Name: Standaryzowana indukcja wstrząsu krwotocznego prowadzona za pomocą oksymetrii mózgowej i rozszerzonego monitorowania hemodynamicznego u świń (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 51 s
Description: Poznaj standaryzowany model wstrząsu krwotocznego u świń z wykorzystaniem oksymetrii mózgowej i zaawansowanego monitorowania hemodynamicznego. Ta metoda umożliwia ocenę różnych strategii terapeutycznych w kontrolowanych warunkach translacyjnych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy pragną podziękować Dagmar Dirvonskis za doskonałe wsparcie techniczne.

Eksperymenty w tym protokole zostały zatwierdzone przez Państwowy i Instytucjonalny Komitet Opieki nad Zwierzętami (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblencja, Niemcy; Przewodnicząca: dr Silvia Eisch-Wolf; numer referencyjny: 23 177-07/G 14-1-084; 02.02.2015). Eksperymenty przeprowadzono zgodnie z wytycznymi Animal Research Reporting of In Vivo Experiments (ARRIVE). Badanie zostało zaplanowane i przeprowadzone w okresie od listopada 2015 r. do marca 2016 r. Po szeroko zakrojonych badaniach literaturowych model świni został wybrany jako dobrze znany model wstrząsu krwotocznego. W protokole uwzględniono siedem znieczulonych samców świń (Sus scrofa domestica) o średniej wadze 28 ± 2 kg i wieku 2-3 miesięcy. Zwierzętami opiekował się lokalny hodowca, który został zarekomendowany przez Państwowy i Instytucjonalny Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami. Zwierzęta były trzymane w znanym im środowisku tak długo, jak to możliwe, aby zminimalizować stres. Jedzenie, ale nie woda, zostały pozbawione jedzenia na 6 godzin przed planowanym eksperymentem, aby zmniejszyć ryzyko zachłyśnięcia. Reprezentatywny przebieg czasowy jest wyświetlany w Rysunek 1.
1. Znieczulenie, intubacja i wentylacja mechaniczna
<ol>
	<li>Spokojne świnie z połączonym wstrzyknięciem ketaminy (4 mg·kg-1) i azaperonu (8 mg·kg-1) w szyję lub mięsień pośladkowy za pomocą igły do wstrzykiwań domięśniowych (1,2 mm). Upewnij się, że zwierzęta pozostają stabilne do momentu pojawienia się sedacji. 
	ostrożność: Rękawiczki są absolutnie niezbędne podczas pracy ze zwierzętami.</li>
	<li>Przetransportuj uśpione zwierzęta do laboratorium. 
	nuta: Zwierzęta zapadają w głęboki sen i nie budzą się podczas normalnego obchodzenia się z nimi, na przykład gdy są przenoszone do klatki transportowej. W tym ustawieniu czas transportu wynosił około 20 minut specjalnym vanem do transportu zwierząt.</li>
	<li>Monitoruj obwodowe nasycenie tlenem (SpO2) za pomocą czujnika przypiętego do ogona lub ucha świni bezpośrednio po przybyciu.</li>
	<li>Zdezynfekuj skórę bezbarwną nalewką dezynfekującą i odczekaj 3 minuty przed wprowadzeniem cewnika do żył obwodowych (1,2 mm) do żyły usznej. Następnie należy wywołać znieczulenie poprzez dożylne wstrzyknięcie fentanylu (4 μg·kg-1) i propofolu (3 mg·kg-1).</li>
	<li>Kiedy wszystkie odruchy są nieobecne, a spontaniczne oddychanie ustaje, ułóż świnie w pozycji leżącej na noszach i przymocuj je bandażami. 
	nuta: Odpowiedni poziom znieczulenia musi zostać potwierdzony przez doświadczonego badacza poprzez brak odruchu powiek i innych reakcji na bodźce zewnętrzne.</li>
	<li>Natychmiast rozpocznij wentylację nieinwazyjną za pomocą maski wentylacyjnej dla psa (rozmiar 2). Stosować następujące parametry wentylacji: wdechowa frakcja tlenu (FiO2) = 1,0; częstość oddechów = 14-16 min-1; szczytowe ciśnienie wdechowe <20 cm H2O, dodatnie ciśnienie wydechowe (PEEP) = 5 cm H2O.</li>
	<li>Utrzymuj znieczulenie poprzez ciągły wlew fentanylu (0,1-0,2 μg·kg-1·h-1) i propofolu (8-12 mg·kg-1·h-1) i rozpocznij infuzję zbilansowanego roztworu elektrolitów (5 ml ·kg-1·h-1).</li>
	<li>Ułatwić intubację dotchawiczą poprzez zastosowanie środka zwiotczającego mięśnie (atrakurium 0,5 mg·kg-1).</li>
	<li>Zabezpiecz drogi oddechowe poprzez intubację za pomocą wspólnej rurki dotchawiczej (ID 6-7) i wprowadzacza. Użyj zwykłego laryngoskopu z ostrzem Macintosh (rozmiar 4). Procedurę ułatwiają dwie osoby.
	<ol>
		<li>Osoba 1: Przymocuj język na zewnątrz kawałkiem chusteczki i otwórz pysk drugą ręką.</li>
		<li>Osoba 2: Wykonaj laryngoskopię.</li>
		<li>Osoba 2: Kiedy nagłośnia pojawi się w polu widzenia, przesuń laryngoskop brzusznie. Podnieś nagłośnię i upewnij się, że struny głosowe są widoczne. 
		nuta: Jeśli nagłośnia nie porusza się grzbietowo, przykleja się do miękkiego podniebienia i może zostać zmobilizowana przez końcówkę rurki. Alternatywnie można użyć ostrza o innym rozmiarze (3 lub 5) lub typie (ostrze Millera).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Ostrożnie przesuń rurkę przez struny głosowe. 
	nuta: Najwęższy punkt tchawicy nie znajduje się na poziomie strun głosowych, ale podgłośniowy. Jeśli włożenie rurki nie jest możliwe, spróbuj obrócić rurkę lub użyć mniejszej rurki.</li>
	<li>Wyciągnąć wprowadzacz z tubki, za pomocą strzykawki o pojemności 10 ml zablokować mankiet 10 ml powietrza i kontrolować ciśnienie w mankiecie za pomocą menedżera mankietu (30 cm H2O).</li>
	<li>Wentylację mechaniczną należy rozpocząć po podłączeniu rurki do wentylatora (PEEP = 5 cm H2O; objętość oddechowa = 8 ml·kg-1; FiO2 = 0,4; stosunek inspiracji do wydechu = 1:2; częstość oddechów = zmienna w celu osiągnięcia końcowego oddechu CO2 wynoszącego <6 kPa). 
