Name: Badanie echokardiograficzne przezklatkowe w modelu królika (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-06-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 46 s
Description: Poznaj protokół echokardiografii przezklatkowej w modelu królika, obejmujący pozycjonowanie zwierzęcia oraz akwizycję obrazów w różnych projekcjach. Metoda ta umożliwia nieinwazyjną ocenę funkcji serca w badaniach kardiologicznych.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ta praca była częściowo wspierana przez: Fundación Séneca, Agencia de Ciencia y Tecnología, Región de Murcia, Spain (JT) (numer grantu: 11935/PI/09) oraz University of Reading, Wielka Brytania (AG, GB) (Central Funding). Fundatorzy nie odgrywali żadnej roli w projektowaniu badania, gromadzeniu i analizie danych, podejmowaniu decyzji o publikacji ani przygotowaniu manuskryptu.

<ol><li>Pogwizd, S. M., Bers, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+models+of+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Discovery+Today+Disease+Models%22%5BJournal%5D)">Rabbit models of heart disease.</a> Drug Discovery Today Disease Models. 5, 185-193 (2008).</li>
<li>Gandolfi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+animal+models+for+cardiac+stem+cell+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Theriogenology%22%5BJournal%5D)">Large animal models for cardiac stem cell therapies.</a> Theriogenology. 75, 1416-1425 (2011).</li>
<li>Harding, J., Roberts, R. M., Mirochnitchenko, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+animal+models+for+stem+cell+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research+%26+Therapy%22%5BJournal%5D)">Large animal models for stem cell therapy.</a> Stem Cell Research & Therapy. 4, 23(2013).</li>
<li>Chong, J. J., Murry, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+regeneration+using+pluripotent+stem+cells--progression+to+large+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Cardiac regeneration using pluripotent stem cells--progression to large animal models.</a> Stem Cell Research. 13, 654-665 (2014).</li>
<li>Del, M. F., Mynett, J. R., Sugden, P. H., Poole-Wilson, P. A., Harding, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+mechanism+of+the+species+difference+in+the+contractile+response+of+ventricular+myocytes+to+endothelin-1%5BTitle%5D)+AND+%22Cardioscience%22%5BJournal%5D)">Subcellular mechanism of the species difference in the contractile response of ventricular myocytes to endothelin-1.</a> Cardioscience. 4, 185-191 (1993).</li>
<li>Sahn, D. J., DeMaria, A., Kisslo, J., Weyman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+regarding+quantitation+in+M-mode+echocardiography%3A+results+of+a+survey+of+echocardiographic+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Recommendations regarding quantitation in M-mode echocardiography: results of a survey of echocardiographic measurements.</a> Circulation. 58, 1072-1083 (1978).</li>
<li>Thomas, W. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+for+standards+in+transthoracic+two-dimensional+echocardiography+in+the+dog+and+cat.+Echocardiography+Committee+of+the+Specialty+of+Cardiology%2C+American+College+of+Veterinary+Internal+Medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Veterinary+Internal+Medicine%22%5BJournal%5D)">Recommendations for standards in transthoracic two-dimensional echocardiography in the dog and cat. Echocardiography Committee of the Specialty of Cardiology, American College of Veterinary Internal Medicine.</a> Journal of Veterinary Internal Medicine. 7, 247-252 (1993).</li>
<li>Lang, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendations+for+cardiac+chamber+quantification+by+echocardiography+in+adults%3A+an+update+from+the+American+Society+of+Echocardiography+and+the+European+Association+of+Cardiovascular+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Recommendations for cardiac chamber quantification by echocardiography in adults: an update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging.</a> European Heart Journal Cardiovascular Imaging. 16, 233-270 (2015).</li>
<li>Talavera, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Upgrade+on+the+Rabbit+Model+of+Anthracycline-Induced+Cardiomyopathy%3A+Shorter+Protocol%2C+Reduced+Mortality%2C+and+Higher+Incidence+of+Overt+Dilated+Cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Research+International%22%5BJournal%5D)">An Upgrade on the Rabbit Model of Anthracycline-Induced Cardiomyopathy: Shorter Protocol, Reduced Mortality, and Higher Incidence of Overt Dilated Cardiomyopathy.</a> BioMed Research International. 2015, 465342(2015).</li>
<li>Borkowski, R., Karas, A. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sedation+and+anesthesia+of+pet+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Techniques+in+Small+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Sedation and anesthesia of pet rabbits.</a> Clinical Techniques in Small Animal Practice. 14, 44-49 (1999).</li>
<li>Cantwell, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ferret%2C+rabbit+and+rodent+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22The+Veterinary+Clinics+of+North+America.+Exotic+Animal+Practice%22%5BJournal%5D)">Ferret, rabbit and rodent anesthesia.</a> The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 4, 169-191 (2001).</li>
<li>Giraldo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+intramyocardial+injection+of+amniotic+membrane-derived+mesenchymal+stem+cells+improves+ventricular+function+and+survival+in+non-ischaemic+cardiomyopathy+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">Percutaneous intramyocardial injection of amniotic membrane-derived mesenchymal stem cells improves ventricular function and survival in non-ischaemic cardiomyopathy in rabbits.</a> European Heart Journal. 36, 149(2015).</li>
<li>Giraldo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allogeneic+amniotic+membrane-derived+mesenchymal+stem+cell+therapy+is+cardioprotective%2C+restores+myocardial+function%2C+and+improves+survival+in+a+model+of+anthracycline-induced+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Heart+Failure%22%5BJournal%5D)">Allogeneic amniotic membrane-derived mesenchymal stem cell therapy is cardioprotective, restores myocardial function, and improves survival in a model of anthracycline-induced cardiomyopathy.</a> European Journal of Heart Failure. 19, 594(2017).</li>
<li>Bellenger, N. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+left+ventricular+ejection+fraction+and+volumes+in+heart+failure+by+echocardiography%2C+radionuclide+ventriculography+and+cardiovascular+magnetic+resonance%3B+are+they+interchangeable%3F%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">Comparison of left ventricular ejection fraction and volumes in heart failure by echocardiography, radionuclide ventriculography and cardiovascular magnetic resonance; are they interchangeable?</a> European Heart Journal. 21, 1387-1396 (2000).</li>
<li>Flachskampf, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+Imaging+to+Evaluate+Left+Ventricular+Diastolic+Function%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+College+of+Cardiology+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Cardiac Imaging to Evaluate Left Ventricular Diastolic Function.</a> Journal of the American College of Cardiology Cardiovascular Imaging. 8, 1071-1093 (2015).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Opisaliśmy protokół badania echokardiograficznego parametrów funkcji serca u królika, reprezentujący duży model przedkliniczny 1,2,3. Opisana w niniejszym dokumencie metodologia krok po kroku powinna być traktowana jako wytyczne, które wraz z uzupełniającym badaniem podstawowych zasad echokardiografii oraz podstawową wiedzą z zakresu obrazowania ultrasonograficznego, pomogą badaczowi uzyskać, poprzez praktykę oraz uzupełniające ...

