ten łączy biologię odkrywczą z ewaluacją przedkliniczną, dostarczając mierzalnych odczytów hemodynamicznych i histologicznych, które pomagają w selekcji projektów w portfolio oraz podejmowaniu decyzji w oparciu o ocenę ryzyka.
Model ten wpisuje się w kontinuum od etapu odkrycia do badań przedklinicznych, wspierając wczesną identyfikację celów, walidację testów oraz redukcję ryzyka mechanistycznego przed optymalizacją związku wiodącego.