Name: Miniinwazyjna technika stabilizacji wewnętrznej do badania przykurczu zgięciowego kolana wywołanego unieruchomieniem u szczurów (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 34 s
Description: Poznaj miniinwazyjną technikę stabilizacji wewnętrznej stawu kolanowego u szczurów. Ta metoda umożliwia badanie molekularnych mechanizmów przykurczu zgięciowego z minimalnym urazem dla zwierzęcia.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była wspierana przez granty z Narodowej Fundacji Nauk Przyrodniczych Chin (nr 81772368), Fundacji Nauk Przyrodniczych Prowincji Guangdong (nr 2017A030313496) oraz Projektu Planu Nauki i Technologii Prowincji Guangdong (nr 2016A020215225; Nr 2017B090912007). Autorzy dziękują dr Fei Zhangowi, doktorowi medycyny z Oddziału Chirurgii Ortopedycznej Ósmego Szpitala Stowarzyszonego Uniwersytetu Sun Yat-sen za pomoc techniczną podczas modyfikacji.

Wszystkie procedury zostały przeprowadzone zgodnie z Przewodnikiem dotyczącym opieki i użytkowania zwierząt laboratoryjnych i zostały zatwierdzone przez Trzeci Szpital Stowarzyszony Uniwersytetu Sun Yat-sen instytucjonalny komitet opieki i użytkowania zwierząt (numer pozwolenia: 02-165-01). Wszystkie eksperymenty na zwierzętach zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi ARRIVE.
1. Przygotowanie przedoperacyjne
UWAGA: Rysunek 1 przedstawia projekt zabiegu chirurgicznego.
<ol>
	<li>Sztywno unieruchomić staw kolanowy za pomocą plastikowej płytki i dwóch metalowych przy zgięciu około 135°. 
	UWAGA: Wykonaj operację na bliższej części kości udowej i dystalnej kości piszczelowej bez naruszania elementu stawowego.</li>
	<li>Przygotuj materiały i narzędzia do mocowania wewnętrznego.
	<ol>
		<li>Zbuduj plastikową płytkę z polipropylenu klasy medycznej, przecinając strzykawkę o pojemności 5 ml (<klasa silna = "xfig" >Rysunek 2a) za pomocą nożyczek chirurgicznych, aby dopasować je do następujących wymiarów: długość, 25 mm; szerokość, 10 mm; grubość, 1 mm (<silna klasa="xfig">Rysunek 2b). Wygładź obwód płytki skalpelem w pionie. Opłucz płytkę sterylnym roztworem soli fizjologicznej, aby trzykrotnie zmyć zanieczyszczenia.
		<ol>
			<li>Sterylizować 75% etanolem przez 4 godziny, a następnie naświetlać światłem ultrafioletowym przez 3 godziny.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wstępne wiercenie otworów w plastikowej płycie: Przygotuj ręczną wiertarkę elektryczną wolnoobrotową o prędkości około 0-4000 obr./min (<klasa silna = "xfig">Rysunek 2c). Wywierć dwa otwory na obu końcach płytki, średnice wynoszą odpowiednio 1 mm i 0,9 mm (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 2d). Dopasuj oba końce płytki za pomocą stalowych M 1,4 mm x 8 mm i M 1,2 mm x 6 mm (<klasa mocna = "xfig">Rysunek 2e).
		<ol>
			<li>Przetrzyj 75% etanolem i sterylizuj światłem UV przez 3 godziny przed użyciem.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotuj narzędzia chirurgiczne: 1 prosty zacisk hemostatyczny typu Mosquito, 1 gładkie zakrzywione kleszcze, 2 zwijacze powiek, 1 uchwyt na igłę, 1 kleszczyki do tkanek, 1 nożyczki do szwów, 1 nożyczki do mikrotkanek i 1 skalpel (<silna klasa = "xfig">Rysunek 2f). Wysterylizować narzędzia chirurgiczne przez autoklawowanie w temperaturze 121,3 °C przez 20 minut i suszenie.</li>
	<li>Zwierzęta doświadczalne
	<ol>
		<li>W doświadczeniu należy użyć dojrzałych szkieletowo samców szczurów Sprague-Dawley (lub Wistar) wolnych od specyficznych patogenów (SPF) o wadze od 250 do 350 g. 
		UWAGA: Do eksperymentu wybierz samicę lub samca szczura.</li>
		<li>Umieść szczury w klatkach i trzymaj w pomieszczeniu laboratoryjnym o kontrolowanym cyklu 12 godzin światła/12 godzin ciemności. Zapewnij odpowiednią ilość jedzenia i wody.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Chirurgia
<ol>
	<li>Dostosuj temperaturę. Umieść podkładkę rozgrzewającą na platformie operacyjnej w termostatycznej sali operacyjnej.</li>
	<li>Znieczulenie i przygotowanie skóry
	<ol>
		<li>Zważ szczura za pomocą wagi elektronicznej i zapisz.</li>
		<li>Unieruchomić szczura i wykonać dootrzewnowe wstrzyknięcie pentobarbitalu sodu (30 mg/kg) w celu znieczulenia indukowanego. Ocena, czy zwierzę jest wystarczająco znieczulone za pomocą szczypania palców u nóg 22. Podawaj oczy lubrykantem, aby chronić rogówkę przed wysuszeniem podczas operacji.</li>
		<li>Ogolić dolną część ciała szczura, w tym dwie tylne kończyny, za pomocą elektrycznej maszynki do strzyżenia i dwukrotnie zdezynfekować nalewką z jodu powidonu i trzykrotnie 75% etanolu.</li>
		<li>Ułóż szczura bokiem i przykryj serwetą chirurgiczną, odsłaniając jedną stronę tylnej nogi i biodra.</li>
		<li>Ponownie zdezynfekuj obszar operacyjny jodem powidonu.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Unieruchomić staw kolanowy z wewnętrzną stabilizacją za pomocą techniki małoinwazyjnej. 
	UWAGA: Podczas operacji należy utrzymywać nacięcie odpowiednio wilgotne sterylnym roztworem soli fizjologicznej. Operacja zwykle wymaga dwóch chirurgów.
	<ol>
		<li>Zaznacz kierunek nacięcia skóry. Na dystalnym końcu krętarza większego kości udowej narysuj linię wzdłuż rzutu powierzchni ciała szczeliny mięśniowej między mięśniem obszernym bocznym a bicepsem uda (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3a). Naciąć skórę naskórka wzdłuż linii rysowania na około 1,5 cm (<klasa silna = "xfig" >Rysunek 3b).</li>
		<li>Tępo rozetnij szczelinę mięśniową między mięśniem obszernym bocznym a mięśniem dwugłowym uda za pomocą kleszczyków tkankowych, aż trzon kości udowej zostanie odsłonięty o długości około 1 cm (<silna klasa = "xfig">Rysunek 3c). Użyj retraktora, aby ułatwić ciągłą separację przerwy mięśniowej.</li>
		<li>Naciąć skórę naskórka około 1 cm wzdłuż powierzchni ciała, rzutując szczelinę mięśniową między piszczelą przednią a strzałkową długą na dystalnej kończynie dolnej (<silna klasa = "xfig">Ryc. 3d). Tępo rozkrój przerwę mięśniową, aż kość piszczelowa zostanie odsłonięta o długości około 1 cm (<silna klasa="xfig">Ryc. 3e).</li>
		<li>Oddziel tkanki miękkie za pomocą retraktora i gładkich kleszczy, trzymaj prostopadle i wywierć jeden otwór o średnicy 1,0 mm w trzonie kości udowej z prędkością 1,500 obr./min za pomocą wiertarki elektrycznej (<klasa silna = "xfig" >Rysunek 3f). Właściwa pozycja wiercenia znajduje się około 8 mm poniżej dolnej krawędzi krętarza większego. Szybko uciskaj ranę, aby zatamować krwawienie. 
		UWAGA: Właściwa średnica wiercenia pozwala uniknąć złamań śródoperacyjnych.</li>
		<li>Wywierć jeden otwór o średnicy 0,9 mm w kości piszczelowej około 4 mm poniżej krawędzi zrostu piszczelowo-strzałkowego (<silna klasa = "xfig">Rysunek 4a). Wykonuj wiercenie ostrożnie, aby zapobiec zmiażdżeniu mięśni lub ścięgien.</li>
		<li>Użyj prostego zacisku hemostatycznego typu Mosquito, aby utworzyć podmięśniowy przebieg od otworu piszczelowego do otworu kości udowej. Tunel podmięśniowy przechodzi poniżej mięśnia brzuchatego łydki na końcu kości piszczelowej i powyżej pośladka średniego, poniżej mięśnia dwugłowego uda na końcu kości udowej.</li>
		<li>Użyj jednej stalowej M 1,4 mm x 8 mm, aby zabezpieczyć jeden koniec plastikowej płytki (z otworem o średnicy 1,0 mm) w bliższej części kości udowej (<silna klasa="xfig">Rysunek 4b). Użyj jednej stalowej M 1,2 mm x 6 mm, aby przymocować drugi koniec plastikowej płytki (z otworem o średnicy 0,9 mm) w dystalnej kości piszczelowej (<silna klasa="xfig">Rysunek 4c). Upewnij się, że staw kolanowy jest wolny od szpotawości.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zamknij ranę: Zszyj mięśniówkę powięziową, powięź głęboką i tkankę podskórną za pomocą wchłanialnych szwów 4-0 (<silna klasa = "xfig">Ryc. 4d). Zamknij skórę szwami poliamidowymi (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 4f).</li>
</ol>
3. Postępowanie pooperacyjne
<ol>
	<li>Zastosować analgezję pooperacyjną poprzez podskórne wstrzyknięcie buprenorfiny (0,03 mg/ml) w dawce 0,05 mg/kg . Dodaj 5 mg/ml neomycyny do wody pitnej przez 5 dni po zabiegu.</li>