Podłużna ocena funkcji serca w dużych modelach zwierzęcych jest solidną metodologią badawczą, powszechnie używaną do oceny efektów nowych terapii w leczeniu kardiomiopatii niedokrwiennej i nieniedokrwiennej. Wśród kilku technik obrazowania układu sercowo-naczyniowego dostępnych do badań przedklinicznych, echokardiografia jest szeroko stosowana ze względu na jej nieinwazyjne i przenośne właściwości. W doświadczonych rękach echokardiografia jest również bardzo powtarzalną techniką obrazowania do badania anatomii serca, a także skurczowej i rozkurczowej funkcji serca.
Duże przedkliniczne modele zwierzęce, takie jak świnie, psy i króliki, są niezbędne dla przedklinicznych badań translacyjnych1,2,3. Rzeczywiście, potencjalne korzyści płynące z nowatorskich terapii, takich jak medycyna regeneracyjna serca, w warunkach kardiomiopatii wymagają szeroko zakrojonych testów hipotez w dużych modelach przedklinicznych, zanim będzie można je rozważyć do stosowania u ludzi2,4. W porównaniu z innymi dużymi modelami przedklinicznymi, model królika ma pewne zalety, w tym niskie koszty utrzymania, które są porównywalne z kosztami utrzymania myszy i szczurów. Jednak w przeciwieństwie do myszy i szczurów, system transportu Ca+2 i elektrofizjologia serca są podobne u królików jak u ludzi i u innych dużych modeli zwierzęcych, takich jak psy i świnie, zwiększając w ten sposób potencjał translacyjny modelu królika1,5. W związku z tym królik, jako duży eksperymentalny model przedkliniczny, ma wyjątkową równowagę między kosztami a odtwarzalnością w przedklinicznych badaniach translacyjnych.
Królik ma dodatkową zaletę w postaci możliwości obrazowania echokardiograficznego za pomocą klinicznych jednostek ultradźwiękowych rutynowo stosowanych u pacjentów ludzkich i weterynaryjnych, wykorzystując w ten sposób przewagę obrazowania harmonicznego i najnowocześniejszej technologii. W tym celu preferowane są przetworniki sektorowe (znane również jako matryca fazowa) o stosunkowo wysokiej częstotliwości (do 12 MHz), takie jak te stosowane w kardiologii noworodków/dzieci. Badanie echokardiograficzne w modelu przedklinicznym królika pozwala na pełną ocenę funkcji skurczowej i rozkurczowej przy użyciu wielu widoków i różnych trybów dostępnych w nowoczesnych jednostkach echokardiograficznych (np. Doppler fali ciągłej (CWD), Doppler fali pulsacyjnej (PWD), obrazowanie dopplerowskie tkanek (TDI)).
Echokardiografia jest techniką zależną od operatora i dlatego wymaga rozległego szkolenia i podstawowej wiedzy na temat tej techniki, zgodnie z międzynarodowymi wytycznymi. Część tego szkolenia może być ułatwiona dzięki wizualizacji filmów wyjaśniających szczegółowo, w jaki sposób można uzyskać różne widoki echokardiograficzne. Osiągnięcie wysokich kompetencji w zakresie obrazowania echokardiograficznego, a także opracowanie ustandaryzowanego protokołu i prawidłowej techniki, są niezbędne do zminimalizowania wpływu operatora i wygenerowania wiarygodnych danych ilościowych, zgodnie z wymogami rygorystycznych badań naukowych.
