Name: Kwantyfikacja stawonogów korowych za pomocą lepkich pułapek (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-01-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 28 s
Description: Naucz się półilościowej metody oceny społeczności stawonogów korowych za pomocą lepkich pułapek. Technika umożliwia szacowanie liczebności, różnorodności i biomasy na różnych gatunkach drzew.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy chcieliby podziękować Służbie Leśnej Departamentu Rolnictwa Stanów Zjednoczonych za finansowanie tego projektu poprzez umowę USFS 13-CS-11090800-022. Wsparcie dla ECZ zostało zapewnione przez NSF-DBI-1263050. ECZ pomagało w opracowaniu koncepcji badawczej, zebrało wszystkie dane terenowe, przeprowadziło analizę laboratoryjną i opracowało oryginalny manuskrypt. MWE pomagało w opracowaniu koncepcji badawczej i projektu badania, pomagało w kierowaniu zbieraniem danych terenowych i analizami laboratoryjnymi oraz intensywnie redagowało manuskrypt. Firma KPS pomogła w zaprojektowaniu badania, kierowała pracami terenowymi i laboratoryjnymi, pomogła w analizie danych i zrecenzowała manuskrypt.

1. Umieszczenie pułapki na drzewie
<ol>
	<li>Zmierz średnicę drzewa na wysokości pierśnicy. Na wysokości pierśnicy w każdym kardynalnym kierunku, dla obszaru wielkości wstępnie wyprodukowanej lepkiej pułapki (deski klejowej), użyj golarki do kory, aby usunąć korę, aż obszar wielkości lepkiej pułapki będzie wystarczająco gładki, aby zszyć lepką pułapkę na drzewie, tak aby stawonogi nie miały miejsca na czołganie się pod pułapką. Oznacz tył pułapki za pomocą ciemnego markera permanentnego z datą, numerem pułapki, lokalizacją i innymi istotnymi informacjami.
	<ol>
		<li>Aby złapać stawonogi, należy albo a) złapać zarówno latające, jak i pełzające stawonogi, otwierając i zdejmując boki i pokrywę lepkiej pułapki poprzez przecięcie tektury wzdłuż krawędzi lepkiego materiału, b) albo wykluczyć latające stawonogi z lądowania bezpośrednio na pułapce, otwierając pułapkę zgodnie z zaleceniami na pudełku.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Umieść jedną pułapkę w każdym wcześniej ogolonym miejscu, tak aby otwory były zorientowane pionowo (jeden otwór skierowany do góry, drugi otwór skierowany w dół), aby zmaksymalizować chwytanie stawonogów pełzających w górę iw dół pni drzew. W przypadku pułapek ze zdjętymi wierzchołkami w celu schwytania zarówno latających, jak i pełzających stawonogów, należy ustawić pułapki tak, aby koniec, który był otworem przed zdjęciem tekturowej osłony, był zorientowany pionowo, aby zachować spójność pułapki.</li>
	<li>Zszywaj pułapki do drzewa, umieszczając po jednej zszywce w każdym rogu i jedną zszywkę na środku, na dole i na środku u góry pułapki. Rozpocznij zszywanie w prawym dolnym rogu, następnie w dolnym środku, w prawym górnym rogu, w prawym górnym środku, w lewym dolnym rogu, a na końcu w lewym górnym rogu. Uważaj, aby całe dno i góra pułapki przylegały do drzewa, aby zminimalizować stawonogi pełzające pod pułapką.</li>
	<li>Pozostaw pułapki na miejscu przez żądany czas. Upewnij się, że wszystkie pułapki są pozostawione na miejscu przez ten sam czas. 
	UWAGA: Na obszarach, gdzie stawonogi są wyjątkowo liczne, na przykład podczas epidemii, pułapki mogą zostać nasycone w ciągu godziny lub dni. W takich okolicznościach pułapki będą musiały być regularnie wymieniane przed nasyceniem, aby utrzymać stałe prawdopodobieństwo schwytania.</li>
</ol>
2. Usuwanie pułapki z drzewa
<ol>
	<li>Po upływie żądanego czasu pułapki przykryj całą pułapkę, z wyjątkiem zszywek, polimerową folią celulozową (np. celofanem). 
	UWAGA: Umieszczenie folii na pułapkach przed usunięciem zmniejszy prawdopodobieństwo zakłócenia uwięzionych stawonogów.</li>
	<li>Usuń każdą pułapkę, biorąc duży płaski śrubokręt i częściowo podważając każdą zszywkę z drzewa, odpowiednio ułatwiając chwytanie zszywek za pomocą szczypiec półokrągłych. Weź duże szczypce półokrągłe lub podobne narzędzie do chwytania i wyciągnij zszywki z drzewa.</li>
	<li>Umieść pułapki w jakimś sztywnym pudełku do transportu do laboratorium w celu analizy. Jeśli pułapki mają być przechowywane dłużej niż 12 godzin, przechowuj je w zamrażarce, aby zachować zawartość.</li>
</ol>
3. Analiza laboratoryjna
<ol>
	<li>Korzystając z lunety sekcyjnej, zbadaj zawartość pułapki rejestrującej liczbę osobników do pożądanego poziomu taksonomicznego.</li>
	<li>Użyj posortowanych stawonogów, aby oszacować bogactwo (całkowitą liczbę grup taksonomicznych), wskaźniki różnorodności lub liczebność (całkowita liczba stawonogów). Jeśli szacowana biomasa jest pożądanym wynikiem, zmierz długość i szerokość stawonogów z dokładnością do milimetra i użyj opublikowanej długości/szerokości, regresji biomasy, aby oszacować biomasę32,33,34.</li>
	<li>Odejmij całkowitą szerokość 4 pułapek od średnicy na wysokości pierśnicy dla każdego drzewa, aby oszacować wysiłek związany z odłowem (proporcja drzewa pokrytego pułapkami) dla każdego drzewa.</li>
	<li>Ponieważ próbki z wielu pułapek na tym samym drzewie nie są niezależne, należy albo zsumować próbki z tego samego drzewa, albo uwzględnić pojedyncze drzewo jako zmienną losową we wszystkich analizach, aby uniknąć pseudoreplikacji.</li>
</ol>