	<li>Mieszaninę przeciwbólową (buprenorfinę i karprofen) należy wstrzykiwać odpowiednio w dawce 0,05 mg/kg i 5 mg/kg podskórnie dwa razy dziennie przez co najmniej 72 godziny po operacji.</li>
	<li>Sprawdź, czy tylna kończyna nie ma nadmiernego obrzęku w przypadku urazu naczyniowego. Upewnij się, że szczury mogą normalnie chodzić w przypadku uszkodzenia nerwów podczas operacji.</li>
</ol>
4. Badanie pooperacyjne
<ol>
	<li>Obserwuj gojenie się nacięcia chirurgicznego i fizycznie zbadaj staw kolanowy, aby ocenić wczesne oznaki infekcji co drugi dzień po operacji. Sprawdź stopień obrzęku stawu skokowego i śródręczno-paliczkowego w przypadku ciągłego obrzęku. 
	UWAGA: Wczesna infekcja pooperacyjna może powodować wysięk z rany, obrzęk nóg i opóźnione gojenie się ran.</li>
	<li>Wykonaj obrazowanie rentgenowskie kończyny tylnej, aby upewnić się, że zostały prawidłowo umieszczone w pierwszym dniu po operacji. 
	UWAGA: Analiza mikrotomografii komputerowej to kolejna alternatywna opcja wyświetlania prawidłowego położenia i kierunku stalowych.</li>
	<li>Zmierz bierny zakres ruchu (ROM), aby ocenić rozwój przykurczu. Wykonaj pomiar ROM stawu kolanowego w różnych kohortach czasowych po operacji, jak opisano wcześniej20.
	<ol>
		<li>Krótko mówiąc, poddaj szczury eutanazji i oskóruj tylne kończyny. Zdejmij immobilizer i zmierz kąt stawu kolanowego za pomocą mechanicznego artrometru z dwoma momentami obrotowymi (667 lub 1,060 g/cm)23.</li>
		<li>Oblicz ROM jako wynik przykurczu całkowitego, przykurczu miogennego i przykurczu artrogennego oddzielnie na podstawie celów badania24. 
		UWAGA: Ustaw różne kohorty czasowe (tj. 1, 2, 4, 8, 16 i 32 tygodnie) zgodnie z celami badania. Przeciwległy staw kolanowy (nieoperacyjny lub operowany pozorowany) może służyć jako kontrola2.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Analiza histologiczna tylnych torebek stawu kolanowego.
	<ol>
		<li>Przygotuj tkanki stawowe. Wypreparuj tkankę stawu kolanowego i utrwal ją 4% paraformaldehydem. Odwapnić go i zanurzyć w parafinie, jak wcześniej informowaliśmy25. Przeciąć odcinki (5 μm) na przyśrodkowym poziomie kłykcia w płaszczyźnie strzałkowej. 
		UWAGA: Wybierz, czy chcesz wykonać różne barwienia oceniające, w tym HE, barwienie aldehydowo-fuksynowe-Massona Goldnera (AFMG), Elastica-Massona lub immunohistochemiczne do badania histologicznego w torebce stawowej w oparciu o cele badania15,26.</li>
		<li>Obserwuj zmiany histomorfometryczne w tylnych torebkach stawu kolanowego. Sfotografuj tylną część stawu kolanowego. Obserwuj zmiany osadzania się włókien i adhezji między połączeniem trzon-błona maziowa a łąkotką6. 
		UWAGA: Zmiany patologiczne torebki stawowej są uważane za czynnik chorobotwórczy przykurczu stawu kolanowego. Zmierz długość, grubość i obszary torebki tylnej torebki, jak opisano wcześniej, zgodnie z treścią badań27.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Akeson, W. H., Amiel, D., Woo, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immobility+effects+on+synovial+joints+the+pathomechanics+of+joint+contracture%5BTitle%5D)+AND+%22Biorheology%22%5BJournal%5D)">Immobility effects on synovial joints the pathomechanics of joint contracture.</a> Biorheology. 17 (1-2), 95-110 (1980).</li>
<li>Trudel, G., Uhthoff, H. K., Brown, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extent+and+direction+of+joint+motion+limitation+after+prolonged+immobility%3A+an+experimental+study+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Extent and direction of joint motion limitation after prolonged immobility: an experimental study in the rat.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 80 (12), 1542-1547 (1999).</li>
<li>Arsoy, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Joint+contracture+is+reduced+by+intra-articular+implantation+of+rosiglitazone-loaded+hydrogels+in+a+rabbit+model+of+arthrofibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Joint contracture is reduced by intra-articular implantation of rosiglitazone-loaded hydrogels in a rabbit model of arthrofibrosis.</a> Journal of Orthopaedic Research. , (2018).</li>
<li>Glaeser, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anti-Inflammatory+Peptide+Attenuates+Edema+and+Promotes+BMP-2-Induced+Bone+Formation+in+Spine+Fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Anti-Inflammatory Peptide Attenuates Edema and Promotes BMP-2-Induced Bone Formation in Spine Fusion.</a> Tissue Engineering. Part A. , (2018).</li>
<li>Fergusson, D., Hutton, B., Drodge, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+epidemiology+of+major+joint+contractures%3A+a+systematic+review+of+the+literature%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Orthopaedics+and+Related+Research%22%5BJournal%5D)">The epidemiology of major joint contractures: a systematic review of the literature.</a> Clinical Orthopaedics and Related Research. 456, 22-29 (2007).</li>
<li>Wong, K., Trudel, G., Laneuville, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninflammatory+Joint+Contractures+Arising+from+Immobility%3A+Animal+Models+to+Future+Treatments%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">Noninflammatory Joint Contractures Arising from Immobility: Animal Models to Future Treatments.</a> BioMed Research International. 2015, 848290(2015).</li>
<li>Clavet, H., Hebert, P. C., Fergusson, D., Doucette, S., Trudel, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Joint+contracture+following+prolonged+stay+in+the+intensive+care+unit%5BTitle%5D)+AND+%22CMAJ+%3A+Canadian+Medical+Association+Journal%22%5BJournal%5D)">Joint contracture following prolonged stay in the intensive care unit.</a> CMAJ : Canadian Medical Association Journal. 178 (6), 691-697 (2008).</li>
<li>Dehail, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Joint+contractures+and+acquired+deforming+hypertonia+in+older+people%3A+Which+determinants%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Physical+and+Rehabilitation+Medicine%22%5BJournal%5D)">Joint contractures and acquired deforming hypertonia in older people: Which determinants?</a> Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. , (2018).</li>
<li>Watanabe, M., Kojima, S., Hoso, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+low-intensity+pulsed+ultrasound+therapy+on+a+rat+knee+joint+contracture+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Physical+Therapy+Science%22%5BJournal%5D)">Effect of low-intensity pulsed ultrasound therapy on a rat knee joint contracture model.</a> Journal of Physical Therapy Science. 29 (9), 1567-1572 (2017).</li>
<li>Goto, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+progression+of+immobilization-induced+skin+fibrosis+through+overexpression+of+transforming+growth+factor-ss1+and+hypoxic+conditions+in+a+rat+knee+joint+contracture+model%5BTitle%5D)+AND+%22Connective+Tissue+Research%22%5BJournal%5D)">Development and progression of immobilization-induced skin fibrosis through overexpression of transforming growth factor-ss1 and hypoxic conditions in a rat knee joint contracture model.</a> Connective Tissue Research. 58 (6), 586-596 (2017).</li>
<li>Sasabe, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+joint+immobilization+on+changes+in+myofibroblasts+and+collagen+in+the+rat+knee+contracture+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Effects of joint immobilization on changes in myofibroblasts and collagen in the rat knee contracture model.</a> Journal of Orthopaedic Research. 35 (9), 1998-2006 (2017).</li>
<li>Sakakima, H., Yoshida, Y., Sakae, K., Morimoto, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Different+frequency+treadmill+running+in+immobilization-induced+muscle+atrophy+and+ankle+joint+contracture+of+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Scandinavian+Journal+of+Medicine+%26+Science+in+Sports%22%5BJournal%5D)">Different frequency treadmill running in immobilization-induced muscle atrophy and ankle joint contracture of rats.</a> Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. 14 (3), 186-192 (2004).</li>