Konieczne są pewne względy dotyczące systemu i konfiguracji laboratoryjnej używanej do echokardiografii u królików i innych dużych modeli zwierzęcych. W przypadku standardowej echokardiograficznej oceny czynności serca przezklatkowej, system ultrasonograficzny musi obejmować następujące modalności: tryb dwuwymiarowy (tryb B lub 2D), tryb ruchu (tryb M), kolorowy Doppler, a także CWD, PWD i TDI. Co więcej, urządzenie powinno mieć zainstalowane pełne oprogramowanie do analizy i pomiaru serca, a także wystarczającą ilość miejsca na wewnętrznym dysku twardym, aby przechowywać wystarczającą ilość wysokiej jakości cyfrowych zdjęć i pętli wideo do analizy offline. Niektóre systemy wykorzystują przetworniki liniowe; Jednak w celu uzyskania najlepszego obrazowania serca preferowane są przetworniki sektorowe Phased Array o małej średnicy głowicy skanującej, ponieważ umożliwiają one łatwiejsze przechodzenie fal ultradźwiękowych przez wąskie przestrzenie międzyżebrowe. W przypadku królików stosujemy przetworniki o stosunkowo wysokiej częstotliwości (do 12 MHz). Pozycja zwierzęcia do obrazowania ma ogromne znaczenie dla uzyskania dobrej jakości obrazów. W związku z tym zaleca się zarówno prawą, jak i lewą boczną pozycję leżącą, aby uzyskać wszystkie standardowe płaszczyzny obrazowania podczas badania echokardiograficznego. W tym celu wskazany jest stół z wycięciem, które pokrywa się z obszarem serca klatki piersiowej (ryc. 1A). Ten karbowany stół ułatwia dostęp przetwornikiem do obszaru klatki piersiowej, który będzie skanowany, a tym samym umożliwia swobodną ruchomość ręki operatora przy zachowaniu najlepszej pozycji skanowania zwierzęcia. Ułożenie zwierzęcia w bocznej pozycji leżącej powoduje opadnięcie serca w kierunku przetwornika i uniesienie płuc, a także poszerzenie okna dostępu wiązki ultradźwiękowej przez przestrzenie międzyżebrowe, poprawiając w ten sposób ogólną jakość obrazowania (ryc. 1A). Badanie echokardiograficzne powinno być wykonywane w sposób zaślepiony i zgodnie z wytycznymi Komitetu Echokardiografii American College of Veterinary Internal Medicine oraz American Society of Echocardiography/European Association for Cardiovascular Imaging6,7,8.
Część naszego zespołu naukowego jest związana z Serwisem Kardiologicznym Weterynaryjnego Szpitala Klinicznego, który codziennie opiekuje się pacjentami weterynaryjnymi (np. psami i kotami), dla których posiada odpowiednie szkolenie i akredytację w zakresie kardiologii weterynaryjnej i echokardiografii, a także różnych metod obrazowania, a także obszerne doświadczenie w obrazowaniu różnych rozmiarów pacjentów zwierzęcych i zgodności klatki piersiowej tą techniką. Ponadto powszechnie używamy echokardiografii do podłużnej oceny czynności serca w króliczym modelu kardiomiopatii indukowanej przez antracykliny9. W tym miejscu opisujemy krok po kroku protokół echokardiografii do oceny czynności serca przy użyciu klinicznego urządzenia ultrasonograficznego w dużym modelu przedklinicznym, takim jak królik. Protokół ten jest dostosowany do aktualnych międzynarodowych wytycznych8 i zawiera praktyczne zalecenia oparte na naszych własnych doświadczeniach w warunkach klinicznych i eksperymentalnych.