	nuta: Unikaj wahań CO2 , aby zminimalizować wpływ układu oddechowego na perfuzję mózgową.</li>
	<li>Upewnij się, że pozycja rurki jest prawidłowa poprzez regularne i okresowe wydychanie CO2 za pomocą kapnografii i sprawdź dwustronną wentylację przez osłuchiwanie. 
	nuta: Jeśli rurka zostanie umieszczona nieprawidłowo, powietrze wdmuchiwane do żołądka szybko tworzy widoczne wybrzuszenie w ścianie brzucha, jeszcze przed zainstalowaniem kapnografii. W takim przypadku wymiana rurki i wprowadzenie sondy żołądkowej są absolutnie konieczne.</li>
	<li>W przypadku dwóch osób umieść sondę żołądkową w żołądku, aby uniknąć refluksu i wymiotów.
	<ol>
		<li>Osoba 1: Przymocuj język na zewnątrz kawałkiem chusteczki i otwórz pysk drugą ręką.</li>
		<li>Osoba 2: Wykonaj laryngoskopię krtani świni.</li>
		<li>Osoba 2: Wizualizuj przełyk.</li>
		<li>Osoba 2: Wepchnij rurkę żołądkową do przełyku za pomocą kleszczy Magilla, aż płyn żołądkowy zostanie opróżniony. 
		nuta: Czasami wizualizacja nie jest łatwa. W takim przypadku przesuń laryngoskop grzbietowo do rurki i popchnij go brzusznie, aby otworzyć przełyk. Podczas zabiegu ciało zwierzęcia przykrywa się kocami, aby uniknąć hipotermii. Jeśli temperatura ciała zwierzęcia spadnie, należy użyć systemu grzewczego, aby ustabilizować temperaturę na poziomie fizjologicznym (patrz Tabela Materiałów). Temperatura ciała jest wyświetlana na ekranie PiCCO.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Oprzyrządowanie
<ol>
	<li>Użyj bandaży, aby odciągnąć tylne nogi, aby wygładzić fałdy w okolicy kości udowej w celu cewnikowania naczyń.</li>
	<li>Przygotuj następujące materiały: jedną strzykawkę 5 ml, jedną strzykawkę 10 ml, jedną strzykawkę 50 ml, jedną igłę Seldingera, osłonki wprowadzające (2 mm, 2,7 mm, 2,7 mm), prowadniki osłonek, cewnik do żyły centralnej z trzema portami (2,3 mm, 30 cm) z prowadnikiem oraz cewnik PiCCO (1,67 mm, 20 cm).</li>
	<li>Zdezynfekuj okolicę pachwinową kolorową dezynfekcją, odczekaj 2 minuty i zetrzyj dezynfekcję sterylną chusteczką. Powtórz tę procedurę 3 razy. Po trzecim razie nie usuwaj dezynfekcji.</li>
	<li>Napełnij wszystkie cewniki roztworami soli fizjologicznej.</li>
	<li>Nałóż żel ultradźwiękowy na sondę ultrasonograficzną. Przykryj okolicę pachwinową sterylną zasłoną z okienkami i zeskanuj prawe naczynia udowe za pomocą ultradźwięków. Użyj techniki Dopplera, aby odróżnić tętnicę od żyły18.</li>
	<li>Jaskrawoczerwona, pulsująca krew potwierdza pozycję aspirowanej igły. Odłączyć strzykawkę i wprowadzić prowadnik do prawej tętnicy udowej.</li>
	<li>Uwidocznić oś podłużną prawej żyły udowej i wprowadzić igłę Seldingera pod stałą aspiracją za pomocą strzykawki o pojemności 5 ml.</li>
	<li>Odessać ciemnoczerwoną, niepulsującą krew żylną.</li>
	<li>Wizualizuj osiowo prawą tętnicę udową i przełącz się na widok wzdłużny tętnicy, obracając sondę o 90°.</li>
	<li>Nakłuć prawą tętnicę udową pod wizualizacją USG igłą Seldinger w stałym zasysaniu za pomocą strzykawki 5 ml. 
	UWAGA: Technika Seldingera pod kontrolą USG wiąże się ze znacznie niższą utratą krwi, urazami tkanek i zużyciem czasu niż inne metody dostępu naczyniowego19,20.
	<ol>
		<li>Jeśli nie można z całą pewnością ustalić prawidłowego położenia igły w różnych naczyniach, należy wziąć sondy krwi i przeanalizować zawartość gazometrii za pomocą analizatora gazometrii (patrz tabela materiałów). Wysoki poziom tlenu jest dobrym znakiem krwi tętniczej, a niski poziom tlenu jest oznaką krwi żylnej.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wprowadzić prowadnik cewnika do żyły środkowej do prawej żyły udowej po odłączeniu strzykawki i wsunięciu igły Seldingera.</li>
	<li>Wizualizuj oba prawe naczynia za pomocą ultradźwięków, aby kontrolować prawidłowe położenie drutu.</li>
	<li>Wsuń osłonę wprowadzającą tętnicę (2 mm) przez prowadnik do prawej tętnicy i zabezpiecz pozycję za pomocą aspiracji krwi.</li>
	<li>Użyj techniki Seldingera, aby ustawić centralną linię żylną w prawej żyle udowej. Zassać wszystkie porty i przepłukać je roztworem soli fizjologicznej.</li>
	<li>Wykonaj tę samą procedurę po lewej stronie pachwinowej, aby wprowadzić pozostałe osłonki wprowadzające w technice Seldingera do lewej tętnicy udowej (2,7 mm) i żyły udowej (2,7 mm).</li>
	<li>Połącz prawą osłonkę wprowadzającą tętnicę i centralny cewnik żylny z dwoma systemami przetworników do pomiaru hemodynamiki inwazyjnej i ustaw oba przetworniki na poziomie serca, aby uzyskać odpowiednie wartości.</li>
	<li>Przełącz zawory odcinające obu przetworników na otwarte do atmosfery, aby skalibrować systemy na 0, zgodnie z instrukcją obsługi. 
	nuta: Absolutnie konieczne jest unikanie wszelkich pęcherzyków powietrza i plam krwi w systemach, aby wygenerować wiarygodne wartości.</li>
	<li>Zamień wszystkie napary w celu utrzymania znieczulenia z żyły obwodowej na centralną linię żylną.</li>
	<li>Należy przyjąć wartości wyjściowe (hemodynamika, spirometria, NIRS (patrz punkt 4) i PiCCO (patrz punkt 3) po 15 minutach rekonwalescencji.</li>
	<li>Rozpocząć wstrząs krwotoczny (patrz punkt 5).</li>
</ol>
3. Pomiar PiCCO
UWAGA: Dla sprzętu PiCCO, zobacz Tabelę Materiałów.
<ol>
	<li>Wprowadzić cewnik PiCCO do prawej osłonki wprowadzającej tętnicę. 
