23 sierpnia 2019
Opisany tutaj jest protokół do badania interakcji między endobiotykami a ludzką mikrobiotą jelitową za pomocą systemów fermentacji in vitro.
Nasz protokół może być szeroko stosowany do wysokowydajnych i szybkich badań przesiewowych interakcji między endobiotykami a ludzką mikrobiotą jelitową. Niski koszt i unikanie zakłóceń spowodowanych metabolizmem gospodarza. Procedura ta może być potencjalnie wykorzystana w diagnostyce.
Najpierw rozpuść BIF EPS i skrobię pojedynczo w gorącej wodzie na mieszadle magnetycznym, aby uzyskać stężenie ośmiu gramów na litr. Do przygotowanej podstawowej pożywki hodowlanej VI dodać 100 mililitrów roztworu BIF EPS, aby uzyskać roztwór BIF kultury VI. Dodaj 100 mililitrów roztworu skrobi, aby uzyskać roztwór skrobi kultury VI.
Autoklawować dwie pożywki ze źródłem węgla i pożywką bez źródła węgla jako kontrolą, w temperaturze 121 stopni Celsjusza przez 15 minut. Pozwól im ostygnąć do temperatury pokojowej i dodaj siano i cysteinę. Przenieść podpróbkę składającą się z pięciu mililitrów każdej pożywki do probówek hodowlanych.
I przechowywać w inkubatorze beztlenowym. Pozostałe nośniki przechowuj w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Aby przygotować ludzką próbkę kału, przenieś jeden gram świeżej próbki kału do 10 mililitrów 0,1 molowego beztlenowego PBS o pH siedem w szklanej zlewce.
Następnie użyj szklanego pręta, aby wymieszać, aby uzyskać zawiesinę. W komorze beztlenowej dodaj indywidualnie 500 mikrolitrów przefiltrowanej gnojowicy kałowej do trzech przygotowanych pożywek fermentacyjnych. Następnie inkubować w temperaturze 37 stopni Celsjusza.
Po 24 godzinach i 48 godzinach zebrać dwa mililitry sfermentowanych próbek w komorze beztlenowej. A następnie odwirować na zewnątrz komory przy 6000 razy G przez trzy minuty. Ostrożnie przenieść supernatanty do nowych probówek wirówkowych, które będą używane do analizy degradacji polisacharydów i pomiarów krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych.
Przechowuj granulki wirówki w temperaturze 80 stopni Celsjusza. Załaduj 0,2 mikrolitra sfermentowanych supernatantów na każdą wstępnie pokrytą aluminiową płytkę z żelem krzemionkowym 60 TLC i zamieszaj, aby się rozprowadzić. Następnie użyj suszarki do włosów z gorącym powietrzem do wyschnięcia.
Zanurzyć jeden koniec pobranych płytek w 20 mililitrach roztworu kwasu mrówkowego: n-butanol: woda na kilka minut, aż elektroforeza rozszerzy się prawie na drugi koniec. Następnie wyjmij płytki kleszczami i wysusz suszarką do włosów. Następnie namocz płytki w odczynniku orcynolu na dwie minuty, aby zabarwić.
I znowu wysuszyć. Przełóż talerze do piekarnika w temperaturze 120 stopni Celsjusza, aby podgrzewały się przez trzy minuty. Następnie zrób zdjęcia płytki, aby ocenić degradację EPS poprzez pomiar pasm TLC.
Aby zbadać wpływ EPS na produkcję SCFA, dodaj jeden mililitr sfermentowanych supernatantów do dwumililitrowych probówek wirówkowych i dodaj 0,2 mililitra 25 procent wagowo-objętościowych kwasu metafosforowego do każdej próbki. Wirować, aby dokładnie wymieszać roztwory. Odwirować mieszaniny w temperaturze 13 000 razy G przez 20 minut.