<ol><li>Vitousek, P. M., D'Antonio, C. M., Loope, L. L., Westbrooks, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+invasions+as+global+environmental+change%5BTitle%5D)+AND+%22American+Scientist%22%5BJournal%5D)">Biological invasions as global environmental change.</a> American Scientist. 84, 468-478 (1996).</li>
<li>Pimentel, D., Lach, L., Zuniga, R., Morrison, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Environmental+and+Economic+Costs+of+Nonindigenous+Species+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22BioScience%22%5BJournal%5D)">Environmental and Economic Costs of Nonindigenous Species in the United States.</a> BioScience. 50 (1), 53-65 (2000).</li>
<li>Boyd, I. L., Freer-Smith, P. H., Gilligan, C. A., Godfray, H. C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+consequence+of+tree+pests+and+diseases+for+ecosystem+services%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The consequence of tree pests and diseases for ecosystem services.</a> Science. 342, 1235773(2013).</li>
<li>Mercader, R. J., McCullough, D. G., Bedford, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+girdled+ash+detection+trees+and+baited+artificial+traps+for+Agrilus+planipennis+%28Coleoptera%3A+Buprestidae%29+detection%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Entomology%22%5BJournal%5D)">A comparison of girdled ash detection trees and baited artificial traps for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) detection.</a> Environmental Entomology. 42, 1027-1039 (2013).</li>
<li>Childers, C. C., Ueckermann, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-phytoseiid+Mesostigmata+within+citrus+orchards+in+Florida%3A+species+distribution%2C+relative+and+seasonal+abundance+within+trees%2C+associated+vines+and+ground+cover+plants+and+additional+collection+records+of+mites+in+citrus+orchards%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Applied+Acarology%22%5BJournal%5D)">Non-phytoseiid Mesostigmata within citrus orchards in Florida: species distribution, relative and seasonal abundance within trees, associated vines and ground cover plants and additional collection records of mites in citrus orchards.</a> Experimental and Applied Acarology. 65, 331-357 (2015).</li>
<li>Miller, J. D., Lindsay, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influences+on+individual+initiative+to+use+gypsy+moth+control+in+New+Hampshire%2C+USA%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Management%22%5BJournal%5D)">Influences on individual initiative to use gypsy moth control in New Hampshire, USA.</a> Environmental Management. 17, 765-772 (1993).</li>
<li>Eisenhauer, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soil+arthropods+beneficially+rather+than+detrimentally+impact+plant+performance+in+experimental+grassland+systems+of+different+diversity%5BTitle%5D)+AND+%22Soil+Biology+%26+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Soil arthropods beneficially rather than detrimentally impact plant performance in experimental grassland systems of different diversity.</a> Soil Biology & Biochemistry. 42, 1418-1424 (2010).</li>
<li>Moeed, A., Meads, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Invertebrate+fauna+for+four+tree+species+in+Orongorongo+Valley%2C+New+Zealand%2C+as+revealed+by+trunk+traps%5BTitle%5D)+AND+%22New+Zealand+Journal+of+Ecology%22%5BJournal%5D)">Invertebrate fauna for four tree species in Orongorongo Valley, New Zealand, as revealed by trunk traps.</a> New Zealand Journal of Ecology. 6, 39-53 (1983).</li>
<li>Sierzega, K., Eichholz, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+the+potential+biological+impacts+of+modifying+disturbance+regimes+in+deciduous+forests%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">Understanding the potential biological impacts of modifying disturbance regimes in deciduous forests.</a> Oecologia. 189, 267-277 (2019).</li>
<li>Fritz, Ö <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vertical+distribution+of+epiphytic+bryophytes+and+lichens+emphasizes+the+importance+of+old+beeches+in+conservation%5BTitle%5D)+AND+%22Biodiversity+and+Conservation%22%5BJournal%5D)">Vertical distribution of epiphytic bryophytes and lichens emphasizes the importance of old beeches in conservation.</a> Biodiversity and Conservation. 18, 289-304 (2009).</li>
<li>Ulyshen, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arthropod+vertical+stratification+in+temperate+deciduous+forests%3A+Implications+for+conservation-oriented+management%5BTitle%5D)+AND+%22Forest+Ecology+and+Management%22%5BJournal%5D)">Arthropod vertical stratification in temperate deciduous forests: Implications for conservation-oriented management.</a> Forest Ecology and Management. 261, 1479-1489 (2011).</li>
<li>Swart, R. C., Pryke, J. S., Roets, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimising+the+sampling+of+foliage+arthropods+from+scrubland+vegetation+for+biodiversity+studies%5BTitle%5D)+AND+%22African+Entomology%22%5BJournal%5D)">Optimising the sampling of foliage arthropods from scrubland vegetation for biodiversity studies.</a> African Entomology. 25 (1), 164-174 (2017).</li>
<li>Andre, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Associations+between+corticolous+microarthropod+communities+and+epiphytic+cover+on+bark%5BTitle%5D)+AND+%22Holarctic+Ecology%22%5BJournal%5D)">Associations between corticolous microarthropod communities and epiphytic cover on bark.</a> Holarctic Ecology. 8, 113-119 (1985).</li>