	nuta: W medycynie klinicznej cewniki PiCCO są umieszczane bezpośrednio za pomocą techniki Seldingera. Jednak możliwe jest również umieszczenie za pomocą osłony wprowadzającej.</li>
	<li>Podłącz cewnik do przewodu tętniczego systemu PiCCO, a przetwornik tętniczy bezpośrednio do portu PiCCO. Następnie ponownie skalibruj zgodnie z opisem w kroku 2.17.</li>
	<li>Połączyć żylną jednostkę pomiarową systemu PiCCO z lewą osłonką wprowadzającą żyłę. 
	nuta: Konieczne jest połączenie sond żylnych i tętniczych w pewnej odległości od siebie. W przeciwnym razie pomiar zostanie zakłócony, ponieważ podanie zimnego roztworu soli fizjologicznej do układu żylnego wpłynie na pomiar tętniczy. Aby uzyskać więcej informacji na temat PiCCO, zobacz Mayer and Suttner21.</li>
	<li>Włącz system PiCCO i potwierdź, że mierzony jest nowy pacjent.</li>
	<li>Wprowadź wielkość i wagę zwierzęcia i zmień kategorię na dorosłe.</li>
	<li>Wprowadź nazwę i identyfikator protokołu, a następnie wprowadź Exit.</li>
	<li>Ustawić objętość wstrzyknięcia na 10 ml. 
	nuta: Objętość wybranego roztworu do wstrzykiwań może być różna. Większa objętość sprawia, że zmierzone wartości są bardziej miarodajne. Wybierz małą objętość, aby uniknąć efektów hemodilucji poprzez powtarzające się stosowanie.</li>
	<li>Wejdź do centralnego ciśnienia żylnego.</li>
	<li>Otwórz trójdrożny kran do atmosfery, kliknij Zero, aby skalibrować system, a następnie kliknij Wyjdź.</li>
	<li>Skalibruj ciągły pomiar rzutu serca zgodnie z następnym opisem i kliknij TD (Thermodilution). Przygotować fizjologiczny roztwór soli fizjologicznej o temperaturze 4 °C w strzykawce o pojemności 10 ml i kliknąć Start.</li>
	<li>Szybko i równomiernie wstrzyknąć 10 ml zimnego roztworu soli fizjologicznej do żylnej jednostki pomiarowej i poczekać, aż pomiar zostanie zakończony, a system zażąda powtórzenia.</li>
	<li>Powtarzaj tę procedurę, aż zostaną zakończone trzy pomiary.</li>
	<li>Pozwól systemowi obliczyć średnią wszystkich parametrów i kliknij Wyjdź.</li>
	<li>Po zakończeniu kalibracji natychmiast rozpocznij pomiar. Aby monitorować indukcję wstrząsu, skoncentruj się na parametrze indeksu sercowym pochodzącym z PiCCO.</li>
</ol>
4. Regionalne nasycenie natlenienia mózgu
UWAGA: Sprzęt do monitorowania regionalnego natlenienia mózgu znajduje się w Tabeli Materiałów.
<ol>
	<li>Ogolić czoło świni jednorazową maszynką do golenia i wodą i przykleić dwa samoprzylepne czujniki (patrz Tabela materiałów) NIRS do czoła świni.</li>
	<li>Podłącz przedwzmacniacz do monitora i podłącz złącza czujnika oznaczone kolorami do przedwzmacniacza.</li>
	<li>Zamknij preamp mechanizm blokujący i podłącz czujniki do czujników. 
	nuta: Aby rejestrować dane w czasie rzeczywistym, do monitora NIRS należy podłączyć pamięć flash USB.</li>
	<li>Włącz monitor, kliknij Nowy pacjent, wprowadź nazwę badania i kliknij Gotowe.</li>
	<li>Sprawdź sygnał przychodzący. Gdy sygnał jest stabilny, kliknij Menu linii bazowej i kliknij Ustaw linie bazowe. Jeśli linia bazowa została już wprowadzona, potwierdź nową linię bazową, klikając przycisk Tak i kliknij pozycję Znacznik zdarzenia.</li>
	<li>Wybierz zdarzenie za pomocą przycisków strzałek na klawiaturze i za pomocą opcji Następne zdarzenie; wybierz zdarzenie 3 Wprowadzenie i naciśnij Wybierz zdarzenie. 
	nuta: W celu uzyskania dalszych informacji należy zapoznać się z instrukcją obsługi systemu NIRS22.</li>
</ol>
5. Indukcja wstrząsu krwotocznego
<ol>
	<li>Połącz lewą osłonę wprowadzającą z kurkiem w kształcie drzewa. Połączyć jeden port trójdrogowego zaworu odcinającego ze strzykawką o pojemności 50 ml i jeden z pustą butelką infuzyjną. 
	nuta: Alternatywnie, pobrana krew może zostać zebrana w workach cytrynowanych w celu późniejszej autotransfuzji. Jest to główna zaleta kontrolowanego pobierania krwi.</li>
	<li>Zmierz i udokumentuj dokładne parametry hemodynamiczne i oblicz 40% wskaźnika serca i średniego ciśnienia tętniczego jako cele hemodynamiczne. Ustaw zdarzenie 93 Utrata krwi w systemie NIRS zgodnie z opisem w kroku 4.6. 
	nuta: Wstrząs krwotoczny osiąga się, gdy wskaźnik serca i średnie ciśnienie tętnicze spadną poniżej 40% wartości wyjściowej. Znaczny spadek regionalnego nasycenia utlenowaniem mózgu (crSO2) o 20% jest korzystny, aby zobrazować upośledzenie mikrokrążenia. Średnia utrata krwi, aby to osiągnąć, mieści się w zakresie 25-35 ml·kg-1.</li>
	<li>Odessać 50 ml krwi do strzykawki i przełączyć zawór trójdrożny. Wepchnij krew do pustej butelki.</li>
	<li>Zwróć uwagę na usuniętą objętość krwi.</li>
	<li>Uważnie monitoruj ciśnienie tętnicze krwi, indeks sercowy i crSO2. Powtarzaj pobieranie krwi aż do osiągnięcia docelowego ciśnienia krwi i indeksu sercowego (po 20-30 minutach).</li>
	<li>Ustaw zdarzenie 97 Niedociśnienie w urządzeniu NIRS zgodnie z opisem w kroku 4.6. 
	nuta: Nie należy pobierać krwi zbyt szybko, ponieważ niesie to ze sobą ryzyko natychmiastowej niewydolności krążeniowo-naczyniowej. Po zakończeniu procedury indukcji wstrząsu zwierzęta mogą być wykorzystywane do różnych interwencji terapeutycznych.</li>
</ol>
6. Koniec eksperymentu i eutanazja
<ol>
	<li>Wstrzyknąć 0,5 mg fentanylu do centralnej linii żylnej i odczekać 5 minut.</li>
	<li>Wstrzyknąć 200 mg propofolu do centralnej linii żylnej i poddać zwierzę eutanazji 40 mmol chlorku potasu.</li>
</ol>