<li>Nagai, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contributions+of+biarticular+myogenic+components+to+the+limitation+of+the+range+of+motion+after+immobilization+of+rat+knee+joint%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Musculoskeletal+Disorders%22%5BJournal%5D)">Contributions of biarticular myogenic components to the limitation of the range of motion after immobilization of rat knee joint.</a> BMC Musculoskeletal Disorders. 15, 224(2014).</li>
<li>Matsuzaki, T., Yoshida, S., Kojima, S., Watanabe, M., Hoso, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+ROM+Exercise+on+the+Joint+Components+during+Immobilization%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Physical+Therapy+Science%22%5BJournal%5D)">Influence of ROM Exercise on the Joint Components during Immobilization.</a> Journal of Physical Therapy Science. 25 (12), 1547-1551 (2013).</li>
<li>Kaneguchi, A., Ozawa, J., Kawamata, S., Yamaoka, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+arthrogenic+joint+contracture+as+a+result+of+pathological+changes+in+remobilized+rat+knees%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Development of arthrogenic joint contracture as a result of pathological changes in remobilized rat knees.</a> Journal of Orthopaedic Research. 35 (7), 1414-1423 (2017).</li>
<li>Hargreaves, D. G., Drew, S. J., Eckersley, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kirschner+wire+pin+tract+infection+rates%3A+a+randomized+controlled+trial+between+percutaneous+and+buried+wires%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Hand+Surgery%22%5BJournal%5D)">Kirschner wire pin tract infection rates: a randomized controlled trial between percutaneous and buried wires.</a> Journal of Hand Surgery. 29 (4), 374-376 (2004).</li>
<li>Trudel, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiating+the+myogenic+and+arthrogenic+components+of+joint+contractures.+An+experimental+study+on+the+rat+knee+joint%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Rehabilitation+Research%22%5BJournal%5D)">Differentiating the myogenic and arthrogenic components of joint contractures. An experimental study on the rat knee joint.</a> International Journal of Rehabilitation Research. 20 (4), 397-404 (1997).</li>
<li>Evans, E. B., Eggers, G. W. N., Butler, J. K., Blumel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+Immobilization+and+Remobilization+of+Rat+Knee+Joints%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Bone+and+Joint+Surgery%22%5BJournal%5D)">Experimental Immobilization and Remobilization of Rat Knee Joints.</a> Journal of Bone and Joint Surgery. 42 (5), 737-758 (1960).</li>
<li>Hagiwara, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+patterns+of+collagen+types+I+and+III+in+the+capsule+of+a+rat+knee+contracture+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Expression patterns of collagen types I and III in the capsule of a rat knee contracture model.</a> Journal of Orthopaedic Research. 28 (3), 315-321 (2010).</li>
<li>Trudel, G., Uhthoff, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contractures+secondary+to+immobility%3A+is+the+restriction+articular+or+muscular%3F+An+experimental+longitudinal+study+in+the+rat+knee%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Contractures secondary to immobility: is the restriction articular or muscular? An experimental longitudinal study in the rat knee.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 81 (1), 6-13 (2000).</li>
<li>Hagiwara, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+elasticity+of+capsule+after+immobilization+in+a+rat+knee+experimental+model+assessed+by+scanning+acoustic+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Upsala+Journal+of+Medical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Increased elasticity of capsule after immobilization in a rat knee experimental model assessed by scanning acoustic microscopy.</a> Upsala Journal of Medical Sciences. 111 (3), 303-313 (2006).</li>
<li>Adelsperger, A. R., Bigiarelli-Nogas, K. J., Toore, I., Goergen, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+Low-flow+Digital+Anesthesia+System+for+Mice+and+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Use of a Low-flow Digital Anesthesia System for Mice and Rats.</a> Journal of Visualized Experiments. (115), (2016).</li>
<li>Trudel, G., O'Neill, P. A., Goudreau, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mechanical+arthrometer+to+measure+knee+joint+contracture+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Transactions+On+Rehabilitation+Engineering%22%5BJournal%5D)">A mechanical arthrometer to measure knee joint contracture in rats.</a> IEEE Transactions On Rehabilitation Engineering. 8 (1), 149-155 (2000).</li>
<li>Campbell, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+a+Knee+Arthrometer+to+Evaluate+Tissue-specific+Contributions+to+Knee+Flexion+Contracture+in+the+Rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Using a Knee Arthrometer to Evaluate Tissue-specific Contributions to Knee Flexion Contracture in the Rat.</a> Journal of Visualized Experiments. (141), (2018).</li>
<li>Moriyama, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alteration+of+knee+joint+connective+tissues+during+contracture+formation+in+spastic+rats+after+an+experimentally+induced+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Connective+Tissue+Research%22%5BJournal%5D)">Alteration of knee joint connective tissues during contracture formation in spastic rats after an experimentally induced spinal cord injury.</a> Connective Tissue Research. 48 (4), 180-187 (2007).</li>
<li>Onoda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Joint+haemorrhage+partly+accelerated+immobilization-induced+synovial+adhesions+and+capsular+shortening+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Knee+Surgery%2C+Sports+Traumatology%2C+%26+Arthroscopy%22%5BJournal%5D)">Joint haemorrhage partly accelerated immobilization-induced synovial adhesions and capsular shortening in rats.</a> Knee Surgery, Sports Traumatology, & Arthroscopy. 22 (11), 2874-2883 (2014).</li>
<li>Trudel, G., Jabi, M., Uhthoff, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Localized+and+adaptive+synoviocyte+proliferation+characteristics+in+rat+knee+joint+contractures+secondary+to+immobility%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Localized and adaptive synoviocyte proliferation characteristics in rat knee joint contractures secondary to immobility.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 84 (9), 1350-1356 (2003).</li>
<li>Jiang, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoplasmic+reticulum+stress-dependent+ROS+production+mediates+synovial+myofibroblastic+differentiation+in+the+immobilization-induced+rat+knee+joint+contracture+model%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Endoplasmic reticulum stress-dependent ROS production mediates synovial myofibroblastic differentiation in the immobilization-induced rat knee joint contracture model.</a> Experimental Cell Research. 369 (2), 325-334 (2018).</li>
<li>Pithioux, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Efficient+and+Reproducible+Protocol+for+Distraction+Osteogenesis+in+a+Rat+Model+Leading+to+a+Functional+Regenerated+Femur%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">An Efficient and Reproducible Protocol for Distraction Osteogenesis in a Rat Model Leading to a Functional Regenerated Femur.</a> Journal of Visualized Experiments. (128), (2017).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Badanie to miało na celu wyjaśnienie metody stopniowego unieruchamiania stawu kolanowego przy użyciu małoinwazyjnej techniki, która umożliwia szybką rehabilitację pooperacyjną u zwierząt po operacji. Konwencjonalnie uważa się, że metoda separacji mięśni-szczelin jest minimalnie inwazyjną techniką w chirurgii ortopedycznej. Zgodnie z oczekiwaniami odkryliśmy, że szczury mogą powrócić do normalnej diety i aktywności zaledwie jeden dzień po operacji, co było zgodne z poprzednim badaniem. Co więcej, po operacji nie doszło do...