<table><tbody><tr><td>Bluesensor</td><td>Medicotest</td><td>13BY1062</td><td>Jednorazowe samoprzylepne czytniki EKG</td></tr><tr><td>Domtor (Medetomidine)</td><td>Esteve</td><td>CN 570686.3</td><td>Konieczna jest recepta weterynaryjna</td></tr><tr><td>System ultrasonograficzny HD11 XE</td><td>System</td><td></td><td>echokardiografii 10670267 Philips.</td></tr><tr><td>Poduszka grzewcza</td><td>Solac</td><td>CT8632</td><td></td></tr><tr><td>Imalgene (Ketamina)</td> <td>Merial</td><td>RN 9767</td><td>Konieczna jest recepta weterynaryjna</td></tr><tr><td>Strzykawka Omnifix-F 1 ml</td><td>Braun</td><td>9161406V</td><td></td></tr><tr><td>S12-4</td><td>Philips</td><td>B01YgG</td><td>4-12 MHz przetwornik matrycy fazowej</td></tr><tr><td>Żel do transmisji ultradźwięków (Aquasone)</td><td>Parker laboratories Inc.</td><td>Nr kat. 01-08</td><td></td></tr></tbody></table>

badanie echokardiograficzne przezklatkowe w modelu królika

Transthoracic Echocardiographic Examination in the Rabbit Model

Duże modele zwierzęce, takie jak królik, są cenne dla translacyjnych badań przedklinicznych. Króliki mają podobną elektrofizjologię serca w porównaniu do ludzi i innych dużych modeli zwierzęcych, takich jak psy i świnie. Model królika ma jednak dodatkową zaletę w postaci niższych kosztów utrzymania w porównaniu z innymi dużymi modelami zwierzęcymi. Podłużna ocena czynności serca za pomocą echokardiografii, jeśli jest odpowiednio wdrażana, jest użyteczną metodologią oceny przedklinicznej nowych terapii niewydolności serca ze zmniejszoną frakcją wyrzutową (np. regeneracja serca). Prawidłowe korzystanie z tego nieinwazyjnego narzędzia wymaga wdrożenia ustandaryzowanego protokołu badania zgodnego z międzynarodowymi wytycznymi. Tutaj opisujemy, krok po kroku, szczegółowy protokół nadzorowany przez kardiologów weterynaryjnych do wykonywania echokardiografii w modelu królika i pokazujemy, jak prawidłowo uzyskać różne widoki echokardiograficzne i płaszczyzny obrazowania, a także różne tryby obrazowania dostępne w systemie echokardiografii klinicznej rutynowo stosowanym u pacjentów i pacjentów weterynaryjnych.

Widok długiej osi serca w przekroju parasternalnym
Rysunek 5A przedstawia płaszczyznę obrazowania w prawym widoku PSLAX, w którym wyraźnie rozróżnia się 4 jamy serca. W tym widoku można zidentyfikować prawą komorę (RV), zastawkę trójdzielną (TV), IVS, LV, FW, a także zastawkę mitralną (MV). Gdy w tym widoku wierzchołek jest wyraźnie widoczny po lewej stronie obrazu, a LV nie jest sk...

Tutaj opisujemy, krok po kroku, szczegółowy protokół wykonywania echokardiografii w modelu królika. Pokazujemy, jak prawidłowo uzyskać różne widoki echokardiograficzne i płaszczyzny obrazowania, a także różne tryby obrazowania dostępne w systemie echokardiografii klinicznej rutynowo stosowanym u pacjentów i pacjentów weterynaryjnych.

Badanie echokardiograficzne przezklatkowe w modelu królika

Large animal models such as the rabbit are valuable for translational preclinical research. Rabbits have a similar cardiac electrophysiology compared to ...

