15 października 2019
Opisana tutaj jest uproszczona standardowa procedura operacyjna do profilowania mikrobiomu przy użyciu sekwencjonowania metagenomicznego 16S rRNA i analizy przy użyciu swobodnie dostępnych narzędzi. Protokół ten pomoże naukowcom, którzy są nowicjuszami w dziedzinie mikrobiomu, a także tym, którzy potrzebują aktualizacji metod osiągania profilowania bakteryjnego w wyższej rozdzielczości.
Profilowanie mikrobiomu jest pierwszym krokiem w kierunku zdefiniowania roli mikrobiomu w zdrowiu i chorobie. Tutaj opisujemy prostą procedurę izolowania wysokiej jakości bakteryjnego DNA z biblioteki przygotowywania próbek kału, wykonywania 16SR RNA oraz sekwencjonowania metagenomicznego i analizy danych mikrobiomu. Protokół ten pomoże naukowcom nowym w dziedzinie mikrobiomu, a także naukowcom pracującym w dziedzinie mikrobiomu w ustanowieniu rurociągu mikrobiomu w ich laboratorium. Protokół ten można rozszerzyć o profilowanie mikrobiomu z innych próbek biologicznych, takich jak próbki nosa, jamy ustnej lub skóry zwierząt i ludzi. Zbieranie ściegu jest najważniejszym krokiem, ponieważ wszystkie dalsze etapy zależą od wysokiej jakości DNA. Prawidłowe uszczelnienie płytki konserwującej jest ważne, ponieważ niepełne uszczelnienie może prowadzić do ucisku amplifikowanego produktu, co skutkuje niską jakością danych sekwencjonowania. Na początek wysterylizuj pudełka przegródkowe 70% etanolem. Umieść myszy w wysterylizowanych pudełkach na przegrody i pozwól im normalnie się wypróżnić przez maksymalnie godzinę. Użyj sterylnych kleszczy, aby zebrać granulki kału w pustej, wstępnie oznakowanej 1.5-mililitrowej mikroprobówce wirówkowej. Szczelnie zamknij rurkę. Wysterylizuj kleszcze 70% etanolem, a następnie bakteriobójczą jednorazową chusteczką, po zebraniu kału od każdej myszy. Zważ 200 miligramów granulek kału do 1,5-mililitrowej mikroprobówki wirówkowej z 0,1 mililitra szklanych kulek i umieść probówkę z kulkami w homogenizatorze ubijającym kulki i homogenizuj próbki przez 45 sekund w temperaturze pokojowej, z prędkością 4,5 metra na sekundę. Wyekstrahuj DNA zgodnie z instrukcjami producenta zestawu i wymyj DNA w 1,5-mililitrowej mikroprobówce wirówkowej. Po wyizolowaniu DNA należy określić ilościowo wyizolowane DNA, ładując 1 mikrolitr DNA na fluorometr. Ustaw amplifikację genu rybosomalnego RNA 16S PCR1 w 96-dołkowej płytce PCR, używając objętości reakcyjnej 25 mikrolitrów. Za pomocą pipety wielokanałowej dodaj 40 nanogramów DNA, 13,5 mikrolitrów mieszanki enzymów polimerazy o wysokiej wierności, zawierającej bufor, a także DNTP w starterze do przodu i do tyłu. Prawidłowo uszczelnij płytkę PCR od góry do dołu wzdłuż wszystkich czterech krawędzi. I odwirować przy 1000 razy G przy 20
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia szczegółową metodologię profilowania mikrobiomu za pomocą metagenomicznego sekwencjonowania 16S rRNA. Protokół, skierowany zarówno do początkujących, jak i doświadczonych badaczy, dostarcza informacji na temat uzyskiwania dokładnych profili bakteryjnych przy użyciu dostępnych narzędzi.
Profilowanie mikrobiomu jest podstawowym etapem walidacji celu w przypadku chorób zapalnych i metabolicznych, umożliwiając formułowanie hipotez dotyczących udziału drobnoustrojów w patogenezie. Niniejszy protokół wspiera opracowywanie modeli przedklinicznych poprzez dostarczanie wysokorozdzielczych danych taksonomicznych z złożonych biospecimenów, co ułatwia ograniczanie ryzyka mechanistycznego w interwencjach ukierunkowanych na mikrobiom. Standaryzowany proces usprawnia ciągłość translacyjną od etapu odkryć do identyfikacji wiodącego kandydata w programach terapeutycznych modulujących mikrobiom.
Metoda ta integruje się z wczesnymi etapami procesów odkrywania leków, dostarczając praktycznych danych o mikrobiomie, które pomagają w wyborze celu oraz prowadzeniu badań mechanistycznych przed optymalizacją wiodącego związku.