Przykurcze stawów są definiowane jako ograniczenie w pasywnym zakresie ruchu (ROM) stawu stawowego stawu diarthrodialnego1,2. Obecne terapie mające na celu zapobieganie i leczenie przykurczów stawów osiągnęły pewien sukces3,4. Jednak mechanizm molekularny leżący u podstaw nabytego przykurczu stawu pozostaje w dużej mierze nieznany5. Etiologia przykurczów stawowych w różnych społecznościach społecznych jest bardzo zróżnicowana i obejmuje czynniki genetyczne, stany pourazowe, choroby przewlekłe i przedłużający się bezruch6. Powszechnie przyjmuje się, że unieruchomienie jest krytyczną kwestią w rozwoju nabytego przykurczu stawowego7. Osoby, które cierpią na poważny przykurcz stawów, mogą ostatecznie doprowadzić do niepełnosprawności fizycznej8. W związku z tym stabilny i powtarzalny model zwierzęcy jest niezbędny do zbadania potencjalnych mechanizmów patofizjologicznych nabytego przykurczu stawowego.
Obecnie budowane modele przykurczu stawu kolanowego wywołanego unieruchomieniem są w większości osiągane dzięki zastosowaniu nieinwazyjnych gipsów, zewnętrznych fiksacji i wewnętrznych fiksacji. Watanabe i wsp. poinformowali o możliwości zastosowania unieruchomienia gipsowego na stawach kolanowych szczurów9. Zakładając specjalną kurtkę, jedna strona stawu kończyny dolnej szczura jest unieruchomiona przez gips. Staw kolanowy szczura może pozostać w pełni zgięty bez żadnego urazu chirurgicznego10,11. Jednak zarówno ruchy stawu biodrowego, jak i skokowego są również dotknięte tą formą unieruchomienia, co może zwiększyć stopień zaniku mięśni w mięśniu czworogłowym uda lub brzuchatym łydce uda12. Ponadto należy unikać obrzęków i przekrwienia kończyn tylnych poprzez wymianę gipsu w określonych momentach czasowych, co może wpływać na ciągłość bezruchu. Inną akceptowaną metodą ustalenia modelu przykurczu stawu kolanowego jest zastosowanie zewnętrznego mocowania chirurgicznego. Nagai i wsp. połączyli drut Kirschnera i drut stalowy w zewnętrzny stabilizator, który unieruchomił staw kolanowy do około 140° zgięcia13. W tej metodzie żywica jest używana do pokrycia powierzchni, aby zapobiec zadrapaniom skóry. Chociaż zewnętrzne unieruchomienie mocujące jest solidne i niezawodne14,15, przezskórne druciane ścieżki kołków Kirschnera mogą zwiększać ryzyko infekcji16. Z naszego własnego doświadczenia wynika, że stosowanie techniki fiksacji zewnętrznej może zmniejszyć codzienną aktywność szczurów ze względu na wzrost uwarunkowanego lizania.
Alternatywnie, Trudel i in. opisali dobrze przyjęty model przykurczu stawu w stawie kolanowym szczura oparty na chirurgicznym wewnętrznym stabilizatorze17 (ta metoda została zmodyfikowana w stosunku do tej używanej przez Evansa i współpracowników18). Warto zauważyć, że ta metoda podkreśla znaczenie wykorzystania techniki mini-nacięcia w celu zminimalizowania ran chirurgicznych. Efektywny rozwój przykurczu stawowego został udowodniony w tym modelu19. Jednak protokół dotyczący wykonywania minimalnej sekcji w celu odsłonięcia powierzchni kości jest nadal niejasny20. Również dokładna pozycja, w której wierci śruba, nie jest w pełni zrozumiała. Implantacja wewnętrznej fiksacji przez sposób podskórny lub podmięśniowy jest nadal kontrowersyjna21. Aby rozwiązać te problemy, zmodyfikowaliśmy tę metodę, włączając odpowiedni tryb separacji mięśni-szczelina, który umożliwia małoinwazyjne odsłonięcie powierzchni kości i umieszczenie implantacji przez kanał podmięśniowy. Protokół ten doprowadził do szybkiej rehabilitacji pooperacyjnej u szczurów po operacji. U zwierząt rozwinął się ograniczony zakres ruchomości stawów po unieruchomieniu stawu, co było zgodne ze zmianami morfologicznymi zrostu torebki uzyskanymi z analizy histologicznej. Opisujemy również dokładne możliwe położenie nawierconych potwierdzone analizą rentgenowską lub analizą mikro-CT. W związku z tym badanie to miało na celu szczegółowe opisanie minimalnie inwazyjnej techniki w modelu przykurczu stawu kolanowego, która została ustalona za pomocą trybu separacji mięśni-szczelina w połączeniu z metodą mini-nacięcia. Uważamy, że techniki małoinwazyjne mogą zarówno zmniejszyć traumę u zwierząt, jak i skutecznie naśladować patologiczny proces przykurczu zgięciowego stawu.

