-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Elektrofizjologiczne zapisy prądów jonowych pojedynczych ogniw pod wpływem dobrze zdefiniowanego ...
Elektrofizjologiczne zapisy prądów jonowych pojedynczych ogniw pod wpływem dobrze zdefiniowanego ...
JoVE Journal
Immunology and Infection
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Immunology and Infection
Electrophysiological Recordings of Single-cell Ion Currents Under Well-defined Shear Stress

Elektrofizjologiczne zapisy prądów jonowych pojedynczych ogniw pod wpływem dobrze zdefiniowanego naprężenia ścinającego

Full Text
6,369 Views
07:17 min
August 2, 2019

DOI: 10.3791/59776-v

Ibra S. Fancher1, Irena Levitan1

1Department of Medicine, Division of Pulmonary, Critical Care, Sleep and Allergy,University of Illinois at Chicago

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Celem tego protokołu jest opisanie zmodyfikowanej równoległej komory przepływowej do wykorzystania w badaniu w czasie rzeczywistym aktywacji mechanowrażliwych kanałów jonowych przez naprężenie ścinające.

Transcript

Zastosowanie zmodyfikowanej komory przepływu z równoległą płytą może pomóc naukowcom odpowiedzieć na kluczowe pytania dotyczące funkcjonalnej odpowiedzi mechanowrażliwych kanałów jonowych na naprężenia ścinające. Główną zaletą tej techniki jest to, że umożliwia ona badanie w czasie rzeczywistym w celu przepływu aktywowanych kanałów jonowych w łatwej do zmontowania, równoległej komorze przepływowej wielokrotnego użytku. Aby rozpocząć procedurę, nałóż cienką warstwę roztworu elastomeru silikonowego wokół krawędzi prostokątnej przestrzeni elementu C i delikatnie umieść prostokątne szkło nakrywkowe, kawałek D, bezpośrednio na roztworze elastomeru, aby całkowicie pokryć otwartą prostokątną przestrzeń elementu C. Ostrożnie zetrzyj nadmiar roztworu elastomeru silikonowego.

Następnie powtórz procedurę przyklejania prostokątnego szkła nakrywkowego, kawałka F, do dna kawałka E i pozwól roztworowi elastomeru silikonowego utwardzić się przez noc w temperaturze pokojowej. Teraz zmontuj komorę przepływową MPP, kolejno umieszczając każdy element na górze poprzedniej, zaczynając od dolnej komory, kawałka E, następnie kawałka C, kawałka B, a następnie kawałka A na górze. Następnie wyrównaj otwory na każdego elementu w rogach i mocno skręć elementy ze sobą, aby zapobiec występowaniu wycieków podczas podawania przepływu do komory przepływowej MPP.

Na sześciodołkowej płytce umieść od czterech do pięciu 12-milimetrowych szklanych kółek w każdym dołku. Zapisz komórki w zakresie od 10% do 30% zbieżności, tak aby można było uzyskać dostęp do pojedynczych komórek w celu uzyskania zapisów elektrofizjologicznych. Następnie inkubuj komórki w standardowych warunkach hodowli przez nie mniej niż dwie godziny, aby umożliwić komórkom przyleganie, i nie dłużej niż 24 godziny, ponieważ komórki śródbłonka staną się płaskie i trudne do załatania, gdy zostaną wysiane w momencie zbiegu przez ponad 24 godziny.

Następnie wyjmij szklankę nakrywkową zawierającą przylegające komórki z dołka płytki sześciodołkowej i szybko spłucz w PBS. Następnie przenieś szkło nakrywkowe z komórkami na 35-milimetrową szalkę Petriego zawierającą dwa mililitry elektrofizjologicznego roztworu BAF. Natychmiast przenieść szkło nakrywkowe z komórkami do komory przepływowej MPP.