Ten film ma na celu zademonstrowanie krok po kroku protokołu badania echokardiograficznego klasy badawczej na dużym modelu zwierzęcym, takim jak królik. Osiąga się to poprzez najpierw znieczulenie zwierzęcia, a następnie staranne przygotowanie klatki piersiowej do zabiegu. Następnie, po umieszczeniu królika na kocu termicznym i sprawdzeniu, czy sygnał EKG jest prawidłowo wyświetlany, ustaw zwierzę w prawej pozycji leżącej, aby uzyskać płaszczyzny obrazowania zarówno w widoku przymostkowym w długiej osi, jak i w przymostkowym widoku krótkiej osi serca.Następnie ustaw królika w lewej pozycji leżącej, aby uzyskać różne płaszczyzny obrazowania dostępne w wierzchołkowym widoku czterokomorowym i wierzchołkowym pięciokomorowym widoku serca. Filmy i zdjęcia powinny być rejestrowane w trybie B i M w celu analizy skurczowej czynności serca, a także w połączeniu z trybem B, kolorowym dopplerem i dopplerem fal pulsacyjnych, PWD, do analizy przepływu krwi. Lub kombinacja trybu B i obrazowania dopplerowskiego tkanek, TDI, trybów do analizy prędkości mięśnia sercowego w sercu królika.Ocena podłużna funkcji serca przy użyciu echokardiograficznych powiększonych modeli zwierzęcych służy jako metodologia oceny wierzchołkowej terapii niewydolności serca. Celem tego filmu jest zademonstrowanie krok po kroku protokołu echokardiograficznego do oceny funkcji serca przy użyciu krytycznego systemu ultrasonograficznego na dużym modelu przedklinicznym, takim jak królik. Protokół pokazany w tym filmie jest zgodny z aktualnymi międzynarodowymi wytycznymi.Uwzględniono również praktyczne zalecenia oparte na naszych własnych doświadczeniach w warunkach klinicznych i eksperymentalnych. Zanim przejdziesz dalej, zacznij od wstrzyknięcia kombinacji ketaminy i medetomidyny, aby znieczulić zwierzę. Po znieczuleniu zwierzęcia użyj maszynki do strzyżenia włosów, aby usunąć włosy ze skóry klatki piersiowej.Ogol od jednego do trzech centymetrów wewnętrznej powierzchni prawej kończyny przedniej, a także obszary przyśrodkowe zarówno prawej, jak i lewej kończyny tylnej. Po umieszczeniu królika na kocu termicznym nałóż odpowiedni żel przewodzący na elektrody i umieść je w ogolonych obszarach kończyn. Przymocuj elektrody taśmą chirurgiczną.Sprawdź, czy na ekranie systemu wyświetlany jest prawidłowy sygnał EKG. Aby uzyskać widok serca w długiej osi przymostkowej, umieść zwierzę w prawej bocznej pozycji leżącej z kończynami przednimi wyciągniętymi od klatki piersiowej za pomocą taśmy chirurgicznej. Ważne jest, aby skóra klatki piersiowej była jak najbardziej płaska.W tym celu jedną ręką trzymaj kończyny przednie z dala od klatki piersiowej, a wolną ręką identyfikuj wszelkie fałdy skórne i kieszenie, a następnie spłaszczaj je od góry do dołu, odsuwając fałdy skóry od klatki piersiowej i przesuwając narządy brzuszne w kierunku okolicy ogonowej poprzez delikatne masowanie. Nałóż żel transmisyjny ultradźwięków na głowicę przetwornika. Następnie umieść przetwornik blisko skóry prawego półmiączka na poziomie drugiej do trzeciej przestrzeni międzyżebrowej i w odległości około jednego do trzech centymetrów od prawej linii przymostkowej, tak aby znak orientacji przetwornika wskazywał na prawe ramię zwierzęcia.Należy uzyskać dwie płaszczyzny obrazowania w przymostkowym widoku krótkiej osi serca. Płaszczyzna obrazowania, która przecina serce wzdłużnie i na której można zidentyfikować wszystkie cztery komory serca, dwa przedsionki i dwie komory. Wykonuj subtelne ruchy przetwornika, takie jak zamiatanie, kołysanie i obrót względem przestrzeni międzyżebrowej, a także przedniego, tylnego i grzbietowo-brzusznego kąta wiązki ultradźwiękowej, aby uzyskać drugą płaszczyznę obrazowania widoku przymostkowego długiego osi.Po uzyskaniu tej płaszczyzny obrazowania będziesz w stanie zidentyfikować drogę odpływu lewej komory, LVOT