<table><tbody><tr><td>Anerdian</td><td>Shanghai Likang Ltd.</td><td>310173</td><td>przeciwbakteryjna</td></tr><tr><td>buprenorfina&nbsp;</td><td>Szanghaj Shyndec Pharmaceutical Ltd.</td><td>/</td><td>przeciwbóle&nbsp;</td></tr><tr><td>Carprofen</td><td>MCE</td><td>HY-B1227</td><td>przeciwból&nbsp;</td></tr><tr><td>Śrubokręt krzyżowy</td><td>STANLEY</td><td>PH0*125mm</td><td>dokręcić</td></tr><tr><td>Wiertarka elektryczna</td><td>WEGO</td><td>185</td><td>wiercić otwory (z wiertłem ze stali nierdzewnej 0,9 mm; 1,0 mm)</td></tr> <tr><td>Instrumenty mikrochirurgiczne</td><td>RWD</td> <td>/</td> <td>Ortopedyczne narzędzia chirurgiczne dla zwierząt</td></tr><tr><td>Neomycyna</td><td>Sigma</td><td>N6386</td><td>antybakteryjna</td></tr><tr><td>Pentobarbital sodu</td><td>Sigma</td><td>P3761</td><td>&nbsp; znieczulenie</td></tr><tr><td>ze stali nierdzewnej</td><td>WEGO</td><td>m1,4 * 8; śruba m1,2 * 6</td><td>(część mocowania wewnętrznego)&nbsp;</td></tr><tr><td>Strzykawka&nbsp;</td><td>WEGO</td><td>3151474</td><td>użycia do plastikowej płyty (część wewnętrznego mocowania)&nbsp;</td></tr><tr><td>&mu;-CT&nbsp;</td>Tomografia komputerowa <td>ALOKA</td><td>Tokarka LCT-200</td><td>in vivo</td></tr></tbody></table>