<li>Nicolai, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+bark+of+trees%3A+thermal+properties%2C+microclimate+and+fauna%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">The bark of trees: thermal properties, microclimate and fauna.</a> Oecologia. 69, 148-160 (1986).</li>
<li>Beal, F. E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Food+of+the+woodpeckers+of+the+United+States+%28No.+37%29%5BTitle%5D)+AND+%22U.S.+Department+of+Agriculture%2C+Biological+Survey%22%5BJournal%5D)">Food of the woodpeckers of the United States (No. 37).</a> U.S. Department of Agriculture, Biological Survey. , Washington, D.C. (1911).</li>
<li>Williams, J. B., Batzli, G. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Winter+Diet+of+a+Bark-Foraging+Guild+of+Birds%5BTitle%5D)+AND+%22The+Wilson+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Winter Diet of a Bark-Foraging Guild of Birds.</a> The Wilson Bulletin. 91, 126-131 (1979).</li>
<li>Allison, J. D., Richard, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Impact+of+Trap+Type+and+Design+Features+on+Survey+and+Detection+of+Bark+and+Woodboring+Beetles+and+Their+Associates%3A+A+Review+and+Meta-Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">The Impact of Trap Type and Design Features on Survey and Detection of Bark and Woodboring Beetles and Their Associates: A Review and Meta-Analysis.</a> Annual Review of Entomology. 62, 127-146 (2017).</li>
<li>Hooper, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arthropod+biomass+in+winter+and+the+age+of+longleaf+pines%5BTitle%5D)+AND+%22Forest+Ecology+and+Management%22%5BJournal%5D)">Arthropod biomass in winter and the age of longleaf pines.</a> Forest Ecology and Management. 82, 115-131 (1996).</li>
<li>Proctor, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Are+tree+trunks+habitats+or+highways%3F+A+comparison+of+oribatid+miteassemblages+from+hoop-pine+bark+and+litter%5BTitle%5D)+AND+%22Australian+Journal+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">Are tree trunks habitats or highways? A comparison of oribatid miteassemblages from hoop-pine bark and litter.</a> Australian Journal of Entomology. 41, 294-299 (2002).</li>
<li>Dietrick, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+backpack+motor+fan+for+suction+sampling+of+insect+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Economic+Entomology%22%5BJournal%5D)">An improved backpack motor fan for suction sampling of insect populations.</a> Journal of Economic Entomology. 54, 394-395 (1961).</li>
<li>Stewart, A. J. A., Wright, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+inexpensive+suction+apparatus+for+sampling+arthropods+in+grasslands%5BTitle%5D)+AND+%22Ecological+Entomology%22%5BJournal%5D)">A new inexpensive suction apparatus for sampling arthropods in grasslands.</a> Ecological Entomology. 20, 98-102 (1995).</li>
<li>Jäntti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prey+depletion+by+the+foraging+of+the+Eurasian+treecreeper%2C+Certhia+familiaris%2C+on+tree-trunk+arthropods%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">Prey depletion by the foraging of the Eurasian treecreeper, Certhia familiaris, on tree-trunk arthropods.</a> Oecologia. 128, 488-491 (2001).</li>
<li>Prinzing, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+Shifting+Microclimatic+Mosaics+by+Arthropods+on+Exposed+Tree+Trunks%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+-+Entomological+Society+of+America%22%5BJournal%5D)">Use of Shifting Microclimatic Mosaics by Arthropods on Exposed Tree Trunks.</a> Annals - Entomological Society of America. 94, 210-218 (2001).</li>
<li>Hébert, C., St-Antoine, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oviposition+trap+to+sample+eggs+of+Operophtera+bruceata+%28Lepidoptera%3A+Geometridae%29+and+other+wingless+geometrid+species%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Entomologist%22%5BJournal%5D)">Oviposition trap to sample eggs of Operophtera bruceata (Lepidoptera: Geometridae) and other wingless geometrid species.</a> Canadian Entomologist. 131 (4), 557-566 (1999).</li>
<li>Hanula, J. L., New, K. C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+trap+for+capturing+arthropods+crawling+up+tree+boles%5BTitle%5D)+AND+%22Res.+Note+SRS-3%2C+USDA+Forest+Service%2C+Southern+Research+Station%22%5BJournal%5D)">A trap for capturing arthropods crawling up tree boles.</a> Res. Note SRS-3, USDA Forest Service, Southern Research Station. , Asheville, NC. (1996).</li>
<li>Lozano, C., Kidd, N. A. C., Jervis, M. A., Campos, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+parasitoid+spatial+heterogeneity%2C+sex+ratio+and+mutual+interference+on+the+interaction+between+the+olive+bark+beetle+Phloeotribus+scarahaeoides+%28Col.%2C+Scolytidae%29+and+the+pteromalid+parasitoid+Cheiropachus+quadrum+%28Hym.%2C+Pteromalidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Entomology%22%5BJournal%5D)">Effects of parasitoid spatial heterogeneity, sex ratio and mutual interference on the interaction between the olive bark beetle Phloeotribus scarahaeoides (Col., Scolytidae) and the pteromalid parasitoid Cheiropachus quadrum (Hym., Pteromalidae).</a> Journal of Applied Entomology. 121 (9/10), 521-528 (1997).</li>
<li>Kelsey, R. G., Gladwin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Attraction+of+Scolytus+unispinosus+bark+beetles+to+ethanol+in+water-stressed+Douglas-fir+branches%5BTitle%5D)+AND+%22Forest+Ecology+and+Management%22%5BJournal%5D)">Attraction of Scolytus unispinosus bark beetles to ethanol in water-stressed Douglas-fir branches.</a> Forest Ecology and Management. 144, 229-238 (2001).</li>