i aortę. Po uzyskaniu odpowiedniej płaszczyzny obrazowania użyj kombinacji trybu B i kolorowego Dopplera, aby ocenić przepływ krwi przez wszystkie zastawki i integralność przegrody międzykomorowej. Gdy przetwornik znajduje się w widoku długiej osi przymostkowej, wykonaj obrót przetwornika w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara o około 90 stopni, aby uzyskać prawy widok krótkiej osi przymostkowej.Tym razem znak orientacji przetwornika powinien być skierowany w stronę lewego ramienia królika. Aby pomóc utrzymać przetwornik w tym samym miejscu klatki piersiowej podczas obracania przetwornika, użyj lewej ręki do wykonania obrotu ze sznurka przetwornika. W widoku krótkiej osi przymostkowej należy rutynowo uzyskać trzy płaszczyzny obrazowania, przesuwając głowicę wzdłuż osi serca.Płaszczyzna obrazowania komory środkowej, która dzieli serce na mięśniach brodawkowatych. Tutaj zazwyczaj można wizualizować prawą komorę u góry i lewą komorę u dołu obrazu. Korzystając z trybu B, możesz ocenić promieniowy i obwodowy skurcz oraz rozluźnienie lewej komory.Użyj trybu M, a następnie umieść kursor na środku lewej komory między oboma mięśniami brodawkowatymi. Przemiatając przetwornik w kierunku obszaru głowowego, powinieneś uzyskać płaszczyznę zastawki mitralnej. Użyj trybu B i trybu M i umieść kursor wzdłuż środka lewej komory, aby ocenić integralność i ruchliwość płatków zastawki mitralnej.Dalsze przesuwanie przetwornika w głąb czaszki spowoduje powstanie płaszczyzny obrazowania na poziomie wysokiej podstawy, znanej również jako płaszczyzna zastawki aortalnej. Aby w pełni uwidocznić tętnicę płucną i jej rozwidlenie, może być konieczne większe kątowanie, a czasem przemieszczenie czaszki przetwornika i przestrzeni międzyżebrowej. W tym widoku należy zidentyfikować zastawkę aortalną i jej płatki, prawy przedsionek, lewy przedsionek, drogę odpływu prawej komory, zastawkę płucną i tętnicę płucną.Użyj trybu B, a następnie użyj trybu M i umieść kursor wzdłuż zastawki aortalnej i lewego przedsionka. Na koniec użyj trybów dopplera kolorowego i dopplera z falą pulsacyjną, aby zarejestrować prędkość przepływu krwi na poziomie zastawki płucnej, umieszczając objętość próbki tuż poniżej otworu płatków zastawki płucnej. Aby uzyskać wierzchołkowy widok czterech komór, umieść królika w lewej bocznej pozycji leżącej, utrzymując płaską skórę klatki piersiowej w podobny sposób, jak opisano wcześniej.Nałóż żel ultradźwiękowy na głowicę, a następnie umieść go blisko skóry lewej półosi na poziomie czwartej i piątej przestrzeni międzyżebrowej z linią śródobojczykową ze znakiem orientacji przetwornika skierowanym w stronę grzbietu królika w kierunku lewej łopatki. Z tej pozycji, jeśli to konieczne, przesuń przetwornik w górę o jedną przestrzeń międzyżebrową na raz, manewr często nazywany zakupem okien. Po dotarciu do odpowiedniej przestrzeni międzyżebrowej należy obserwować obraz serca od wierzchołka do podstawy serca.Typowy kształt serca, w którym widać wszystkie cztery komory, z lewą i prawą komorą u góry i obiema przedsionkami u dołu obrazu. Użyj trybu B, aby sprawdzić, czy nie występują regionalne nieprawidłowości w ruchu ściany i uzyskać globalny widok funkcji lewej komory. Użyj kolorowego dopplera do oceny przepływu przez zastawki przedsionkowo-komorowe i użyj dopplera falą pulsacyjną i umieść objętość próbki na poziomie końcówek płatka zastawki mitralnej, aby uzyskać obrazy widma napływu zastawki mitralnej.Użyj trybu obrazowania dopplerowskiego tkanek i umieść objętość próbki po stronie przegrody i bocznych stron pierścienia zastawki mitralnej. Zaczynając od przetwornika w wierzchołkowym widoku czterech komór, wykonaj delikatne przechylenie serdecznie, aż pojawi się w polu widzenia droga odpływowa lewej komory i zastawka aortalna. Jest to wierzchołkowy widok serca z