Urządzenie NIRS zostało bezwarunkowo dostarczone przez firmę Medtronic PLC, USA, do celów badań eksperymentalnych. Alexander Ziebart, Andreas Garcia-Bardon i Erik K. Hartmann otrzymali honoraria instruktorskie za kursy szkoleniowe dla lekarzy od Medtronic PLC. Żaden z autorów nie zgłasza finansowych lub innych konfliktów interesów.

Protokół opisuje jedną z metod wywoływania wstrząsu krwotocznego poprzez kontrolowane krwawienie tętnicze u świń, która jest kierowana przez hemodynamikę ogólnoustrojową, a także przez upośledzenie mikrokrążenia w mózgu. Warunki wstrząsu uzyskano poprzez obliczone pobranie krwi na poziomie 25-35 ml kg-1 i potwierdzone wspomnianym złożeniem parametrów zastępczych wskazujących na znaczną niewydolność krążeniowo-krążeniową. Nieleczona procedura ta była śmiertelna w ciągu 2 godzin u 66% zwierząt, co podkreśla powa...

Ogromna utrata krwi jest jedną z głównych przyczyn zgonów związanych z urazami1,2,3. Utrata płynu krążeniowego i nośników tlenu prowadzi do niewydolności hemodynamicznej i poważnego niedoboru tlenu oraz może spowodować nieodwracalną niewydolność narządów i śmierć. Na poziom ciężkości wstrząsu mają wpływ dodatkowe czynniki, takie jak hipotermia, koagulopatia i kwasica4. Szczególnie mózg, ale także nerki nie mają zdolności kompensacyjnej z powodu wysokiego zapotrzebowania na tlen i niezdolności do odpowiedniego wytwarzania energii beztlenowej5,6. W celach terapeutycznych kluczowe jest szybkie i natychmiastowe działanie. W praktyce klinicznej resuscytacja płynowa za pomocą zbilansowanego roztworu elektrolitu jest pierwszą opcją leczenia, a następnie podawaniem koncentratów krwinek czerwonych i świeżo mrożonego osocza. Koncentraty trombocytów, katecholaminy oraz optymalizacja krzepnięcia i statusu kwasowo-zasadowego wspomagają terapię w celu odzyskania normalnych warunków fizjologicznych po doznanym urazie. Koncepcja ta koncentruje się na przywróceniu hemodynamiki i makrokrążenia. Kilka badań pokazuje jednak, że perfuzja mikrokrążeniowa nie wraca do normy jednocześnie z makrokrążeniem. W szczególności perfuzja mózgowa pozostaje upośledzona i może wystąpić dalsze niedobór tlenu7,8.
Wykorzystanie modeli zwierzęcych pozwala naukowcom na tworzenie nowatorskich lub eksperymentalnych strategii. Porównywalna anatomia, homologia i fizjologia świń i ludzi umożliwia wyciągnięcie wniosków na temat określonych czynników patologicznych. Oba gatunki mają podobny układ metaboliczny i odpowiedź na leczenie farmakologiczne. Jest to ogromna zaleta w porównaniu z modelami na małych zwierzętach, w których różnice w objętości krwi, hemodynamice i ogólnej fizjologii sprawiają, że prawie niemożliwe jest naśladowanie scenariusza klinicznego9. Ponadto autoryzowany sprzęt medyczny i materiały eksploatacyjne mogą być z łatwością stosowane w modelach świń. Dodatkowo, łatwo jest pozyskać świnie od komercyjnych dostawców, co pozwala na dużą różnorodność genetyki i fenotypów oraz obniża koszty10. Model pobierania krwi przez kaniulację naczyń krwionośnych jest dość powszechny11,12,13,14,15.
W tym badaniu rozszerzamy koncepcję indukcji wstrząsu krwotocznego poprzez pobranie krwi tętniczej z dokładnym dokładnym dostosowaniem niewydolności hemodynamicznej i upośledzenia utlenowania mózgu. Wstrząs krwotoczny osiąga się, gdy wskaźnik serca i średnie ciśnienie tętnicze spadną poniżej 40% wartości wyjściowej, co jak wykazano, powoduje znaczne pogorszenie nasycenia regionalnego natlenienia mózgu8. Pomiar konturu tętna i pojemności minutowej serca (PiCCO) służy do ciągłego monitorowania hemodynamicznego. Po pierwsze, system musi zostać skalibrowany za pomocą przezpłucnej termorozcieńczalni, która umożliwia obliczenie wskaźnika sercowego zawartości wody w płucach pozanaczyniowych i globalnej objętości końcoworozkurczowej. Następnie ciągły wskaźnik serca jest obliczany za pomocą analizy konturu tętna i zapewnia również dynamiczne parametry napięcia wstępnego, takie jak ciśnienie tętna i zmienność objętości wyrzutowej.
Ta technika jest dobrze znana w warunkach klinicznych i eksperymentalnych. Spektroskopia bliskiej podczerwieni (NIRS) to klinicznie i eksperymentalnie opracowana metoda monitorowania zmian w zaopatrzeniu mózgu w tlen w czasie rzeczywistym. Samoprzylepne czujniki są przymocowane do lewego i prawego czoła i nieinwazyjnie obliczają natlenienie mózgu w korze czołowej mózgu. Dwie długości fal światła podczerwonego (700 i 900 nm) są emitowane i wykrywane przez czujniki po odbiciu od tkanki kory mózgowej. Aby ocenić zawartość tlenu w mózgu, udział krwi tętniczej i żylnej jest obliczany w stosunku 1:3 i aktualizowany w odstępach 5-sekundowych. Czułość na głębokości 1-4 cm zmniejsza się wykładniczo i ma na nią wpływ penetrowana tkanka (np. skóra i kości), chociaż czaszka jest przezroczysta dla światła podczerwonego. Technika ta umożliwia szybkie działania terapeutyczne w celu zapobiegania niekorzystnym skutkom, takim jak majaczenie lub niedotlenienie mózgu, i służy jako parametr docelowy w przypadku upośledzenia pojemności minutowej serca16,17. Połączenie obu technik podczas wstrząsu eksperymentalnego umożliwia dokładne miareczkowanie makrokrążenia, a także upośledzenia mikrokrążenia w mózgu, w celu zbadania tego zagrażającego życiu zdarzenia.