Przenieś okrąg szkła nakrywkowego na prostokątną szklaną szklaną pokrywę, kawałek D, który jest przyklejony do elementu C komory przepływowej MPP. Dodaj roztwór BAF, aby całkowicie zanurzyć okrąg szkła nakrywkowego i komórki. Następnie umieść okrąg szkła nakrywkowego na elemencie D tak, aby komórki znajdowały się w jednej linii z otworami szczelinowymi elementu B. Upewnij się, że koło szkła nakrywkowego przylega do kawałka D poprzez przyleganie szkła do roztworu, aby uniknąć zakłócenia pozycji koła szkła nakrywkowego przez aplikację przepływową.

Następnie zmontuj komorę przepływową MPP, skręcając ze sobą elementy w odpowiedniej kolejności. Przenieść komorę do stolika mikroskopu i natychmiast przetworzyć komorę roztworem BAF. Następnie zidentyfikuj zdrową komórkę z ciemną obwódką i oczywistym jądrem do eksperymentu.

Unikaj komórek, które wydają się błyszczeć lub komórek, które stykają się z innymi komórkami. Aby kontrolować naprężenia ścinające, skonfiguruj system perfuzji grawitacyjnej, podłączając 30-mililitrową cylindryczną strzykawkę z podziałką do trójdrożnego zamka Luer wyposażonego w rurkę z mikrootworem. Następnie przymocuj cylinder z podziałką do klatki Faradaya otaczającej stanowisko do elektrofizjologii za pomocą taśmy dwustronnej.

Przed włożeniem rurki do komory MPP należy wstępnie napełnić strzykawkę i rurkę roztworem BAF. Następnie włóż rurkę do otworu wlotowego komory przepływowej MPP elementu A. Wstępnie napełnij komorę przepływu MPP roztworem, tak aby była usuwana ze zbiornika próżniowego. Zatrzymaj przepływ do komory i napełnij cylinder z podziałką do górnego znaku.

Oblicz natężenie przepływu ręcznie za pomocą stopera, pozwalając roztworowi przepływać przez komorę na danej wysokości cylindra strzykawki. Podnieś lub opuść strzykawkę, aby zmienić przepływ i oblicz naprężenie ścinające w równoległej komorze za pomocą tego równania. Powtarzaj ten proces, aż zostanie znaleziony żądany poziom naprężenia ścinającego.

Następnie przenieś zmontowaną komorę zawierającą przylegające komórki do stopnia mikroskopowego stanowiska do elektrofizjologii. I włóż rurkę, wstępnie napełnioną roztworem BAF, do otworu elementu A. Następnie napełnij komorę i jednocześnie umyj komórki 10 mililitrami roztworu BAF. Po pomyślnym uzyskaniu żądanej konfiguracji łat pozwól, aby prądy kanału ustabilizowały się w kąpieli statycznej w temperaturze pokojowej.

Gdy tylko prądy się ustabilizują, należy stosować ścinanie w sposób krokowy, pozwalając zwiększonemu prądowi ustabilizować się przed kolejnym krokiem wzrostu naprężeń ścinających. Usuń narażenie komórek na ścinanie, zatrzymując przepływ do komory, umożliwiając mechanowrażliwym prądom kanałowym powrót do prądów podstawowych obserwowanych w kąpieli statycznej. Pokazano tutaj reprezentatywny surowy zapis prądu Kir z pierwotnej komórki śródbłonka krezki myszy z zauważalnym liniowym prądem wycieku na zewnątrz.

Rampa od minus 140 do dodatnich 40 miliwoltów została zastosowana do łaty w ciągu 400 milisekund. Prąd upływowy uniemożliwia analizę rzeczywistej aktywności kanału Kir. Aby odjąć prąd upływu, najpierw oblicz przewodność nachylenia liniowego prądu upływu.

Wielokrotne nachylenie G przez odpowiednie napięcia całej nieprzetworzonej ścieżki w celu wykreślenia prądu upływu na surowych danych. Linia powinna dokładnie nakładać się na zewnętrzny przeciek liniowy. Następnie odejmij wykreślony prąd upływowy od całej ścieżki, tak aby liniowy prąd wychodzący wynosił około zero pikoamperów na pikofarad, a rzeczywisty prąd Kir można przeanalizować.