miniinwazyjna technika stabilizacji wewnętrznej do badania przykurczu zgięciowego kolana wywołanego unieruchomieniem u szczurów

A Mini-Invasive Internal Fixation Technique for Studying Immobilization-Induced Knee Flexion Contracture in Rats

Przykurcz stawu, wynikający z długotrwałego unieruchomienia stawu, jest częstym powikłaniem w ortopedii. Obecnie wykorzystanie wewnętrznej fiksacji w celu ograniczenia ruchomości stawu kolanowego jest powszechnie akceptowanym modelem generowania eksperymentalnego przykurczu. Jednak wszczepienie implantu nieuchronnie spowoduje uraz chirurgiczny u zwierząt. Dążąc do opracowania mniej inwazyjnego podejścia, połączyliśmy tryb separacji mięśni-przerwa z wcześniej opisaną umiejętnością mini-nacięcia podczas zabiegu chirurgicznego: wykonano dwa mini nacięcia skóry po bocznej stronie uda i nogi, a następnie wykonaliśmy separację szczelin mięśniowych w celu odsłonięcia powierzchni kości. Staw kolanowy szczura był stopniowo unieruchamiany przez wcześniej skonstruowane wewnętrzne unieruchomienie przy zgięciu kolana pod kątem około 135° bez ingerencji w niezbędne nerwy lub naczynia krwionośne. Zgodnie z oczekiwaniami, ta prosta technika pozwala na szybką rehabilitację pooperacyjną u zwierząt. Prawidłowe położenie stabilizacji wewnętrznej potwierdzono analizą rentgenowską lub mikrotomografią komputerową. Zakres ruchu w unieruchomionym stawie kolanowym był znacznie ograniczony niż obserwowany w stawie kolanowym przeciwległym, co świadczy o skuteczności tego modelu. Poza tym analiza histologiczna wykazała rozwój osadzania się i adhezji włóknistej w torebce stawu kolanowego tylno-górnej w czasie. Tak więc ten miniinwazyjny model może być odpowiedni do naśladowania rozwoju unieruchomionego przykurczu stawu kolanowego.

Zaobserwowaliśmy, że szczury poddane małoinwazyjnemu zabiegowi chirurgicznemu mogą powrócić do regularnej diety już jeden dzień po operacji. W szczególności miejsce nacięcia chirurgicznego uległo zabliźnieniu bez obecności wysięku (Rysunek 5a). Obrzęk stawu skokowego i stawów śródręczno-paliczkowych w operowanej kończynie tylnej niemal całkowicie ustąpił dwa dni po operacji (Rysunek 5b) w porównaniu ze stroną przeciwległą (<stron...