<table><tbody><tr><td>Kran 3-drogowy niebieski</td><td>Becton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg, Szwecja</td><td></td><td>394602 Drug Administration</td></tr><tr><td>3-drożny kran czerwony</td><td>Becton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg, Szwecja</td><td>394605</td><td>Drug administration/Indukcja wstrząsu</td></tr><tr><td>Atracurium</td><td>Hikma Pharma GmbH , Martinsried</td><td>AM03AC04*</td><td>Anesthesia</td></tr><tr><td>Canula 20 G</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Hiszpania</td><td>301300</td><td>Dostęp naczyniowy</td></tr><tr><td>Datex Ohmeda S5</td><td>GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finlandia-Monitor</td><td></td> <td>hemodynamiczny</td></tr><tr><td>Dezynfekcja&nbsp;</td><td>Sch&uuml; lke & Mayr GmbH, Niemcy</td><td>104802</td><td>Dezynfekcja&nbsp;</td></tr><tr><td>Heidelberger Verl&auml; ngerung 75CM</td><td>Fresenius Kabi Deutschland GmbH</td><td>2873112 &nbsp;</td><td>Podawanie leków/indukcja wstrząsu</td></tr><tr><td>INVOS 5100C Cerebral</td><td>Medtronic PLC,</td><td></td> <td>USA-Monitore do regionalnego natleniania mózgu&nbsp;</td></tr><tr><td>INVOS Pulsoksymetria mózgowa/somatyczna Czujniki dla dorosłych Medtronic</td><td>PLC, USA</td><td>20884521211152</td><td>Monitorowanie regionalnego natlenienia mózgu&nbsp;</td></tr><tr><td>Rurka dotchawicza</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malezja</td><td>112482</td><td>Intubacja</td></tr><tr><td>Wprowadzenie rurki dotchawiczej</td><td>&nbsp; Wirutec GmbH, Sulzbach, Niemcy</td><td>5033062</td><td>Intubation</td></tr><tr><td>Engstr&ouml; m Carestation</td><td>GE Heathcare, Madison USA-Respirator</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Fentanyl</td><td>Janssen-Cilag GmbH, Neuss</td><td>AA0014*</td>Rękawice <td>anestezjologiczne</td></tr><tr><td></td><td>Paul Hartmann, Heidenheim, Niemcy</td><td>9422131</td><td>Samoobrona</td></tr><tr><td>Incetomat-line 150 cm</td><td>Fresenius, Kabi GmbH, Bad Homburg, Niemcy</td><td>9004112</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>Ketamine</td><td>Hameln Pharmaceuticals GmbH, Zofingen, Schweiz</td><td>AN01AX03*</td><td></td></tr><tr><td>Laryngoskop</td> sedacyjny <td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malezja</td><td>671067-000020</td><td>Intubacja</td></tr><tr><td>Logiczny system monitorowania ciśnienia</td><td>Smith- Medical GmbH,&nbsp; Minneapolis, USA</td><td>MX9606</td><td>Monitor hemodynamiczny</td></tr><tr><td>Logicath 7 Fr 3-lumen 30 cm</td><td>Smith- Medical GmbH,&nbsp; Minneapolis, Stany Zjednoczone</td><td>MXA233x30x70-E</td><td>Dostęp naczyniowy/Podawanie leków</td></tr><tr><td>Masimo Radical 7</td><td>Masimo Corporation, Irvine, USA-Monitor</td><td></td> <td>hemodynamiczny</td></tr><tr><td>Maska do wentylacji psów</td><td>Henry Schein, Melville, USA</td><td>730-246</td><td>Wentylacja</td></tr><tr><td>Oryginalna strzykawka Perfusor 50 mL Luer Lock</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Niemcy</td><td>8728810F</td><td>Administracja leków</td></tr><tr><td>PICCO Termorozcieńczenie. F5/20CM EW&nbsp;</td><td>MAQUET Cardiovascular GmbH, Rastatt, Niemcy</td><td>PV2015L20-A &nbsp;</td><td>Monitor hemodynamiczny</td></tr><tr><td>Zestaw wprowadzający osłonkę przezskórną 8,5 i 9 Fr, 10 cm ze zintegrowanym zaworem hemostazy/bocznym</td><td>portem Arrow international inc., Reading, USA</td><td>AK-07903</td><td>Dostęp naczyniowy/indukcja wstrząsu</td></tr><tr><td>Perfusor FM Braun</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Niemcy</td><td>8713820</td><td>Administracja leków</td></tr><tr><td>Chlorek potasu</td><td>Fresenius, Kabi GmbH, Bad Homburg, Niemcy</td><td>6178549</td><td>Eutanazja</td></tr><tr><td>Propofol 2%</td><td>Fresenius, Kabi GmbH, Bad Homburg, Niemcy</td><td>&nbsp; AN01AX10*</td><td>Znieczulenie</td></tr><tr><td>&nbsp; Rzut serca konturu tętna (PiCCO2)&nbsp;</td><td>Pulsion Medical Systems, Feldkirchen,</td> <td>Niemcy-Monitor</td> <td>hemodynamiczny</td></tr><tr><td>Sonosite Micromaxx Ultrasoundsystem</td><td>Fujifilm, Sonosite Bothell, Bothell, USA&nbsp;</td><td>-</td><td>Dostęp naczyniowy</td></tr><tr><td>Nierdzewny Macintosh Rozmiar 4</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Perak,&nbsp; Malezja</td><td>670000</td><td>Intubacja</td></tr><tr><td>Sterofundin</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Niemcy</td><td>AB05BB01*</td><td>zbilansowany wlew elektrolitów</td></tr><tr><td>Stresnil 40 mg/mL&nbsp; &nbsp;</td><td>Lilly Germany GmbH, Wiesbaden, Niemcy</td><td>QN05AD90</td> Strzykawka <td>sedacyjna</td></tr><tr><td>10 ml</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Hiszpania</td><td>309110</td> Strzykawka <td>do podawania leków</td></tr><tr><td>2 ml</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Hiszpania</td><td>300928</td> Strzykawka do <td>podawania leków</td></tr><tr><td>20 ml</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Hiszpania</td><td>300296</td><td>Lek Administracja</td></tr><tr><td>Strzykawka 5 ml</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Hiszpania</td><td>309050</td><td>Podawanie leków</td></tr><tr><td>Cewnik dożylny 22 G</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Niemcy</td><td>4269110S-01</td><td>Dostęp naczyniowy</td></tr><tr><td>*ATC:&nbsp; Anatomiczny Terapeutyczny Chemiczny / Zdefiniowana Dawka Dobowa Klasyfikacja&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