<li>Walter, D. E. Hidden in plain site: Mites in the Canopy. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWalter%2C+DE+%22Forest+Canopies%22">Forest Canopies</a>. Lowman, M., Rinker, H. B. , Elsevier Academic Press. Burlington, VT. 224-241 (2004).</li>
<li>Pinzón, J., Spence, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bark-dwelling+spider+assemblages+%28Araneae%29+in+the+boreal+forest%3A+dominance%2C+diversity%2C+composition+and+life-histories%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Conservation%22%5BJournal%5D)">Bark-dwelling spider assemblages (Araneae) in the boreal forest: dominance, diversity, composition and life-histories.</a> Journal of Insect Conservation. 14, 439-458 (2010).</li>
<li>Futuyma, D. J., Gould, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Associations+of+plants+and+insects+in+deciduous+forest%5BTitle%5D)+AND+%22Ecological+Monographs%22%5BJournal%5D)">Associations of plants and insects in deciduous forest.</a> Ecological Monographs. 49, 33-50 (1979).</li>
<li>Marshall, S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMarshall%2C+S+%22Insects%3A+their+natural+history+and+diversity%3A+with+a+photographic+guide+to+insects+of+eastern+North+America%22">Insects: their natural history and diversity: with a photographic guide to insects of eastern North America</a>. , Firefly Books. (2006).</li>
<li>Hódar, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+regression+equations+for+estimation+of+arthropod+biomass+in+ecological+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Oecologia%22%5BJournal%5D)">The use of regression equations for estimation of arthropod biomass in ecological studies.</a> Acta Oecologia. 17, 421-433 (1996).</li>
<li>Rogers, L. E., Hinds, W. T., Buschbom, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+general+weight+vs.+length+relationship+for+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+-+Entomological+Society+of+America%22%5BJournal%5D)">A general weight vs. length relationship for insects.</a> Annals - Entomological Society of America. 69, 387-389 (1976).</li>
<li>Schoener, T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Length-weight+regressions+in+tropical+and+temperate+forest+understory+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+-+Entomological+Society+of+America%22%5BJournal%5D)">Length-weight regressions in tropical and temperate forest understory insects.</a> Annals - Entomological Society of America. 73, 106-109 (1980).</li>
<li>Hanula, J. L., Franzreb, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Source%2C+distribution+and+abundance+of+macroarthropods+on+the+bark+of+longleaf+pine%3A+potential+prey+of+the+red-cockaded+woodpecker%5BTitle%5D)+AND+%22Forest+Ecology+and+Management%22%5BJournal%5D)">Source, distribution and abundance of macroarthropods on the bark of longleaf pine: potential prey of the red-cockaded woodpecker.</a> Forest Ecology and Management. 102, 89-102 (1998).</li>
<li>Collins, C. S., Conner, R. N., Saenz, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+hardwood+midstroy+and+pine+species+on+pine+bole+arthropods%5BTitle%5D)+AND+%22Forest+Ecology+and+Management%22%5BJournal%5D)">Influence of hardwood midstroy and pine species on pine bole arthropods.</a> Forest Ecology and Management. 164, 211-220 (2002).</li>
<li>Collins, C. W., Hood, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gypsy+moth+tree+banding+material%3A+How+to+make%2C+use%2C+and+apply+it%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+899+of+the+United+States+Department+of+Agriculture%22%5BJournal%5D)">Gypsy moth tree banding material: How to make, use, and apply it.</a> Bulletin 899 of the United States Department of Agriculture. , Washington, D.C. (1920).</li>
<li>King, R. S., Wrubleski, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+and+diel+availability+of+flying+insects+as+potential+duckling+food+in+prairie+wetlands%5BTitle%5D)+AND+%22Wetlands%22%5BJournal%5D)">Spatial and diel availability of flying insects as potential duckling food in prairie wetlands.</a> Wetlands. 18, 100-114 (1998).</li>
<li>Atakan, E., Canhilal, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+Yellow+Sticky+Traps+at+Various+Heights+for+Monitoring+Cotton+Insect+Pests%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Agricultural+and+Urban+Entomology%22%5BJournal%5D)">Evaluation of Yellow Sticky Traps at Various Heights for Monitoring Cotton Insect Pests.</a> Journal of Agricultural and Urban Entomology. 21, 15-24 (2004).</li>
<li>Dial, R., Roughgarden, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+Removal+of+Insectivores+from+Rain+Forest+Canopy%3A+Direct+and+Indirect+Effects%5BTitle%5D)+AND+%22Ecology%22%5BJournal%5D)">Experimental Removal of Insectivores from Rain Forest Canopy: Direct and Indirect Effects.</a> Ecology. 76, 1821-1834 (1995).</li>
<li>Speight, M. R. Sampling insects from trees: shoots, stems, and trunks. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSpeight%2C+MR+%22Insect+sampling+for+forest+ecosystems%22">Insect sampling for forest ecosystems</a>. Leather, S. R., Lawton, J. H., Likens, G. E. , Blackwell Publishing. Malden, MA. 77-115 (2005).</li>
<li>Southwood, T. R. E., Henderson, P. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSouthwood%2C+TRE+%22Ecological+methods%22">Ecological methods</a>. , John Wiley & Sons. Hoboken, NJ. (2009).</li>
<li>Sierzega, K., Eichholz, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+the+potential+biological+impacts+of+modifying+disturbance+regimes+in+deciduous+forests%5BTitle%5D)+AND+%22Oecologia%22%5BJournal%5D)">Understanding the potential biological impacts of modifying disturbance regimes in deciduous forests.</a> Oecologia. 189, 267-277 (2019).</li>
</ol>