pięcioma komorami.Użyj trybu B, aby ocenić drogę odpływu lewej komory, ruch płatków zastawki aortalnej, a także rozmiar i funkcję jamy lewej komory. Użyj trybu kolorowego Dopplera do oceny odpływu przez zastawkę aortalną i użyj Dopplera fali pulsacyjnej, aby ocenić prędkość przepływu przez tę zastawkę, umieszczając objętość próbki tuż za zastawką aortalną. Tutaj pokazujemy płaszczyznę obrazowania prawej osi długiej przymostkowej, w której wyraźnie widać cztery komory serca.W tym widoku można zidentyfikować prawą komorę, lewą komorę, prawy przedsionek, lewy przedsionek, przegrodę międzykomorową, wolną ścianę lewej komory, a także zastawkę mitralną. W tym widoku możliwe jest dokładne oszacowanie objętości lewej komory przy użyciu metody dwupłaszczyznowej dysków. Jest to zmodyfikowana reguła Simpsonów, jak pokazano na tym obrazie w rozkurczu i skurczu.Tutaj pokazana jest druga płaszczyzna obrazowania prawej osi długiej przymostkowej. Miejsce umieszczenia suwmiarki w celu dokładnego pomiaru drogi odpływu lewej komory pokazano na tym rysunku. Na tym zdjęciu pokazano widok serca w krótkiej osi prawej przymostka na poziomie płaszczyzny mięśni brodawkowatych.W tym widoku można zidentyfikować prawą komorę, lewą komorę, przegrodę międzykomorową, wolną ścianę lewej komory, a także mięśnie brodawkowate przednio-boczne i tylno-przyśrodkowe. Przykład śladu trybu M w widoku krótkiej osi przymostkowej na poziomie mięśni brodawkowatych pokazano na tym obrazie, na którym pokazano również rozmieszczenie suwmiarki do pomiarów prawej komory, lewej komory, przegrody międzykomorowej i wolnej ściany lewej komory. Pokazano również pomiary odpowiadające średnicy rozkurczowej końca lewej komory, LVDd i średnicy skurczowej końca lewej komory, LVD.Jest to przykład śladu trybu M na poziomie płaszczyzny zastawki mitralnej w widoku krótkiej osi przymostkowej. Pokazano również położenie suwmiarki do pomiaru separacji przegrody w punkcie E, EPSS, zastawki mitralnej. Przykład analizy odpływu zastawki płucnej przy użyciu zarówno kolorowego dopplera, jak i dopplera fali pulsacyjnej pokazano na tym obrazie.Przykład dopływu zastawki mitralnej za pomocą kolorowego dopplera w wierzchołkowym widoku czterech komór pokazano tutaj. W tym samym widoku i przy użyciu dopplera fali pulsacyjnej można ocenić widmo napływu zastawki mitralnej, jak pokazano na tym obrazie, na którym łatwo rozróżnia się fale napełniania wczesne, E i późne A podczas rozkurczu. Obraz ten przedstawia przykład prędkości tkanki mięśnia sercowego przy użyciu dopplerowskiego obrazowania tkankowego z objętością próbki zlokalizowaną na ścianie przegrody pierścienia zastawki mitralnej.Składowa skurczowa jest oznaczona przez załamek S, podczas gdy fale E pierwsza i pierwsza A odpowiadają ruchowi mięśnia sercowego pierścienia zastawki mitralnej podczas wczesnego napełniania, E pierwszego i późnego wypełnienia, A pierwszego, składników rozkurczu. Zdjęcie przedstawia przykład kolorowego dopplera umieszczonego na drodze odpływu lewej komory w widoku wierzchołkowym z pięcioma komorami. Tutaj pokazujemy przykład, jak określić ilościowo odpływ zastawki aortalnej za pomocą sygnału dopplerowskiego fali pulsacyjnej do oceny całki objętościowo-czasowej, VTI, skurczowego czasu wyrzutu, ET, a także okresu przed wyrzutem, PEP, zastawki aortalnej.Opracowanie ustandaryzowanego protokołu i prawidłowej techniki jest niezbędne do zminimalizowania wpływu operatora i wygenerowania wiarygodnych danych ilościowych. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć podstawowe kroki, jak wykonać badanie przezklatkowe i kardiograficzne w modelu królika. Jeśli pójdziesz i ćwiczysz pod okiem mentora, pomoże Ci to odnaleźć i rozwinąć swoje umiejętności echokardiograficzne.W doświadczonych rękach badanie to można wykonać w ciągu 15 minut po wywołaniu znieczulenia.