standaryzowana indukcja wstrząsu krwotocznego prowadzona za pomocą oksymetrii mózgowej i rozszerzonego monitorowania hemodynamicznego u świń

Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs

Wstrząs krwotoczny jest jednym z głównych powodów śmierci związanej z poważnymi obrażeniami. Utrata objętości krążenia i nośników tlenu może prowadzić do niewystarczającego zaopatrzenia w tlen i nieodwracalnej niewydolności narządów. Mózg wywiera ograniczone zdolności kompensacyjne i jest szczególnie narażony na wysokie ryzyko ciężkiego uszkodzenia hipoksyjnego. W artykule przedstawiono odtwarzalną indukcję zagrażającego życiu wstrząsu krwotocznego w modelu świniowym za pomocą obliczonego pobrania krwi. Miareczkujemy indukcję wstrząsu pod kierunkiem spektroskopii w bliskiej podczerwieni i rozszerzonego monitorowania hemodynamicznego, aby pokazać ogólnoustrojową niewydolność krążenia, a także mikrokrążeniowy niedobór tlenu w mózgu. W porównaniu z podobnymi modelami, które koncentrują się przede wszystkim na predefiniowanych objętościach usuwania w celu indukcji uderzeniowej, podejście to kładzie nacisk na miareczkowanie za pomocą wynikającego z tego uszkodzenia makro- i mikrokrążenia.

Po rozpoczęciu indukcji wstrząsu może być zarejestrowany krótki czas kompensacji. Wraz z postępującym usuwaniem krwi występuje wspomniana niewydolność krążenia sercowo-naczyniowego, monitorowana poprzez znaczny spadek crSO2, wskaźnika sercowego, wskaźnika objętości krwi w klatce piersiowej oraz globalnego wskaźnika objętości końcowodorozkurczowej (Rycina 2, Rycina 3 oraz Rycina 4). Ponadto...

Wstrząs krwotoczny jest poważnym powikłaniem u poważnie rannych pacjentów, co prowadzi do zagrażającego życiu niedoboru tlenu. Przedstawiamy znormalizowaną metodę wywoływania wstrząsu krwotocznego poprzez pobranie krwi u świń, która jest kierowana przez hemodynamikę i mikrokrążeniowe natlenienie mózgu.

Standaryzowana indukcja wstrząsu krwotocznego prowadzona za pomocą oksymetrii mózgowej i rozszerzonego monitorowania hemodynamicznego u świń

Hemorrhagic shock ranks among the main reasons for severe injury-related death. The loss of circulatory volume and oxygen carriers can lead to an ...

