-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Przedkliniczny model szczurzy do badania uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego w mikrochirurgi...
Przedkliniczny model szczurzy do badania uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego w mikrochirurgi...
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Przedkliniczny model szczurzy do badania uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego w mikrochirurgii rekonstrukcyjnej

Full Text
7,905 Views
08:05 min
November 8, 2019

DOI: 10.3791/60292-v

Alberto Ballestín1, Javier G. Casado2, Elena Abellán1, Francisco Javier Vela1, José Luis Campos1, Guadalupe Martínez-Chacón1, Jorge Bote3, Rebeca Blázquez2, Francisco Miguel Sánchez-Margallo1,2,3

1Department of Microsurgery,Jesús Usón Minimally Invasive Surgery Centre, 2Stem Cell Therapy Unit,Jesús Usón Minimally Invasive Surgery Centre, 3Animal Modelling Unit,Jesús Usón Minimally Invasive Surgery Centre

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Tutaj opisujemy przedkliniczny model zwierzęcy do badania patofizjologii uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego w mikrochirurgii rekonstrukcyjnej. Ten model wolnego płata skóry oparty na powierzchownych naczyniach nadbrzusza ogonowego u szczura może również pozwolić na ocenę różnych terapii i związków przeciwdziałających uszkodzeniom związanym z uszkodzeniem niedokrwienno-reperfuzyjnym.

Uraz niedokrwienno-reperfuzyjny jest główną przyczyną niewydolności płata w mikrochirurgii rekonstrukcyjnej. Ten film opisuje przedkliniczny model zwierzęcy do badania tej patofizjologii. Ten model wolnego płata skóry oparty na powierzchownych naczyniach nadbrzusza ogonowego u szczura może pozwolić na ocenę różnych terapii i związków w celu przeciwdziałania uszkodzeniom związanym z uszkodzeniem niedokrwienno-reperfuzyjnym.

Rekonstrukcje mikrochirurgiczne są idealne dla szerokiej gamy defektów. Procedury te zapewniają jednak obowiązkowy okres niedokrwienia, po którym następuje reperfuzja. Okres ten jest zwykle dobrze tolerowany, a wskaźnik powodzenia zabiegów mikrochirurgicznych przekracza 90%Jednak tylko 73,7% płatów wymagających rewizji chirurgicznej może być całkowicie bezpiecznych.

Ponadto, w przypadku replantacji urazów awulsji palców, wskaźnik sukcesu wynosi około 60%, a w przypadku ponownego przeszczepu tkanki kompozytowej, odsetek projekcji urazów niedokrwienno-reperfuzyjnych jest zwiększony, ponieważ uraz aktywuje odporność wrodzoną. Dlatego interesujące jest badanie tego patofizjologicznego zjawiska. Aby rozpocząć tę procedurę, użyj markera chirurgicznego, aby narysować płat o wymiarach trzy centymetry na sześć centymetrów, upewniając się, że jeden z sześciu centymetrów boków pasuje do linii środkowej brzucha.

Następnie wykonaj sześciocentymetrowe nacięcie skóry na linii środkowej brzucha, dwa prostopadłe trzycentymetrowe nacięcia, a także jedno z sześciu centymetrów równolegle do pierwszego nacięcia. Aby rozpocząć preparowanie wyznaczonego płata skóry, użyj nożyczek i kleszczy Adsona, aby podnieść płat. Delikatnie pociągnij klapkę od obszaru czaszki w kierunku okolicy ogonowej.

Rozetnij szypułkę klapy, nie dotykając jej lub chwytając przydankę tak rzadko, jak to możliwe, aby uniknąć uszkodzenia ścianki naczynia. Użyj 8-0 Nylonowe szwy do okluzji przez ligatury naczyń odpiszczelowych, bocznych obwodowych naczyń udowych i bliższych ogonowych naczyń udowych. Zaciśnij szypułkę naczyniową, a następnie przetnij ją, aby rozpocząć ośmiogodzinny okres niedokrwienia.

Użyj heparynizowanego roztworu soli fizjologicznej, aby perfuzji płatka, a następnie usuń zastój krwi z mikrokrążenia. Do wykonania zespoleń mikrochirurgicznych należy użyć nici nylonowych 10-0. Po ośmiu godzinach niedokrwienia należy ponownie wykonać fuzję płatka, usuwając zaciski mikronaczyniowe i sprawdzić drożność naczyń.

