RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/60024-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Selektywne wkraplanie kwasu dooskrzelowego do lewego płuca u myszy powoduje jednostronne i samoograniczające się ostre uszkodzenie płuc, które modeluje ludzki zespół ostrej niewydolności oddechowej (ARDS) wywołany aspiracją kwasu żołądkowego.
Selektywna metoda dooskrzelowa jest istotna, ponieważ oferuje badaczom powtarzalny i nieśmiertelny model do badania ostrego uszkodzenia płuc, głównej przyczyny zespołu ostrej niewydolności oddechowej u ludzi. Zaletą selektywnej techniki dooskrzelowej jest lokalizacja odpowiedzi zapalnej w lewym płucu, oferując prawe płuco jako nieuszkodzoną kontrolę i minimalizując stres zwierząt. Tę procedurę zademonstruje Alexander Tavares, technik i student studiów przedmagisterskich w naszym laboratorium.
Aby przygotować 0,1 normalnego kwasu solnego, dodaj 11 mililitrów podwójnie destylowanej wody do butelki z bursztynowego szkła, a następnie powoli dodaj jeden mililitr 37%12 normalnego kwasu. Następnie powoli dodaj cztery mililitry jednego normalnego kwaśnego bulionu roboczego do 35 mililitrów podwójnie destylowanej wody w 50-mililitrowej stożkowej probówce. Następnie użyj elektronicznej sondy pH, aby zmierzyć pH 0,1 normalnego roztworu podstawowego, miareczkując do pH 1,1 przy użyciu wodorotlenku sodu lub kwaśnego roztworu podstawowego, w razie potrzeby, do końcowej objętości 40 mililitrów.
Przed rozpoczęciem zabiegu przefiltruj od jednego do dwóch mililitrów roztworu kwasu przez sterylny filtr o pojemności 0,22 mikrolitra do sterylnej probówki mikrowirówki i potwierdź brak reakcji na odruch bólowy u znieczulonej myszy. Używając elektrycznych maszynek do strzyżenia powolnymi ruchami w dół, delikatnie ogol obszar operacyjny na brzusznej powierzchni myszy poniżej podbródka w odcinku szyjnym gardła. Usuń luźne włosy i przetrzyj odsłoniętą skórę trzema kolejnymi 10% roztworem jodu powidonu i 70% wacikami nasączonymi alkoholem izopropylowym.
Po przygotowaniu skóry ułóż mysz w pozycji leżącej na czystej desce chirurgicznej i przykryj zwierzę sterylnym serwetem chirurgicznym. Wykonaj podłużny otwór o długości 0,5 centymetra w skórze nad tchawicą i gruczołami ślinowymi i użyj lekko zakrzywionych ząbkowanych kleszczy, aby ostrożnie cofnąć skórę. Delikatnie oddziel gruczoły ślinowe, aby odsłonić mięśnie tchawicy i użyj lekko zakrzywionych ząbkowanych kleszczy, aby delikatnie rozsunąć mięśnie przytchawicze
.Oderwij powięź otaczającą tchawicę, aż chrzęstne pierścienie tchawicy zostaną całkowicie odsłonięte, i użyj w pełni zakrzywionych ząbkowanych kleszczy, aby usunąć tkankę łączną między tchawicą a zatchawicą. Wsuń w pełni zakrzywione ząbkowane kleszcze za tchawicę i podnieś tchawicę. Gdy końcówka kleszczy znajdzie się za tchawicą, chwyć końcówkami kleszczy 10 do 15 centymetrowy kawałek jedwabnego szwu plecionego 4-0 i pociągnij szew za tchawicą, tak aby była równa długość po obu stronach.
Deskę chirurgiczną można obrócić, aby zbliżyć obszar operacyjny do ręki dominującej w celu wykonania kolejnych kroków. Następnie delikatnie pociągnij końce szwu w kierunku przedniej części myszy i przytrzymaj końce na miejscu. W celu kaniulacji lewego oskrzela głównego pnia należy odsłonić igłę angiocewnika o rozmiarze 24 x 3/4 cala i wprowadzić igłę skośną stroną do góry do wewnętrznego obszaru tchawicy między pierwszym a drugim pierścieniem tchawicy.