Ten ustandaryzowany model indukcji wstrząsu krwotocznego sterowany przez tlenometrię mózgową i zewnętrzne monitorowanie hemodynamiczne może być wykorzystany do symulacji realistycznego scenariusza klinicznego. Główną zaletą tego modelu jest jego prosta i bardzo elastyczna konstrukcja, która pozwala na łatwy wybór różnych stopni upośledzenia krążenia i komórki. Technika ta pozwala na ocenę różnych koncepcji terapii wstrząsu krwotocznego, takich jak resuscytacja płynowa, krzepnięcie i terapia katecholaminaminowa.Technika ta zapewnia wgląd w różne patofizjologiczne aspekty wstrząsu krwotocznego i wpływ hemodynamiczny na regionalne utlenowanie mózgu, oceniane za pomocą spektroskopii w bliskiej podczerwieni. Wizualizacja wstrząsu krwotocznego może mieć kluczowe znaczenie, ponieważ mechanizmy kompensacyjne zwierząt mogą ukrywać niestabilność hemodynamiczną przez długi czas. Przed rozpoczęciem pokrywania okolicy pachwinowej nałóż żel ultradźwiękowy na sondę ultrasonograficzną i przykryj pachwinę znieczulonej około 28 kilogramowej świni w wieku od dwóch do trzech miesięcy sterylnym serwetem z fenestracją.Zeskanuj prawe naczynia udowe za pomocą ultradźwięków przy użyciu techniki dopplerowskiej, aby odróżnić tętnicę od żyły. Wizualizuj oś podłużną prawej tętnicy udowej i nakłuj prawą tętnicę udową pod wizualizacją ultrasonograficzną za pomocą igły Seldinger pod stałą aspiracją za pomocą pięciomililitrowej strzykawki. Jaskrawoczerwona, pulsująca krew potwierdza prawidłowe ułożenie aspirowanej igły.Po odłączeniu strzykawki należy włożyć przewód doprowadzający i schować igłę Seldingera. Wizualizuj prawą żyłę udową przed obróceniem sondy o 90 stopni, aby przełączyć się na widok wzdłużny żyły. Następnie należy nakłuć prawą żyłę udową pod wizualizacją USG za pomocą igły Seldingera pod stałą aspiracją za pomocą pięciomililitrowej strzykawki.Wysoki poziom tlenu wskazuje na krew tętniczą, a niski poziom tlenu jest oznaką krwi żylnej. Po odłączeniu strzykawki należy wprowadzić drut doprowadzający i schować igłę Seldingera. Wizualizuj oba prawe naczynia pod ultradźwiękami, aby kontrolować prawidłowe położenie drutu i wepchnij dwumilimetrową osłonkę wprowadzającą tętnicę przez przewód prowadzący do prawej tętnicy i centralną linię żylną do prawej żyły udowej.Następnie zassać wszystkie porty i przepłukać je roztworem soli fizjologicznej. W celu obliczenia rzutu serca konturu tętna lub pomiaru PiCCO, należy wprowadzić cewnik PiCCO do prawej osłony wprowadzającej tętnicę i podłączyć cewnik do przewodu tętniczego systemu PiCCO i głowicy tętniczej bezpośrednio do portu PiCCO. Następnie połącz żylną jednostkę pomiarową systemu PiCCO z prawą osłonką wprowadzającą żylną.Przełączyć trójdrożne zawory odcinające obu przetworników na otwarte do atmosfery, aby skalibrować systemy do zera, zgodnie z instrukcjami producenta. Włącz system PiCCO i potwierdź, że mierzony jest nowy pacjent. Aby skalibrować ciągły pomiar rzutu serca, kliknij TD dla termorozcieńczenia i załaduj roztwór soli fizjologicznej o temperaturze czterech stopni Celsjusza do 10-mililitrowej strzykawki.Kliknij start i szybko i stabilnie wstrzyknij 10 mililitrów zimnego roztworu soli fizjologicznej do żylnej jednostki pomiarowej. Następnie poczekaj, aż pomiar zostanie zakończony, a system poprosi o powtórzenie, zanim powtórzysz procedurę jeszcze dwa razy. W celu monitorowania regionalnego natlenienia mózgu należy najpierw przykleić dwa samoprzylepne czujniki spektroskopii bliskiej podczerwieni do czoła świni i podłączyć przedwzmacniacz do monitora, a oznaczone kolorami złącza czujnika do przedwzmacniacza.Zamknij pre-amp mechanizm blokujący i przymocuj czujniki do czujników. Po włączeniu monitora należy kliknąć na nowego pacjenta, wpisać nazwę badania, a następnie kliknąć przycisk Gotowe. Sprawdź sygnał przychodzący.Gdy sygnał jest stabilny, kliknij menu linii bazowej i ustaw linie bazowe. Jeśli linia bazowa została już wprowadzona, kliknij tak i znacznik zdarzenia, aby potwierdzić nową linię bazową. Następnie użyj przycisków strzałek na klawiaturze w obszarze następnego zdarzenia, aby wybrać trzy zdarzenia indukcyjne, a następnie wybierz zdarzenie.W celu indukcji wstrząsu krwotocznego należy połączyć lewą osłonę wprowadzacza tętniczego z trójdrożnym kranem i wyposażyć jeden port trójdrożnego kranu w 50-mililitrową strzykawkę, a drugi w pustą butelkę infuzyjną. Zmierz i udokumentuj dokładne parametry hemodynamiczne i oblicz 40% wskaźnika serca i średniego ciśnienia tętniczego jako cele hemodynamiczne. Wybierz zdarzenie utraty krwi 93 w systemie spektroskopii bliskiej podczerwieni i odessać 50 mililitrów krwi do strzykawki.Przełączyć zawór odcinający drogę do drzewa i wepchnąć krew do pustej butelki. Zwróć uwagę na usuniętą objętość krwi i uważnie monitoruj ciśnienie tętnicze krwi, indeks serca i nasycenie regionalnego natlenienia mózgu. Następnie wybierz zdarzenie niedociśnienia 97.Stosowanie wstrząsu krwotocznego ma trudne krytyczne aspekty i powinno być wykonywane z ostrożnością, ponieważ niestabilność hemodynamiczna może prowadzić do nagłej śmierci. Przy trwającym usuwaniu krwi dochodzi do dekompensacji krążenia krążeniowo-naczyniowego, monitorowanej przez znaczny spadek regionalnego wysycenia tlenem mózgu, indeksu sercowego, wskaźnika objętości krwi w klatce piersiowej i globalnego wskaźnika objętości rozkurczowej. Ponadto znaczna tachykardia i spadek ciśnienia tętniczego krwi są częstymi objawami wstrząsu krwotocznego.Zmienność objętości skoku znacznie wzrasta, podczas gdy zewnątrznaczyniowa zawartość wody w płucach i ogólnoustrojowy opór naczyniowy zwykle pozostają nienaruszone. Po zakończeniu pobierania krwi wartości hemodynamiczne i regionalne nasycenie natlenieniem mózgu zwykle pozostają na krytycznie niskim poziomie. Zawartość hemoglobiny i hematokrytu nie zmniejsza się bezpośrednio podczas indukcji wstrząsu krwotocznego, ale poziom mleczanu wzrasta, a wysycenie tlenem w żyłach centralnych maleje.Wstrząs krwotoczny jest poważnym powikłaniem u ciężko rannych pacjentów, które może prowadzić do zagrażającego życiu braku tlenu. Konieczna jest szybka i skuteczna terapia, aby uniknąć poważnego uszkodzenia narządów. Procedura ta może być rozszerzoną koncepcją terapii hemodynamicznej, takiej jak resuscytacja płynowa lub podawanie katecholamin.Zbadanie różnych metod optymalizacji leczenia. Ten nowy model toruje drogę do oceny nowych koncepcji terapii wstrząsu krwotocznego, ponieważ symuluje realistyczny scenariusz podobny do klinicznych sytuacji nagłych. Praca z krwią ludzką i zwierzęcą może być niebezpieczna.Zawsze noś rękawice, maskę na twarz i okulary ochronne, aby uniknąć zakażenia chorobami zakaźnymi.