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Chociaż stosowano alternatywne techniki, takie jak sieci ssące lub zamiatające, większość wcześniej opublikowanych prób ilościowego oznaczania stawonogów na pniach drzew wykorzystywała pewną wersję ilościowego określania stawonogów poprzez wizualną inspekcję pni drzew na polu, stosowanie chemicznych pestycydów do zabijania stawonogów na określonym obszarze, a następnie ilościowe określanie odzyskanych stawonogów lub umieszczanie pułapek lejkowych lub lepkiej substancji bezpośrednio na drzewie19<su...

Lądowe stawonogi odgrywają ważną rolę w naszym środowisku. Oprócz tego, że same w sobie są przedmiotem zainteresowania naukowego, stawonogi mogą być zarówno szkodliwe, jak i korzystne dla innych poziomów troficznych (tj. upraw, roślin ogrodniczych, rodzimej roślinności i pożywienia dla organizmów owadożernych1,2,3,4). Dlatego zrozumienie czynników, które wpływają na rozwój i liczebność społeczności stawonogów ma kluczowe znaczenie dla rolników5, menedżerów ds. zwalczania szkodników6, leśników4, biologów roślin7, entomologów8, oraz ekologów zajmujących się dziką przyrodą i ochroną przyrody, którzy badają dynamikę społeczności i radzą sobie z organizmami owadożernymi9. Zbiorowiska stawonogów różnią się składem gatunkowym i liczebnością zarówno czasowo, jak i przestrzennie w różnych krajobrazach ekologicznych, w tym w zbiorowiskach roślinnych, gatunkach roślin i w różnych regionach poszczególnych roślin. Na przykład badania wykazały znaczące różnice w wskaźnikach społeczności stawonogów między korzeniami, pniami i łodygami oraz liśćmi w obrębie tego samego pojedynczego drzewa10,11. Odkrycia te nie są zaskakujące, biorąc pod uwagę, że różne części tej samej rośliny, np. liście kontra kora drzewa, dostarczają różnych zasobów, do których wykorzystania przystosowały się stawonogi. W ten sposób każda część rośliny może wspierać inną społeczność stawonogów. Ponieważ stawonogi żyjące w liściach mogą mieć tak duży wpływ społeczno-ekonomiczny i środowiskowy, włożono znaczne wysiłki w mierzenie wskaźników społeczności przy użyciu zarówno podejść jakościowych, jak i ilościowych12. Alternatywnie, znacznie mniej wysiłku włożono w opracowanie podejść do ilościowego określania kortykalnych (żyjących w korze) społeczności stawonogów.
Podobnie jak społeczności stawonogów żyjących w liściach, korowe społeczności stawonogów mogą być ważne zarówno z punktu widzenia społeczno-ekonomicznego, jak i środowiskowego. Niektóre choroby leśne, które są powodowane lub ułatwiane przez stawonogi korowe, mogą być szkodliwe dla ekonomicznie opłacalnego pozyskiwania drewna4. Ponadto stawonogi korowe mogą być ważnym elementem łańcucha pokarmowego w społecznościach leśnych13,14. Na przykład stawonogi żyjące w lasach są głównym źródłem pożywienia dla wielu owadożernych ptaków śpiewających zbierających korę15,16. W związku z tym zrozumienie czynników wpływających na zbiorowiska stawonogów korowych jest interesujące dla leśników oraz ekologów zarówno podstawowych, jak i stosowanych.
Zrozumienie czynników, które wpływają na skład i liczebność społeczności stawonogów często wymaga schwytania osobników. Techniki chwytania można ogólnie podzielić na techniki jakościowe, które wykrywają obecność gatunku tylko w celu oszacowania zasięgu, bogactwa i różnorodności gatunków17, lub techniki półilościowe i ilościowe, które pozwalają na indeks lub oszacowanie liczebności i zagęszczenia osobników w grupie taksonomicznej18,19. Techniki półilościowe i ilościowe pozwalają badaczom oszacować lub przynajmniej spójnie pobrać próbki z określonego obszaru próbki i oszacować prawdopodobieństwo wykrycia lub założyć, że prawdopodobieństwo wykrycia jest bezkierunkowe i odpowiednie, aby nie przesłaniać zdolności badacza do wykrywania przestrzennych lub czasowych zmian w obfitości. Półilościowe i ilościowe techniki ilościowego oznaczania stawonogów korowych obejmują pobieranie próbek ssących lub próżniowych określonego obszaru20,21,22, systematyczne liczenie widocznych stawonogów18,23, lepkie pułapki24, różne pułapki lejkowe lub doniczkowe8,25oraz otwory wejściowe lub wynurzające26,27.
Uważa się, że wiele czynników przestrzennych i czasowych prowadzi do różnic w korowych społecznościach stawonogówów11,14,28,29. Na przykład uważa się, że tekstura kory drzew wpływa na strukturę społeczności stawonogów żyjących na drzewach14. Ze względu na bardziej zróżnicowaną powierzchnię pni drzew z bardziej bruzdowaną korą, uważa się, że drzewa z bardziej bruzdowaną korą wspierają większą różnorodność i obfitość stawonogów14.
W tym artykule przedstawiamy nowe półilościowe podejście do liczenia korowych stawonogów, które może być użyte do opisania i przetestowania hipotez dotyczących zmienności w zbiorowiskach stawonogów korowych w czasie i przestrzeni z odpowiednią precyzją, aby wykryć różnice między gatunkami drzew. Za pomocą lepkich pułapek przymocowanych do pni drzew porównaliśmy liczebność, długość całkowitą (substytut masy ciała), bogactwo i różnorodność społeczności stawonogów na pniu dębu białego (Quercus alba), orzesznika świńskiego (Carya glabra), klonu cukrowego (Acer saccharum), buka amerykańskiego (Fagus grandifolia) i topoli tulipanowca (Liriodendron tulipifera), drzew różniących się teksturą kory.
To badanie zostało przeprowadzone w ekologicznych sekcjach Ozark i Shawnee Hills w Shawnee National Forest (SNF) w południowo-zachodnim Illinois. W lipcu 2015 r. zidentyfikowaliśmy 18 stanowisk (9 zdominowanych przez dąb/hikory i 9 zdominowanych przez buk/klon) z mapą pokrycia drzewostanów USFS dla SNF (allveg2008.shp) w systemie ArcGIS 10.1.1. Na stanowiskach kserycznych dominującymi gatunkami były orzesznik świński i dąb biały, a na stanowiskach mezotycznych dominującymi gatunkami były buk amerykański, klon cukrowy i topola tulipanowiec. Aby porównać zbiorowiska stawonogów między gatunkami drzew, w każdym miejscu zbierania danych, zidentyfikowaliśmy trzy z pięciu gatunków ogniskowych (dąb biały, orzesznik świński, klon cukrowy, buk amerykański i topola tulipanowa) o średnicy >17 cm na wysokości pierśnicy (d.b.h.) najbliżej środka promienistego okręgu o długości 10 m. Jeśli obecnych było mniej niż trzy odpowiednie drzewa, okrąg był rozszerzany i wybierano najbliższe drzewo spełniające kryteria. Dla każdego wybranego drzewa zainstalowaliśmy cztery lepowe pułapki na wysokości pierśnicy, po jednej skierowane w każdym kierunku kardynalnym: północ, południe, wschód i zachód.
Zebraliśmy dane o stawonogach z pni 54 pojedynczych drzew (12 orzeszników świńskich, 15 białych dębów, 8 buków amerykańskich, 12 klonów cukrowych i 7 topoli tulipanowców) wśród 18 miejsc. Pogrupowaliśmy stawonogi według uproszczonej klasyfikacji cechowej według diagnostycznych cech morfologicznych wskazujących na blisko spokrewnione rzędy z obecnych zapisów filogenetycznych, podobnie jak w przypadku "operacyjnych jednostek taksonomicznych"30,31 (Dodatek A). Opierając się na tej klasyfikacji, schwytaliśmy przedstawicieli 26 gildii w nasze pułapki, z których każda była na miejscu przez 9 dni (Dodatek A). Ponieważ nasze badanie koncentrowało się na interakcjach troficznych między gatunkami drzew, stawonogómi korowymi i ptakami zbierającymi korę, usunęliśmy z analizy wszystkie stawonogi mniejsze niż 3 mm, ponieważ ich znaczenie jako źródła pożywienia dla ptaków zbierających korę jest minimalne. Użyliśmy modelu mieszanego, który obejmował albo długość stawonogów (substytut masy ciała), liczebność, różnorodność Shannona i bogactwo jako zmienną zależną, gatunki drzew i wysiłek (odsetek drzew pokrytych pułapkami) jako zmienne stałe oraz miejsce jako zmienną losową. Ponieważ wszystkie pułapki z jednego drzewa zostały połączone jako jedna próbka, poszczególne drzewa nie zostały uwzględnione jako zmienna losowa.

