19 września 2019
Przedstawiono tutaj protokół indukcji rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu za pomocą urządzenia do bocznego wkłuwania płynu, a następnie pobierania zawartości kątnicy do analizy mikrobiomu jelitowego.
Równoczesność i linie interakcji między mózgiem a mikrobiotą jelitową pozostają nieznane. Za pomocą tej techniki można zbadać zmiany w mikrobiocie jelitowej po urazowym uszkodzeniu mózgu u myszy. Główną zaletą tej techniki jest to, że jest stosunkowo prosta i wydajna.
Procedurę zademonstruje Wendong You, doktorant z mojego laboratorium. W przypadku indukcji urazowego uszkodzenia mózgu potwierdź brak reakcji na uszczypnięcie palca u znieczulonej myszy i nałóż maść na oczy zwierzęcia. Po goleniu zdezynfekuj odsłoniętą skórę głowy 70% etanolem, a następnie nacinaj skórę głowy w płaszczyźnie strzałkowej.
Za pomocą kleszczy cofnij nacięcie po obu stronach i lekko oddziel okostną. Użyj markera, aby narysować okrąg o średnicy trzech milimetrów w prawej okolicy ciemieniowej czaszki, dwa milimetry od linii środkowej. Użyj wiertarki elektrycznej, aby ostrożnie przebić czaszkę, nie uszkadzając opony twardej.
Usuń płat kostny, aby odsłonić trzymilimetrowe okienko kostne i umieść plastikową kaniulę na kraniotomii. Po przyklejeniu kaniuli do czaszki akrylowym akrylem dentystycznym, użyj pięciomililitrowej strzykawki, aby napełnić kaniulę sterylną 0,9% solą fizjologiczną normalną, uważając, aby nie powstały pęcherzyki. Włącz oscyloskop i amplifier.
Upewnij się, że rurka wysokociśnieniowa bocznego urządzenia do udarowego uszkadzania płynu jest wolna od pęcherzyków powietrza i dostarczaj około 10 impulsów testowych, aż urządzenie wyda stały sygnał. Dostosuj kąt pozycji początkowej wahadła, aby osiągnąć intensywność impulsu około dwóch standardowych atmosfer i podłącz kaniulę do bocznego urządzenia do urazu płynu. Pociągnij za spust, aby zwolnić wahadło, wywołując uszkodzenie mózgu.
Następnie uzyskaj i prześlij impuls do opony twardej przez cały zamknięty, wypełniony płynem system rurek. Po indukcji urazu mózgu usuń kaniulę i zszyj nacięcie. Następnie umieść mysz na poduszce grzewczej z monitorowaniem, aż zacznie chodzić, zanim zwierzę wróci do klatki domowej z dostępem ad libitum do jedzenia i wody.
We wskazanych punktach czasowych eksperymentu należy odsłonić jelita zgodnie ze standardowymi protokołami i użyć atraumatycznych kleszczy, aby delikatnie oddzielić kątnicę od pozostałych dróg pokarmowych. Po zlokalizowaniu tkanki odetnij kątnicę ostrymi nożyczkami i ręcznie wyekstrahuj zawartość kątnicy na sterylny opatrunek. Następnie przenieś zawartość do 1,5-mililitrowej probówki mikrowirówkowej, do przechowywania w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza do czasu analizy mikrobiomu.
Sekwencjonowanie rekombinowanego DNA 16S wykazuje zmniejszoną różnorodność mikrobioty kątnicy u myszy trzy dni po urazowym uszkodzeniu mózgu, przy czym najliczniejsze taksony znajdują się w treści kątnicy w grupach pozorowanych i urazowych uszkodzeń mózgu pokazanych na rysunku. Co więcej, niemetryczne, wielowymiarowe skalowanie ujawnia zmiany w składzie mikrobioty kątnicy po urazowym uszkodzeniu mózgu. Pamiętaj, aby zachować oponę twardą w stanie nienaruszonym podczas wiercenia czaszki i zachować ostrożność podczas lokalizowania i oddzielania kątnicy od innych przewodów pokarmowych.
Po tej procedurze można przeprowadzić barwienie i analizę hematoksyliny i eozyny w celu zbadania zmiany histologicznej i odpowiedzi zapalnej w przewodzie pokarmowym po urazowym uszkodzeniu mózgu.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie przedstawia protokół indukowania rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu (TBI) u myszy przy użyciu bocznego urządzenia do perkusji płynowej. Po wystąpieniu urazu w badaniu analizowane są zmiany w mikrobiocie jelitowej poprzez pobieranie zawartości kątnicy do analizy. Podejście to ma na celu wyjaśnienie interakcji między urazem mózgu a składem mikrobioty jelitowej.
Niniejszy protokół umożliwia mechaniczną redukcję ryzyka w badaniach nad osią mikrobiota-jelita-mózg w kontekście urazowego uszkodzenia mózgu, zapewniając powtarzalny model oceny zmian w mikrobiomie po urazie. Wspiera on walidację celów oraz odkrywanie biomarkerów poprzez powiązanie urazu neurologicznego z mierzalnymi przesunięciami w składzie mikrobioty kąkika. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną w badaniach przedklinicznych dzięki standaryzacji procesów indukcji TBI oraz pobierania próbek mikrobiomu.
Metoda ta łączy biologię odkrywczą z walidacją przedkliniczną poprzez standaryzację indukcji TBI oraz analizy mikrobiomu jelitowego w celu zmniejszenia ryzyka związanego z doborem celu terapeutycznego.