Gdy końcówkę igły można uwidocznić w świetle tchawicy, zwolnij szew i wsuń kaniulę nad igłą do tchawicy pod kątem w kierunku lewej tylnej strony myszy. W przypadku napotkania oporu należy wycofać igłę. Po umieszczeniu kaniuli na miejscu mocno chwyć port iniekcji, aby zapobiec przesuwaniu się cewnika i zamocuj końcówkę mikropipety P-200 w porcie.
Następnie wkroplić 50 mikrolitrów przefiltrowanego 0,1 normalnego roztworu kwasu do cewnika, a następnie równą objętość powietrza. Ten etap wymaga precyzyjnej manipulacji kaniulą, gdy drogi oddechowe są zatkane, i powinien być zakończony szybko i płynnie, aby przywrócić prawidłowy przepływ powietrza i zminimalizować uszkodzenie dróg oddechowych. Szybko wycofaj cewnik i przechyl deskę chirurgiczną pod kątem 60 stopni.
Po 30 sekundach połóż deskę chirurgiczną płasko i usuń szew zza tchawicy. Następnie użyj jedwabnego szwu plecionego 4-0 pokrytego woskiem, aby zamknąć nacięcie skóry za pomocą dwóch do trzech szwów. Ostre uszkodzenie płuc wynikające z wkroplenia kwasu dooskrzelowego obejmuje całe lewe płuco.
Rzeczywiście, po dożylnym podaniu niebieskiego barwnika Evansa i perfuzji płuc, barwnik jest wykrywany tylko w lewym płucu. Kwantyfikacja wynaczynienia barwnika do lewego płuca jest znacznie zwiększona w porównaniu z pozorowanym wkraplaniem selektywnym. Neutrofile śródmiąższowe gromadzą się w lewym płucu 24 godziny po wkropleniu kwasu, w przeciwieństwie do prawego płuca, w którym obserwuje się niewiele neutrofili śródmiąższowych.
Histologia płuc ujawnia uszkodzenie tkanek i stan zapalny na poziomie narządowym i komórkowym z wysiękowym zapaleniem 24 godziny po urazie, charakteryzującym się wyraźnym obrzękiem pęcherzyków płucnych i naciekiem neutrofili w lewym płucu. Należy zauważyć, że brak znaczącego uszkodzenia lub napływu leukocytów do nieuszkodzonego prawego płuca kontrolnego. 72 godziny po urazie obrzęk i nacieki komórkowe ulegają znacznemu zmniejszeniu, co stanowi ustępującą fazę wysiękową.
Jak oceniono za pomocą cytometrii przepływowej, neutrofile pęcherzykowe zwiększają się w lewym płucu 24 godziny po początkowym urazie i znacznie zmniejszają się po 48 i 72 godzinach. Ważne jest, aby uwidocznić cewnik w tchawicy przed przejściem dalej. Podczas wprowadzania skieruj kaniulę w kierunku lewego oskrzela pnia głównego i postępuj zgodnie z kwasem za pomocą 50 mikrolitrów powietrza.
Wcelu oceny stanu zapalnego i ustąpienia można przeprowadzić analizę płynu z płukania oskrzelowo-pęcherzykowego, histologię płuc, fenotypowanie komórek odpornościowych za pomocą cytometrii przepływowej, obrazowanie żywych myszy i badanie czynności płuc. Opracowanie tego samoograniczającego się modelu ostrego uszkodzenia płuc pozwoliło naukowcom wnieść znaczący wkład w dziedzinę biologii rozdzielczości. Należy pamiętać, że stężony kwas solny jest niebezpieczny i należy obchodzić się z nim w kapturze chemicznym, przy użyciu odpowiednich środków ochrony osobistej.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
07:24
Related Videos
19K Views
09:16
Related Videos
10.2K Views
07:10
Related Videos
14.4K Views
11:07
Related Videos
26.7K Views
09:36
Related Videos
3.1K Views
06:22
Related Videos
3.8K Views
04:45
Related Videos
2.7K Views
02:46
Related Videos
4.7K Views
04:10
Related Videos
6.7K Views
08:01
Related Videos
60.5K Views