<table><tbody><tr><td>Prosta golarka do kory, 8-calowy</td> <td>tuf drewniany</td><td>TMB-08DS</td><td></td></tr><tr><td>PRO SERIES Mysz masowa i Tablice klejowe na owady</td><td>Catchmaster</td><td>#60m</td><td></td></tr><tr><td>Zszywacz</td><td>Stanley</td><td>TR45D</td><td></td></tr></tbody></table>

kwantyfikacja stawonogów korowych za pomocą lepkich pułapek

Quantifying Corticolous Arthropods Using Sticky Traps

Lądowe stawonogi odgrywają ważną rolę w naszym środowisku. Kwantyfikacja stawonogów w sposób, który pozwala na precyzyjny indeks lub oszacowanie gęstości, wymaga metody o wysokim prawdopodobieństwie wykrycia i spójnym obszarze pobierania próbek. Użyliśmy wyprodukowanych pułapek lepkich, aby porównać liczebność, długość całkowitą (substytut biomasy), bogactwo i różnorodność stawonogów korowych Shannona wśród pni 5 gatunków drzew. Skuteczność tej metody była wystarczająca do wykrycia zmienności stawonogów korowych wśród gatunków drzew i zapewnienia błędu standardowego średniej, który wynosił <20% średniej dla wszystkich oszacowań przy rozmiarach próby od 7 do 15 pojedynczych drzew każdego gatunku. Nasze wyniki wskazują, że nawet przy tak umiarkowanych rozmiarach próby, poziom precyzji wskaźników społeczności stawonogów uzyskanych przy użyciu tego podejścia jest odpowiedni, aby odpowiedzieć na większość pytań ekologicznych dotyczących czasowej i przestrzennej zmienności stawonogów korowych. Wyniki tej metody różnią się od innych podejść ilościowych, takich jak nokaut chemiczny, oględziny i pułapki lejkowe, tym, że dostarczają wskazówek na temat aktywności stawonogów korowych w stosunkowo długim okresie, lepiej obejmując tymczasowych mieszkańców pnia, latające stawonogi, które tymczasowo lądują na pniu drzewa i pełzające stawonogi, które wykorzystują pień drzewa jako trasę podróży z ziemi do wyższych liści leśnych. Ponadto uważamy, że komercyjnie produkowane pułapki lepowe zapewniają bardziej precyzyjne szacunki i są logistycznie prostsze niż poprzednio opisana metoda bezpośredniego nakładania lepkiego materiału na korę drzewa lub nakładania lepkiego materiału na taśmę lub inny rodzaj podłoża i nakładania go na korę drzewa.

Na podstawie wyników modelu mieszanego, model, który zawierał gatunki drzew, najlepiej wyjaśniał różnice w całkowitej długości stawonogów, liczebności i różnorodności, żadna ze zmiennych niezależnych nie wyjaśniała znacznego zróżnicowania w bogactwie, chociaż modele, które uwzględniały wysiłek odłowu gatunków drzew, były konkurencyjne w stosunku do modelu zerowego (Tabela 1). Ponadto wydaje się, że odsetek uwięzionych drzew nie ma wpływu na liczebność, długość całkowitą i...