Najpierw oceń przepływ krwi za pomocą przepływomierza ultradźwiękowego w czasie tranzytu i sond mikrochirurgicznych. Umieść naczynie docelowe w ultradźwiękowym okienku czujnika sondy przepływu, aby określić ilościowo objętość przepływu. Gdy zostanie osiągnięte dobre sprzężenie i naczynie zostanie umieszczone w oknie akustycznym bez żadnego napięcia, kliknij przycisk nagrywania na wyświetlaczu, aby zapisać dane.

Następnie użyj wchłanialnych szwów 4-0, aby zamknąć skórę. Aby ocenić mikrokrążenie płatka, należy zastosować laserową analizę kontrastu plamkowego. Wykonaj nowe nagranie dla każdej próbki i dla każdego badania kontrolnego, klikając plik, nowe nagranie.

Otworzy się nowe okno, w którym wyświetlany jest panel konfiguracji. W tym miejscu edytuj informacje dotyczące nazwy projektu, tematu, operatora i nazwy nagrania. Dostosuj odległość roboczą, przesuwając laser w stosunku do tkanki.

Przybliż głowicę lasera do wewnątrz lub na zewnątrz w kierunku tkanki będącej przedmiotem zainteresowania. W ustawieniach obrazu ustandaryzuj obszar pomiaru, wprowadzając żądaną szerokość i wysokość. Ustaw gęstość punktów na wysoką.

W ustawieniach przechwytywania obrazu wybierz liczbę klatek na sekundę i czas trwania nagrania. Następnie kliknij przycisk nagrywania, aby rozpocząć nagrywanie. Panel ustawień zostanie zastąpiony panelem nagrywania, a dane zostaną zapisane automatycznie.

Wykonaj migawki podczas procedury, aby umożliwić dalsze porównanie. Następnie użyj oprogramowania ImageJ, aby zmierzyć obszary przeżycia i martwicy, najpierw umieszczając linijkę w miejscu klapy i wykonując zdjęcia kontrolne do pomiaru makroskopowego. W przyborniku ImageJ wybierz linię prostą i narysuj linię nad jednym centymetrem linijki.

Kliknij na analizuj, ustaw skalę, a w polu tekstowym dla znanej odległości wprowadź wartość jednego centymetra. Kliknij narzędzie do zaznaczania wielokątów i narysuj linie wielokątów nad klapą, aby obliczyć realny obszar. Kliknij analizuj, zmierz, aby uzyskać wartość powierzchni.

Następnie przed umieszczeniem w pomieszczeniu należy założyć zwierzęciu opatrunek pooperacyjny, aby zapobiec samookaleczeniu. Siedem dni po operacji należy sfotografować obszar operacyjny, aby umożliwić makroskopowe pomiary obszarów przeżycia płata i martwicy. Korzystając z wcześniej opisanej techniki laserowej analizy kontrastu plamkowego, zwizualizuj i określ ilościowo różnice perfuzji, aby ocenić mikrokrążenie płatka.

Po analizie makroskopowej usuń szwy 4-0, podnieś płat i użyj ultradźwięków w czasie tranzytu, aby ponownie ocenić przepływ krwi w szypułce naczyniowej. Pobieranie próbek tkanek należy przeprowadzić, dzieląc podłużnie płat na dwie części o wymiarach 1,5 centymetra na sześć centymetrów. Bezpośrednio po wykonaniu zespoleń mikrochirurgicznych uzyskano wyższe wartości przepływu krwi niż zalecane w piśmiennictwie przepływy minimalne.

Tak więc wszystkie zespolenia mikrochirurgiczne zostały opatentowane tydzień po operacji. Obserwacja mikrokrążenia deprawacji przepływu krwi w czasie uszkodzenia niedokrwiennego była możliwa dzięki technice laserowej analizy kontrastu plamkowego. Obejmuje to natychmiastową hiperperfuzję podczas reperfuzji płata i okołooperacyjnie, różne obszary z mniejszą perfuzją miały większe ryzyko pooperacyjnej martwicy płatów, które rzeczywiście uległy nekrotyzacji siedem dni po zakończeniu badania.

Obszar przeżycia płata po ośmiu godzinach niedokrwienia i jego późniejszej reperfuzji wynosił około 40%Wcześniej opublikowane wyniki pokazują statystycznie istotne różnice, gdy porówna się ten model z płatami, w których nie dochodzi do uszkodzenia niedokrwiennego. Należy pamiętać, aby wypreparować szypułkę płata bez dotykania jej lub chwytając przydankę w jak najmniejszym stopniu, aby uniknąć uszkodzenia ściany naczynia, a także wykonać odpowiednie zespolenia mikrochirurgiczne, aby uniknąć powikłań związanych z techniką operacyjną. Śródoperacyjnie, technologia ultrasonograficzna w czasie tranzytu pozwala nam określić ilościowo przepływ krwi w zespoleniach mikrochirurgicznych, a tym samym przewidzieć perfuzję płata.