standardized-hemorrhagic-shock-induction-guided-cerebral-oximetry

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

encefalopatia niedotlenieniowo-niedokrwienna po uduszeniu okołoporodowym może być badana na modelach zwierzęcych. Przedstawiono procedury niezbędne do ustalenia modelu encefalopatii niedotlenieniowo-niedokrwiennej noworodków u prosiąt.

Model prosięcia encefalopatii niedotlenieniowo-niedokrwiennej noworodków

Przedstawiamy protokół tworzenia dysfunkcji prawej komory u świni poprzez indukowanie ARDS. Wykazano inwazyjne monitorowanie rzutu serca lewej i prawej komory za pomocą sond przepływu wokół aorty i tętnicy płucnej, a także pomiary ciśnienia krwi w aorcie i tętnicy płucnej.

Inwazyjne monitorowanie hemodynamiczne hemodynamiki aorty i tętnic płucnych w dużym modelu zwierzęcym ARDS

Tutaj prezentujemy protokół demonstrujący model wstrząsu krwotocznego u świń, który wykorzystuje okluzję aorty jako pomost do ostatecznej opieki w przypadku urazu. Model ten ma zastosowanie w testowaniu szerokiego zakresu chirurgicznych i farmakologicznych strategii terapeutycznych.

Całkowita i częściowa niedrożność aorty w leczeniu wstrząsu krwotocznego u świń

Mikrokrążenie rdzenia kręgowego odgrywa kluczową rolę w uszkodzeniu rdzenia kręgowego. Większość metod nie pozwala na ocenę mikrokrążenia rdzenia kręgowego w czasie rzeczywistym, co jest niezbędne do opracowania terapii ukierunkowanych na mikrokrążenie. W tym miejscu proponujemy protokół z użyciem sond Laser-Doppler-Flow Needle w dużym zwierzęcym modelu niedokrwienia/reperfuzji.

Ocena mikroperfuzji rdzenia kręgowego w czasie rzeczywistym w świńskim modelu niedokrwienia/reperfuzji

Prezentowany tutaj jest protokół pomiaru natlenienia nerek w rdzeniu i nieinwazyjnego ciśnienia parcjalnego tlenu w moczu w modelu świni ze wstrząsem krwotocznym, aby ustalić ciśnienie parcjalne tlenu w moczu jako wczesny wskaźnik ostrego uszkodzenia nerek (AKI) i nowy punkt końcowy reanimacji.

Nieinwazyjne i inwazyjne monitorowanie niedotlenienia nerek w świńskim modelu wstrząsu krwotocznego

Ten artykuł ma na celu dostarczenie badaczom szczegółowego i przystępnego przewodnika, jak skonfigurować model wstrząsu krwotocznego u niemowląt świń.

Opis modelu wstrząsu krwotocznego o kontrolowanej objętości u niemowląt świń

Udostępniamy protokół dla eksperymentalnego modelu wstrząsu endotoksemicznego u świń poprzez infuzję lipopolisacharydu.

Napar lipopolisacharydowy jako model wstrząsu endotoksemicznego u świń

Wstrząs krwotoczny zabija co roku 1,9 miliona ludzi na całym świecie. Małe zwierzęta są często wykorzystywane jako modele wstrząsu krwotocznego, ale wiążą się z problemami standaryzacji, odtwarzalności i znaczenia klinicznego, co ogranicza ich znaczenie. W artykule opisano opracowanie nowego, klinicznie istotnego modelu wstrząsu krwotocznego u szczurów.

Opracowanie klinicznie istotnego modelu wstrząsu krwotocznego u szczurów

Model wstrząsu krwotocznego jest wiarygodnym i powtarzalnym narzędziem ułatwiającym identyfikację i zrozumienie kaskad sygnalizacyjnych związanych ze stanem zapalnym i uszkodzeniem narządów końcowych po urazach. Niniejszy artykuł zawiera szczegółowy opis krok po kroku aspektów chirurgicznych i mechanicznych związanych z procedurą eksperymentalną wstrząsu krwotocznego u myszy.

Stała objętość czy stałe ciśnienie: mysi model wstrząsu krwotocznego

Wykazano, że monitorowanie perfuzji mózgowej poprawia dokładność modeli udaru niedokrwiennego. Trudności techniczne często ograniczają wykorzystanie tego niezbędnego narzędzia do badań naczyń mózgowych. W tym filmie pokazano zoptymalizowany system do uzyskania jedno- lub wielomiejscowego monitorowania hemodynamicznego podczas śródświetlnej niedrożności tętnicy środkowej mózgu u szczurów.

Zoptymalizowany system do monitorowania perfuzji mózgowej w modelu udaru szczura wewnątrzświetlnej niedrożności tętnicy środkowej mózgu

Poznaj standaryzowany model wstrząsu krwotocznego u świń z wykorzystaniem oksymetrii mózgowej i zaawansowanego monitorowania hemodynamicznego. Ta metoda umożliwia ocenę różnych strategii terapeutycznych w kontrolowanych warunkach translacyjnych.

Standaryzowana indukcja wstrząsu krwotocznego prowadzona za pomocą oksymetrii mózgowej i rozszerzonego monitorowania hemodynamicznego u świń (Wideo) | JoVE Journal

Standaryzowana indukcja wstrząsu krwotocznego prowadzona za pomocą oksymetrii mózgowej i rozszerzonego monitorowania hemodynamicznego u świń

Przeglądaj więcej filmów