Opisujemy półilościowe podejście do pomiaru cech korowych (żyjących w korze) społeczności stawonogówów. Umieściliśmy komercyjnie produkowane lepowe pułapki na pniach drzew, aby oszacować liczebność, całkowitą długość (substytut biomasy), bogactwo i różnorodność Shannona w celu porównania między gatunkami drzew.

Kwantyfikacja stawonogów korowych za pomocą lepkich pułapek

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density ...

Protokół ten może być wykorzystany do oszacowania krótko- i długoterminowej struktury zbiorowisk stawonogów korowych. Technika ta jest przydatna do chwytania zarówno latających, jak i pełzających stawonogów i ułatwia łatwą analizę laboratoryjną. Aby rozpocząć tę procedurę, zmierz średnicę drzewa na wysokości pierśnicy.Użyj golarki do kory, aby rozpocząć usuwanie kory na tej wysokości w każdym kierunku kardynalnym w obszarze wielkości wstępnie wyprodukowanej lepkiej pułapki. Kontynuuj golenie, aż obszar będzie wystarczająco gładki, aby przymocować lepką pułapkę do drzewa z minimalną przestrzenią pod spodem, do której mogą wpełznąć stawonogi. Następnie użyj ciemnego stałego rynku, aby oznaczyć tył pułapki datą, numerem pułapki, lokalizacją i innymi istotnymi informacjami.Aby złapać zarówno latające, jak i pełzające stawonogi, otwórz i usuń boki oraz zakryj lepką pułapkę, przecinając karton wzdłuż krawędzi lepkiego materiału. Aby wykluczyć latające stawonogi z lądowania bezpośrednio na pułapce, otwórz pułapkę zgodnie z instrukcją na pudełku. Umieść jedną pułapkę w każdym wcześniej ogolonym miejscu, tak aby otwory były zorientowane pionowo, aby zmaksymalizować chwytanie stawonogów pełzających w górę iw dół pni drzew.W przypadku pułapek ze zdjętymi wierzchołkami w celu schwytania zarówno latających, jak i pełzających stawonogów, należy ustawić pułapki tak, aby koniec, w którym znajdował się otwór, był zorientowany pionowo, aby zachować spójność pułapki. Następnie zszyj pułapki do drzewa, umieszczając jedną zszywkę w każdym rogu i jedną zszywkę w środkowej dolnej części i jedną w środkowej górnej części pułapki, zaczynając od prawego dolnego rogu i pracując zgodnie z ruchem wskazówek zegara. Uważaj, aby upewnić się, że całe dno i góra każdej pułapki przylegają do drzewa, aby zminimalizować pełzanie stawonogów pod spodem.Pozostaw pułapki na miejscu przez żądany czas, upewniając się, że wszystkie pułapki zostały pozostawione na ten sam czas. Po upływie pożądanego czasu przykryj całą pułapkę, z wyjątkiem zszywek, folią z celulozy polimerowej. Usuń każdą pułapkę, biorąc duży płaski śrubokręt i częściowo podważając każdą zszywkę z drzewa.Następnie użyj dużych szczypiec z wąskimi końcówkami lub podobnego narzędzia do chwytania, aby wyciągnąć zszywki z drzewa. Alternatywnie, aby wykluczyć latające stawonogi, zamknij pułapkę, postępując zgodnie ze wskazówkami z tyłu pudełka. Umieść pułapki w sztywnym pudełku, aby przetransportować je z powrotem do laboratorium w celu analizy.Jeśli pułapki mają być przechowywane dłużej niż 12 godzin, umieść je w zamrażarce, aby zachować ich zawartość. Korzystając z lunety sekcyjnej, zbadaj zawartość pułapki, rejestrując liczbę osobników do pożądanego poziomu taksonomicznego. Na podstawie zarejestrowanych danych można oszacować bogactwo, wskaźniki różnorodności lub obfitość.Jeśli pożądana jest szacowana biomasa, zmierz długość i szerokość stawonogów z dokładnością do milimetra i użyj opublikowanych regresji biomasy długości i szerokości, aby oszacować biomasę. Odejmij całkowitą szerokość pułapek od zmierzonej średnicy dla każdego drzewa, aby oszacować wysiłek związany z zastawianiem pułapek dla każdego drzewa. Ponieważ próbki z wielu pułapek na tym samym drzewie nie są niezależne, należy zsumować wszystkie próbki z tego samego drzewa lub uwzględnić pojedyncze drzewo jako zmienną losową we wszystkich analizach, aby uniknąć pseudoreplikacji.Opierając się na wynikach modelu mieszanego, model, który obejmował gatunki drzew, najlepiej wyjaśnił zmienność i całkowitą długość, liczebność i różnorodność stawonogów. Żadna ze zmiennych niezależnych nie wyjaśniała znacznych różnic w bogactwie, chociaż modele, które obejmowały wysiłek związany z odłowem gatunków drzew, były konkurencyjne w stosunku do modelu zerowego. Ponadto proporcje uwięzionych drzew wydają się nie mieć wpływu na liczebność, całkowitą długość i różnorodność Shannon, a jedynie minimalny wpływ na bogactwo.Błąd standardowy głównego dla całkowitej długości stawonogów wahał się od czterech procent średniej u topoli tulipanowca do 17% u klonu cukrowego. Liczebność miała podobny poziom zmienności wśród gatunków, gdzie błąd standardowy średniej wynosi siedem procent w topoli tulipanowca i 18% w klonie cukrowym. I odwrotnie, zmienność bogactwa i różnorodności stawonogów była znacznie mniejsza w obrębie gatunków drzew.W tym przypadku błąd standardowy średniej bogactwa wahał się od czterech procent średniej dla hikory świńskiej do dziewięciu procent średniej dla amerykańskich plaż. Podczas gdy różnorodność wahała się od czterech procent średniej na amerykańskiej plaży do siedmiu procent średniej na topoli tulipanowej. Podczas golenia kory z drzewa należy upewnić się, że obszar jest tak gładki, jak to możliwe i zminimalizować wszelkie szczeliny między drzewem a krawędzią pułapki.

quantifying-corticolous-arthropods-using-sticky-traps

Research

JoVE Journal

Environment

Środowisko

Prezentujemy metody oceny, jak ryzyko drapieżnictwa może zmienić jakość chemiczną ofiar roślinożerców, wywołując zmiany w diecie, aby sprostać wymaganiom zwiększonego stresu, oraz jak rozkład zwłok tych zestresowanych roślinożerców spowalnia późniejszy rozkład ściółki roślinnej przez mikroby glebowe.