Najważniejszą rzeczą, o której należy pamiętać podczas wykonywania tej procedury, jest prawidłowe ustawienie szkła nakrywkowego w komorze, tak aby komórki były dostępne do eksperymentów. Ponadto należy upewnić się, że szkiełko nakrywkowe jest odpowiednio przylegające do elementu D, tak aby przepływ płynu nie zakłócił ogniw szkła nakrywkowego.

Explore More Videos

Zapisy elektrofizjologiczne mechanowrażliwe kanały jonowe naprężenia ścinające zmodyfikowana równoległa komora przepływowa płytkowa roztwór elastomeru silikonowego adhezja komórek komórki śródbłonka jednokomórkowe prądy jonowe kanały jonowe aktywowane przepływem roztwór BAF procedury eksperymentalne warunki hodowli

Related Videos

Nagrania całokomórkowe światła wywołały pobudzające prądy synaptyczne w warstwie siatkówki

19:33

Nagrania całokomórkowe światła wywołały pobudzające prądy synaptyczne w warstwie siatkówki

Related Videos

13K Views

Zapis elektrofizjologii optogenetycznej komórek z kanałami jonowymi zależnymi od światła

03:54

Zapis elektrofizjologii optogenetycznej komórek z kanałami jonowymi zależnymi od światła

Related Videos

318 Views

Izolacja ludzkich miocytów przedsionkowych do jednoczesnych pomiarów stanów nieustalonych Ca2+ i prądów błonowych

10:53

Izolacja ludzkich miocytów przedsionkowych do jednoczesnych pomiarów stanów nieustalonych Ca2+ i prądów błonowych

Related Videos

20.7K Views

Nagrania z użyciem zacisku krosowego całych komórek w wycinkach mózgu

07:23

Nagrania z użyciem zacisku krosowego całych komórek w wycinkach mózgu

Related Videos

61.3K Views

Projektowanie urządzeń mikroprzepływowych do badania odpowiedzi komórkowych pod wpływem pojedynczych lub współistniejących bodźców naprężeń chemicznych/elektrycznych/ścinających

10:35

Projektowanie urządzeń mikroprzepływowych do badania odpowiedzi komórkowych pod wpływem pojedynczych lub współistniejących bodźców naprężeń chemicznych/elektrycznych/ścinających

Related Videos

9.2K Views

Zastosowanie pomiarów elektrofizjologicznych do badania aktywności transporterów elektroobojętnych

11:51

Zastosowanie pomiarów elektrofizjologicznych do badania aktywności transporterów elektroobojętnych

Related Videos

7.2K Views

Przygotowanie wycinków ostrego rdzenia kręgowego do zapisu całokomórkowego patch-clamp w neuronach istoty żelatynowej

08:30

Przygotowanie wycinków ostrego rdzenia kręgowego do zapisu całokomórkowego patch-clamp w neuronach istoty żelatynowej

Related Videos

14.5K Views

Mechano-Node-Pore Sensing: szybka, niewymagająca oznaczeń platforma do wieloparametrowych pomiarów lepkosprężystych pojedynczych komórek

05:49

Mechano-Node-Pore Sensing: szybka, niewymagająca oznaczeń platforma do wieloparametrowych pomiarów lepkosprężystych pojedynczych komórek

Related Videos

2.9K Views

Protokół testu ścinania w celu określenia właściwości materiału jednokomórkowego

08:19

Protokół testu ścinania w celu określenia właściwości materiału jednokomórkowego

Related Videos

2.2K Views

Rejestracja wewnętrznych prądów prostowniczych K+ w świeżo wyizolowanych komórkach mięśni gładkich tętnicy podstawnej techniką patch clamp

07:19

Rejestracja wewnętrznych prądów prostowniczych K+ w świeżo wyizolowanych komórkach mięśni gładkich tętnicy podstawnej techniką patch clamp

Related Videos

501 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code