W międzyczasie przygotuj w probówkach roztwory 120-milimolowych kwasów octowego, propionowego, masłowego, izomasłowego, walerianowego i izowalerianowego. Następnie dodaj jeden mililitr każdego przygotowanego kwasu do probówki zawierającej 1,2 mililitra kwasu metafosforowego o zawartości 25 procent wagowo-objętościowych. I załadować je do butelki na próbkę przyrządu do chromatografii gazowej jako standardowe koktajle.
Wyjąć probówki z wirówki i przenieść supernatanty do świeżych probówek. Za pomocą strzykawki wyposażonej w filtr 0,22 mikrona przefiltrować supernatanty do nowych probówek do analizy metodą chromatografii gazowej. W tym badaniu produkcję śluzowatego EPS zaobserwowano w kulturach Bifidobacterium longum na płytkach PYG, po inkubacji beztlenowej przez 72 godziny.
Odwirowanie skrawków hodowli, a następnie wytrącanie etanolu i suszenie, spowodowało zebranie styropianu podobnego do celulozy. Analiza TLC wykazała, że tempo degradacji skrobi przez ludzką mikrobiotę kałową było szybsze niż w przypadku BIF EPS. Główna analiza współrzędnych pokazuje, że grupy skrobi BIF kultury VI i kultury VI są zgrupowane oddzielnie od siebie, co wskazuje, że EPS i dostępność skrobi w różny sposób kształtują ludzkie społeczności bakterii kałowych.
Liniowa analiza dyskryminacyjna wielkości efektu pokazuje, że rodzaje collinsella, coprococcus, parabacteroides i rhodopseudomonas były znacznie liczniejsze w próbkach BIF hodowli VI niż w próbkach skrobi VI kultur. Ponadto pomiary GC pokazują, że SCFA, które zostały zmierzone z kultur fermentacyjnych, obejmowały kwas octowy, propionowy, izomasłowy, masłowy, izowalerynowy i walerianowy. Po fermentacji przez 24 godziny i 48 godzin, pięć z sześciu stężeń SCFA było podobnych i nie różniło się statystycznie między grupami kultur VI BIF, kultur VI skrobi i kultur VI.
Jednak stężenia kwasu proprionowego były istotnie wyższe w grupie VI BIF niż w grupie VI kultury skrobi, po 48 godzinach fermentacji. Przeprowadzić to doświadczenie w warunkach beztlenowych, a następnie przenieść utrwalone próbki do inkubatora beztlenowego tak szybko, jak to możliwe. Niektóre odczynniki TLC są niebezpieczne.
Powinieneś być ostrożny, aby z nich korzystać.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół bada oddziaływania między endobiotykami a ludzką mikrobiotą jelitową z wykorzystaniem systemów fermentacji okresowej in vitro. Został on opracowany z myślą o wysokoprzepustowym i szybkim przesiewie, minimalizując wpływ metabolizmu gospodarza.
Niniejszy protokół umożliwia wysokoprzepustowy i niskokosztowy screening in vitro interakcji między endobiontami a mikrobiotą jelitową, co ogranicza zależność od modeli zwierzęcych i minimalizuje zakłócenia wynikające z metabolizmu gospodarza. Wspiera on wczesną walidację celów terapeutycznych, dostarczając ilościowych danych na temat zmian w strukturze społeczności mikrobiologicznej oraz produkcji metabolitów, co ma kluczowe znaczenie dla redukcji ryzyka w przypadku terapii modulujących mikrobiom. Metoda ta znajduje bezpośrednie zastosowanie w przedklinicznych procesach odkrywania leków, gdzie mechanistyczne zrozumienie efektów działania związków na mikrobiotę informuje wybór wiodących kandydatów oraz decyzje dotyczące portfela projektów.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od walidacji celu po optymalizację związku wiodącego, w szczególności w przypadku związków aktywnych wobec mikrobiomu, gdzie zrozumienie metabolizmu pośredniczonego przez mikrobiotę jest niezbędne do przewidywania zachowania in vivo.