Tutaj prezentujemy protokół opisujący minimalnie inwazyjną technikę unieruchomienia stawu kolanowego na modelu szczurzym. Ten powtarzalny protokół, oparty na sposobie separacji mięśni-szczelina i umiejętności mini-nacięcia, jest odpowiedni do badania mechanizmu molekularnego leżącego u podstaw nabytego przykurczu stawów.

Miniinwazyjna technika stabilizacji wewnętrznej do badania przykurczu zgięciowego kolana wywołanego unieruchomieniem u szczurów

Joint contracture, resulting from a prolonged joint immobilization, is a common complication in orthopedics. Currently, utilizing an internal fixation to ...

Ta prosta i skuteczna technika modelu separacji mięśni-szczeliny, łącząca sposoby metody mini-inwazji, jest najlepszą wewnętrzną stabilizacją w naszym modelu skurczu stawu kolanowego szczura. Główną zaletą tej techniki jest to, że jej proces jest powtarzalny i stanowi minimalnie inwazyjną alternatywę dla wywoływania przykurczu stawu kolanowego u zwierząt. Procedurę zademonstrują Shihai Jiang i Fei Zhang, doktorant z mojego laboratorium.Po potwierdzeniu braku reakcji na szczypanie palców u stóp, ogol dolną część ciała znieczulonego szczura, w tym dwie tylne kończyny. Zdezynfekuj odsłoniętą skórę dwukrotnie nalewką z jodu powidonu i trzykrotnie 75% etanolem. Nałóż maść na oczy zwierzęcia i umieść szczura bocznie pod serwetą chirurgiczną z odsłoniętą jedną tylną kończyną i biodrem.Zdezynfekuj obszar operacyjny dodatkowym jodem powidonu. Na dystalnym końcu krętarza większego kości udowej narysuj linię wzdłuż rzutu powierzchni ciała szczeliny mięśniowej między mięśniem obszernym bocznym a bicepsem uda, aby zaznaczyć kierunek nacięcia skóry. Następnie wykonaj 1,5-centymetrowe nacięcie w naskórku wzdłuż linii.Użyj kleszczyków tkankowych, aby tępo wyciąć szczelinę mięśniową między mięśniem obszernym bocznym a mięśniem dwugłowym uda, aż odsłoni się około jednego centymetra trzonu kości udowej. Użyj retraktora, aby ułatwić ciągłe oddzielanie się między mięśniami. Wykonaj jednocentymetrowe nacięcie w naskórku wzdłuż rzutu powierzchni ciała szczeliny mięśniowej między piszczelą przednią a strzałkową długą na dystalnej kończynie dolnej.Tępo wypreparuj przerwę mięśniową, aż odsłonięte zostanie około jednego centymetra kości piszczelowej. Użyj retraktora i gładkich kleszczyków, aby oddzielić tkanki miękkie. Trzymając wiertło prostopadłe do kości, wywierć otwór o średnicy jednego milimetra w trzonie kości udowej z prędkością 1 500 obrotów na minutę około ośmiu milimetrów poniżej dolnej krawędzi krętarza większego.Szybko dociśnij ranę, aby zatrzymać krwawienie i wywierć otwór o średnicy 0,9 milimetra w kości piszczelowej około czterech milimetrów poniżej krawędzi zrostu piszczelowo-strzałkowego. Użyj prostego zacisku hemostatycznego typu komara, aby utworzyć podmięśniowy przebieg od otworu piszczelowego do otworu kości udowej, przechodząc poniżej mięśnia brzuchatego łydki na końcu kości piszczelowej i powyżej pośladka średniego poniżej bicepsa kości udowej na końcu kości udowej. Następnie użyj jednej stalowej o wymiarach 1,4 na osiem milimetrów, aby zabezpieczyć jeden koniec plastikowej płytki w bliższej części kości udowej.Użyj jednej stalowej o wymiarach 1,2 na sześć milimetrów, aby zabezpieczyć drugi koniec plastikowej płytki w dystalnej kości piszczelowej. Po zabezpieczeniu płytki użyj wchłanialnych szwów 4-0, aby zamknąć mięśniówkę mięśniową, powięź głęboką i tkankę podskórną. Zamknij skórę jedwabnymi szwami.Obrazowanie rentgenowskie ujawnia prawidłowe umiejscowienie stalowych w kości udowej lub piszczelowej. Trójwymiarowa analiza rekonstrukcji po skanowaniu tomografii mikrokomputerowej o wysokiej rozdzielczości wykazuje boczne rozmieszczenie około ośmiu milimetrów poniżej dolnej krawędzi krętarza większego przy bliższej kości udowej i około czterech milimetrów poniżej krawędzi zrostu piszczelowo-strzałkowego w dystalnej kości piszczelowej. Artrogenne deficyty zakresu ruchu zwiększają się podczas unieruchomienia w sposób zależny od czasu.Wykazano to w wyższych średnich deficytach artrogennych mierzonych dla unieruchomionego stawu kolanowego w porównaniu z kontrolnym stawem kolanowym po 56 dniach unieruchomienia. W pierwszej dobie unieruchomienia nie obserwuje się zrostu przez elastyczne zabarwienie torebki stawu kolanowego tylno-górnego w przestrzeni stawowej między torebką stawu tylnego górnego w kości udowej w stawie kolanowym unieruchomionym lub przeciwległym. Jednak po 28 dniach od unieruchomienia w przestrzeni stawowej unieruchomionego kolana rozwijają się złogi tkanki włóknistej i zrosty.Po 56 dniach od unieruchomienia tkanki włókniste są częściowo zastępowane przez osadzanie, podczas gdy ten rodzaj zrostu nie obserwuje się w przeciwległym stawie kolanowym. Metoda ta jest zmodyfikowana w stosunku do metody stosowanej przez profesora Trudala i jego współpracowników z Uniwersytetu w Ottawie. Kluczowe jest zidentyfikowanie i oddzielenie luk mięśniowych podczas operacji.Stosując różne techniki unieruchomienia, można przeprowadzić inne procesy eksperymentalne, takie jak hodowla torebki stawu kolanowego, w celu zbadania podstawowych mechanizmów molekularnych.