Po operacji laserowa analiza kontrastu plamkowego pozwala na częściową ciągłość mapowania przepływu w czasie rzeczywistym w obrębie wolnych płatów. Jest to obiecująca technika, jednak potrzebne są dalsze badania. W tym filmie opisano protokół odpowiedniego modelu do oceny środków terapeutycznych przeciwdziałających uszkodzeniu niedokrwienno-reperfuzyjnemu w dziedzinie mikrochirurgii rekonstrukcyjnej.

Explore More Videos

Uraz niedokrwienno-reperfuzyjny model przedkliniczny mikrochirurgia rekonstrukcyjna model płata skórnego patofizjologia rewizja chirurgiczna techniki mikrochirurgiczne drożność naczyń sól fizjologiczna heparynizowana przepływomierz ultradźwiękowy trans-time zaciski mikronaczyniowe ocena przepływu krwi

Related Videos

Ogniskowy model niedokrwienia mózgu za pomocą szwu wewnątrznaczyniowego niedrożności środkowej tętnicy mózgowej u szczura

13:50

Ogniskowy model niedokrwienia mózgu za pomocą szwu wewnątrznaczyniowego niedrożności środkowej tętnicy mózgowej u szczura

Related Videos

81K Views

In situ Płat mięśniowo-skórny mięśnia prostego brzucha: szczurzy model uszkodzenia reperfuzyjnego niedokrwienia mięśni i skóry

11:12

In situ Płat mięśniowo-skórny mięśnia prostego brzucha: szczurzy model uszkodzenia reperfuzyjnego niedokrwienia mięśni i skóry

Related Videos

14.2K Views

Uszkodzenie reperfuzyjne niedokrwienia nerek: mysi model urazu i regeneracji

12:27

Uszkodzenie reperfuzyjne niedokrwienia nerek: mysi model urazu i regeneracji

Related Videos

51.4K Views

Model przeszczepu płuc szczura uszkodzenia cieplnego niedokrwienia/reperfuzji: optymalizacje w celu poprawy wyników

07:37

Model przeszczepu płuc szczura uszkodzenia cieplnego niedokrwienia/reperfuzji: optymalizacje w celu poprawy wyników

Related Videos

3.5K Views

Ulepszony model niedokrwienia mięśnia sercowego i uszkodzenia reperfuzyjnego u gryzoni

07:23

Ulepszony model niedokrwienia mięśnia sercowego i uszkodzenia reperfuzyjnego u gryzoni

Related Videos

7.3K Views

Szczurzy model niedrożności/reperfuzji tętnicy środkowej mózgu bez uszkadzania struktury anatomicznej naczyń mózgowych

06:10

Szczurzy model niedrożności/reperfuzji tętnicy środkowej mózgu bez uszkadzania struktury anatomicznej naczyń mózgowych

Related Videos

1.2K Views

Model ostrego uszkodzenia płuc po reperfuzji niedokrwienia trzewnego za pomocą krzyżowego zaciskania aorty nadceliakialnej u szczurów

06:50

Model ostrego uszkodzenia płuc po reperfuzji niedokrwienia trzewnego za pomocą krzyżowego zaciskania aorty nadceliakialnej u szczurów

Related Videos

431 Views

Zmodyfikowany model preparatu do reperfuzji niedrożności tętnicy środkowej mózgu

04:18

Zmodyfikowany model preparatu do reperfuzji niedrożności tętnicy środkowej mózgu

Related Videos

2.3K Views

Normothermiczne zatrzymanie krążenia i resuscytacja krążeniowo-oddechowa: mysi model uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego

10:25

Normothermiczne zatrzymanie krążenia i resuscytacja krążeniowo-oddechowa: mysi model uszkodzenia niedokrwienno-reperfuzyjnego

Related Videos

18.8K Views

Model niedokrwienno-reperfuzyjny ostrego uszkodzenia nerek i zwłóknienia pourazowego u myszy

09:09

Model niedokrwienno-reperfuzyjny ostrego uszkodzenia nerek i zwłóknienia pourazowego u myszy

Related Videos

41K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code