transthoracic-echocardiographic-examination-in-the-rabbit-model

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Echokardiografia przezklatkowa stanowi nieinwazyjną metodę oceny funkcji serca u myszy. Połączenie obrazowania ultradźwiękowego i dopplerowskiego pozwala na wykonanie pomiarów wymiarów serca oraz przepływu krwi wewnątrzsercowego, co łącznie umożliwia ocenę funkcji skurczowej i rozkurczowej serca.

Echokardiografia przezklatkowa u myszy

Opisujemy badanie funkcji serca płodu za pomocą współczesnej funkcjonalnej echokardiografii płodu i ultrasonografii dopplerowskiej płodu za pomocą mikroultrasonografii VisualSonics VEVO 2100 w chirurgicznie indukowanym modelu wewnątrzmacicznego ograniczenia wzrostu płodu u królika.

Echokardiografia płodu i USG Dopplera falami pulsacyjnymi w króliczym modelu wewnątrzmacicznego ograniczenia wzrostu

Dysfunkcja prawej komory (RV) jest kluczowa dla patogenezy chorób sercowo-naczyniowych, jednak dostępne są ograniczone metodologie jej oceny. Ostatnie postępy w obrazowaniu ultrasonograficznym zapewniają nieinwazyjną i dokładną opcję podłużnego badania RV. W tym artykule szczegółowo opisujemy krok po kroku metodę echokardiograficzną wykorzystującą mysi model przeciążenia ciśnienia RV.

Ocena struktury i funkcji prawej komory serca w mysim modelu zwężenia tętnicy płucnej za pomocą echokardiografii przezklatkowej

Celem tego protokołu jest nieinwazyjna ocena zmian strukturalnych i funkcjonalnych w mysim modelu choroby serca powstałych w wyniku poprzecznego zwężenia aorty, przy użyciu echokardiografii w trybie B i M oraz obrazowania dopplerowskiego kolorem/falą tętna.

Ocena zmian morfologicznych i czynnościowych serca w mysim modelu poprzecznego zwężenia aorty za pomocą obrazowania echokardiograficznego

Nowatorskie strategie terapeutyczne w medycynie regeneracyjnej serca wymagają obszernych i szczegółowych badań na dużych przedklinicznych modelach zwierzęcych, zanim będą mogły być rozważane do zastosowania u ludzi. W tym miejscu demonstrujemy technikę przezskórnego wstrzykiwania domięśniowego do mięśnia sercowego pod kontrolą echokardiografii kontrastowej u królików, która jest cenna dla hipotezy testującej skuteczność takich nowatorskich terapii.

Przezskórna iniekcja domięśniowa pod kontrolą echokardiografii z kontrastem i dostarczanie komórek w dużym modelu przedklinicznym

Tutaj opisujemy i porównujemy dwie pozycje do uzyskania wierzchołkowego widoku czterokomorowego u myszy. Pozycje te umożliwiają ilościowe określenie funkcji prawej komory, zapewniają porównywalne wyniki i mogą być stosowane zamiennie.

Echokardiograficzny pomiar parametrów rozkurczowych prawej komory serca u myszy

W obecnym badaniu przedstawiono nieinwazyjny protokół oceny anatomii i funkcji serca metodą echokardiografii przezklatkowej u dorosłych szczurów. Szczegółowo badane są zastawki serca, wszystkie cztery komory serca oraz aorta wstępująca, łuk aorty i aorta zstępująca.

Echokardiograficzna ocena anatomii i funkcji serca u dorosłych szczurów

Niniejszy protokół opisuje echokardiograficzną charakterystykę morfologii i funkcji prawej komory w szczurzym modelu tętniczego nadciśnienia płucnego.

Kompleksowa echokardiograficzna ocena funkcji prawej komory serca w szczurzym modelu tętniczego nadciśnienia płucnego

Echokardiografia przezklatkowa jest testem diagnostycznym pierwszego rzutu dla dysfunkcji lewej komory po resuscytacji i zmian strukturalnych w świńskim modelu zatrzymania krążenia.

Echokardiografia przezklatkowa w celu oceny dysfunkcji lewej komory po resuscytacji po ostrym zawale mięśnia sercowego i zatrzymaniu krążenia u świń

Niewydolność prawego serca (RHF) charakteryzuje się prawostronnym rozszerzeniem i przerostem serca, co prowadzi do nieprawidłowego funkcjonowania komór i przedsionków. Chorobom krążeniowo-oddechowym związanym z RHF towarzyszy zwiększone ryzyko zaburzeń rytmu serca. W artykule opisano standaryzowany model RHF indukowanego pasmami tętnic płucnych związanego ze zwiększoną arytmogenezą komorową i przedsionkową.

Szczurzy model prawostronnej przebudowy serca i arytmii z wykorzystaniem pasma tętnicy płucnej

Poznaj protokół echokardiografii przezklatkowej w modelu królika, obejmujący pozycjonowanie zwierzęcia oraz akwizycję obrazów w różnych projekcjach. Metoda ta umożliwia nieinwazyjną ocenę funkcji serca w badaniach kardiologicznych.

Badanie echokardiograficzne przezklatkowe w modelu królika

Przeglądaj więcej filmów