Powiązanie ryzyka drapieżnictwa, stresu fizjologicznego roślinożerców i mikrobiologicznego rozkładu ściółki roślinnej

Pionowy olfaktometr labiryntu w kształcie litery T jest opisany do badania reakcji behawioralnej stawonogów. Olfaktometr pozwala eksperymentatorowi zmierzyć wybory dokonywane przez osoby badane pod wpływem dwóch potencjalnych pól zapachowych. Za pomocą tego urządzenia można zmierzyć zarówno przyciąganie, jak i odpychanie od substancji zapachowych.

Pionowy test wyboru labiryntu w kształcie litery T dla reakcji stawonogów na substancje zapachowe

Białka są często używane do oznaczania stawonogów do badań nad rozprzestrzenianiem się. Przedstawiono metody podawania wewnętrznych i zewnętrznych znaczników białkowych na stawonogach. Przedstawiono również techniki wykrywania znaczników białkowych, zarówno za pomocą pośrednich lub kanapkowych testów immunoenzymatycznych (ELISA).

Podawanie i wykrywanie śladów białkowych na stawonogach w celu badań nad dyspersją

Najczęstsze analizy zawartości jelit makrobezkręgowców są wizualne. Wymagając intensywnej wiedzy na temat różnorodności morfologicznej organizmów drapieżnych, pomijają zdobycz o miękkim ciele, a ze względu na silne rozdrobnienie zdobyczy są prawie niemożliwe dla niektórych organizmów, w tym obunogów. Zapewniamy szczegółowe, nowatorskie podejścia genetyczne do identyfikacji zdobyczy makrobezkręgowców w diecie obunogów.

Protokół laboratoryjny do analizy genetycznej zawartości jelit makrobezkręgowców wodnych przy użyciu starterów rDNA specyficznych dla grupy

Areny do testowania biologicznego przyciągania zdjęć są używane do określenia optymalnego koloru (kolorów) światła, aby zmaksymalizować atrakcyjność owadów; jednak testy biologiczne i metody są specyficzne dla docelowych zachowań i siedlisk owadów. Konfigurowalny sprzęt i modyfikacje są wyjaśnione dla owadów prowadzących nocny lub dzienny tryb życia oraz lądowych lub powietrznych.

Kluczowe elementy testu biologicznego przyciągania zdjęć do badań owadów lub programów monitorowania

Zachowanie związane z ochroną partnera odgrywa ważną rolę w rozmnażaniu widłonogów z rodzaju Tigriopus. Jednak metody badania tego zachowania nie zostały dobrze opisane. Poniżej opisujemy metody: 1) indywidualnej hodowli dziewiczych zwierząt Tigriopus oraz 2) ilościowej analizy ich zachowań związanych z ochroną partnerów.

Indywidualne hodowle widłonogów Tigriopus i analiza ilościowa ich zachowań związanych z ochroną partnerów

Opisujemy, jak określić ilościowo stawonogi żyjące w liściach, zamykając liście i końce gałęzi w torbie, przycinając i zamrażając materiał w worku, a następnie płucząc wcześniej zamrożony materiał w wodzie, aby oddzielić stawonogi od podłoża w celu ilościowego określenia.

Metoda ilościowego oznaczania stawonogów żyjących w liściach

Aby zbadać wpływ sztucznego światła w nocy (ALAN) na nocne owady latające, pobieranie próbek musi być ograniczone do nocy. Protokół opisuje tanią, zautomatyzowaną pułapkę przechwytującą lot, która umożliwia naukowcom pobieranie próbek w zdefiniowanych przez użytkownika okresach ze zwiększoną replikacją.

Tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy

Ten artykuł przedstawia podstawowe metody standaryzacji ważnych czynników, takich jak gęstość, dostępność paszy, źródło nawodnienia i kontrola środowiska dla długoterminowej hodowli laboratoryjnych jadalnego świerszcza, Gryllus bimaculatus.

Utrzymanie laboratoryjnych kultur Gryllus bimaculatus, wszechstronnego modelu prostoskrzydłego do hodowli owadów i fizjologii bezkręgowców

Prezentujemy metodę zbierania pasożytów morskich ryb gnathiidae za pomocą pułapek świetlnych umieszczonych w miejscach terenowych poprzez nurkowanie na wstrzymanym oddechu lub nurkowanie.

Zbieranie pasożytów morskich gnathiidae isopodów za pomocą pułapek świetlnych

Tutaj wprowadzamy trzy metody fizycznego zwalczania gryzoni, cztery metody liczenia ich skuteczności przeciwko gryzoniom oraz statystyki efektu budowy muru chroniącego przed gryzoniami.

Ściana odporna na gryzonie: skuteczna fizyczna metoda zwalczania gryzoni i jej statystyki skuteczności

Naucz się półilościowej metody oceny społeczności stawonogów korowych za pomocą lepkich pułapek. Technika umożliwia szacowanie liczebności, różnorodności i biomasy na różnych gatunkach drzew.

Kwantyfikacja stawonogów korowych za pomocą lepkich pułapek

Przeglądaj więcej filmów