a-mini-invasive-internal-fixation-technique-for-studying

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia rozwojowa

Opisano model zwierzęcy urazu in vivo. Metoda wykorzystuje podskórne położenie nerwu strzałkowego. Prędkość, czas aktywacji mięśni oraz łuk ruchu są wcześniej określone i zsynchronizowane przy użyciu komercyjnego oprogramowania. Zmiany po urazie są monitorowane in vivo za pomocą obrazowania/spektroskopii MR.

Model gryzoni in vivo w urazie wywołanym przykurczem i nieinwazyjne monitorowanie powrotu do sprawności

Niniejszy artykuł opisuje metodę stabilizacji złamań kości długich opartą na zastosowaniu zmodyfikowanych zewnętrznych stabilizatorów Ilizarova 1-3. Po zastosowaniu stabilizatorów i wywołaniu urazu kostnego można oceniać proces gojenia, przeprowadzać osteogenezę dystrakcyjną lub tworzyć staw rzekomy bądź defekt o rozmiarze krytycznym w celu badania interwencji terapeutycznych.

Tworzenie sztywno stabilizowanych złamań do oceny kostnienia błonowego, osteogenezy dystrakcyjnej lub gojenia ubytków o rozmiarze krytycznym

Jednym z ograniczeń badań przedklinicznych w dziedzinie naprawy kości jest brak eksperymentalnej kontroli nad lokalnym środowiskiem mechanicznym w obrębie gojącej się zmiany kostnej. Przedstawiamy projekt i zastosowanie stabilizatora zewnętrznego do naprawy kości z możliwością zmiany sztywności stabilizatora in vivo.

Regulowana sztywność, stabilizator zewnętrzny do osteotomii kości udowej szczura i modele segmentalnych ubytków kostnych

Ten protokół opisuje technikę osteosyntezy wykorzystującą gwóźdź blokujący śródszpikowy do standaryzacji osteotomii kości udowej, która może być używana do analizy prawidłowego i wadliwego gojenia kości u myszy.

Śródszpikowy gwóźdź blokujący do standaryzowanego mocowania osteotomii kości udowej w celu analizy prawidłowego i wadliwego gojenia kości u myszy

To badanie opisuje powtarzalny i szczegółowy protokół wykorzystujący nowo opracowany zewnętrzny stabilizator do osteogenezy dywersyjnej (DO) w modelu szczura kości udowej, który pozwala na fizjologiczne obciążanie zwierzęcia po usunięciu zewnętrznego stabilizatora.

Skuteczny i powtarzalny protokół osteogenezy dyfuzyjnej w modelu szczurzym prowadzący do funkcjonalnej regeneracji kości udowej

Celem protokołu jest zmierzenie zakresu ruchu kolana szczura. Skutki różnych chorób, które zwiększają sztywność stawu kolanowego i skuteczność leczenia, można określić ilościowo.

Używanie artrometru kolana do oceny specyficznego dla tkanki wkładu w przykurcz zgięcia kolana u szczura

Modele in vivo krytycznych wymiarów kości u ssaków są niezbędne dla badaczy badających mechanizmy leczenia i terapie ortopedyczne. W tym miejscu wprowadzamy protokół tworzenia powtarzalnych, segmentowych ubytków kości udowej u szczurów stabilizowanych za pomocą stabilizacji zewnętrznej.

Wiarygodny i powtarzalny model segmentalnej wady kości udowej o krytycznej wielkości u szczurów stabilizowany za pomocą niestandardowego stabilizatora zewnętrznego

Procedura ta demonstruje transport poprzeczny kory piszczelowej u szczurów, umożliwiając wizualizację i analizę rewaskularyzacji podczas niedokrwienia kończyny.

Model szczura transportu poprzecznego kory piszczelowej do leczenia niedokrwienia kończyn dolnych

Badanie innowacyjne łączy szwy i igły tytanowe do stabilnej wewnętrznej fiksacji w modelu złamania promieniowego szczura. Gojenje złamań oceniono za pomocą mikrotomografii komputerowej (mikro-CT), a neurony pierwotnego zwoja korzenia grzbietowego (DRG) zostały wyizolowane i hodowane do dalszych badań.

Opracowanie nowego modelu wewnętrznego fiksacji dla złamań promieniowych szczurów: ocena gojenia złamań i izolacja gangliów korzenia grzbietowego

Badania nad rozwojem podniebienia są motywowane występowaniem rozszczepu podniebienia, wady wrodzonej, która stanowi ogromne obciążenie dla zdrowia i może pozostawić trwałe zniekształcenie. Demonstrujemy tutaj technikę hodowli półek podniebiennych, którą można wykorzystać do badania różnych szlaków sygnałowych zaangażowanych w rozwój i fuzję podniebienia.

Metoda badania fuzji podniebienia z wykorzystaniem statycznej hodowli narządów

Poznaj miniinwazyjną technikę stabilizacji wewnętrznej stawu kolanowego u szczurów. Ta metoda umożliwia badanie molekularnych mechanizmów przykurczu zgięciowego z minimalnym urazem dla zwierzęcia.

Miniinwazyjna technika stabilizacji wewnętrznej do badania przykurczu zgięciowego kolana wywołanego unieruchomieniem u szczurów

Przeglądaj więcej filmów