January 12th, 2020
Bioinformatyka to użyteczny sposób na przetwarzanie dużych zbiorów danych. Dzięki wdrożeniu podejść bioinformatycznych naukowcy mogą szybko, niezawodnie i skutecznie uzyskiwać wnikliwe aplikacje i odkrycia naukowe. W artykule przedstawiono wykorzystanie bioinformatyki w badaniach nad rakiem jajnika. Z powodzeniem weryfikuje również wyniki badań bioinformatycznych poprzez eksperymenty.
Bioinformatyka to użyteczny sposób wydobywania informacji ze zbiorów danych. Eksperymentowanie jest równie ważne dla walidacji. Łączymy oba podejścia, aby zbadać rolę sygnalizacji notch w raku jajnika.
Główną zaletą tej techniki jest to, że naukowcy mogą wykorzystać informacje z bioinformatycznych baz danych do zaplanowania kierunku badań przed przeprowadzeniem eksperymentu. Dzięki zgromadzonym danym bioinformatycznym dotyczącym chorób człowieka, naukowcy nie mają już zawiązanych oczu. Można przeprowadzić eksperymenty w celu zweryfikowania konkretnych wyników, co może prowadzić do lepszych terapii lub diagnozowania chorób.
W celu analizy meta-A związku interesującego genu z określonym typem nowotworu, utwórz konto z adresem e-mail powiązanym z nauką, aby uzyskać dostęp do bazy danych PRECOG i wprowadź adres e-mail i hasło powiązane z kontem do terminala logowania. Kliknij Wyświetl szczegóły i wprowadź interesujący Cię gen w pasku wyszukiwania. Następnie użyj paska przewijania, aby uzyskać wskaźnik Z-score przeżycia dla określonego rodzaju nowotworu.
Aby zbadać związek między poziomem ekspresji genów a stopniami zaawansowania raka jajnika, przejdź do strony internetowej CSIOVDB i wprowadź nazwę interesującego genu w pasku wyszukiwania. Następnie proszę kliknąć na zakładkę Przetrwanie. Aby ocenić dane dotyczące ekspresji genów w tkankach różnorodnych, prawidłowych i nowotworowych, przejdź do portalu GENT i kliknij kartę Szukaj.
W sekcji słowa kluczowego wybierz symbol genu dla terminów z menu rozwijanego, wprowadź symbol genu interesującego Cię genu i wybierz opcję Tkanka jako opcję typu. Kliknij przycisk Szukaj. Zostaną wyświetlone wykresy podsumowujące ekspresję genów w tkankach prawidłowych i nowotworowych różnych typów nowotworów, w oparciu o platformy U133A i U122 Plus 2.
Następnie kliknij łącze Pobierz dane wynikowe, aby uzyskać dostęp do szczegółowych informacji o wartościach ekspresji genów, typach tkanek i źródłach danych. Aby wyszukać zmiany genetyczne i sieci sygnalizacyjne, otwórz stronę internetową portalu CBIO i korzystając z zapytania na stronie docelowej, kliknij interesujące narządy lub tkanki w sekcji Wybierz badania, wybierz konkretne badanie, które Cię interesuje, a następnie kliknij Zapytanie według genu. W sekcji Wybierz profile genomowe wybierz mutacje, przypuszczalne zmiany liczby kopii z GISTIC lub opcję ekspresji mRNA.
Wybierz odpowiednie dane z menu Wybierz pacjenta/zestaw przypadków i wprowadź symbole genów docelowych w polu zapytania Wprowadź geny. Kliknij przycisk Prześlij zapytanie i otwórz kartę Sieć, aby pobrać żądaną sieć genów. Następnie kliknij kartę Plik i wybierz opcję Zapisz jako obraz PNG w celu pobrania obrazu sieciowego.
Aby stworzyć muchy z nadekspresją NICD lub NICD i mam, przygotuj odpowiednie stada much i zastosuj technikę celowania w czasową i regionalną ekspresję genów w celu kontrolowania czasoprzestrzennej ekspresji genów, zgodnie ze standardowymi protokołami. Wyhoduj muchy w temperaturze 18 stopni Celsjusza do osiągnięcia dorosłości, a następnie przełącz się na 29 stopni Celsjusza z drożdżami na 48 godzin. Pod koniec inkubacji w temperaturze 29 stopni Celsjusza dodaj trzy mililitry PBS do naczynia do pobierania zarodków i znieczul kulturę much za pomocą podkładki z dwutlenkiem węgla.
Użyj mikroskopu preparacyjnego, aby zidentyfikować znieczuloną samicę muchy i użyj pary kleszczy preparacyjnych, aby ostrożnie chwycić dolną część klatki piersiowej muchy. Zanurz muchę w PBS w naczyniu do pobierania zarodków i użyj drugiej pary kleszczy, aby uszczypnąć dolną część brzucha, delikatnie pociągając, aby uwolnić narządy wewnętrzne. Zlokalizuj i odłącz parę jajników od ciała muchy i przerwij osłonkę mięśniową, znajdującą się na tylnym końcu jajników, aby oddzielić jajniki.
Następnie umieść izolowane jajniki w 1,5-mililitrowej probówce wirówkowej, zawierającej 500 mikrolitrów PBS na lodzie. Po pobraniu wszystkich jajników zastąp PBS 500 mikrolitrami 4% formaldehydu i umieść probówkę na nutatorze na 10 minut. Pod koniec inkubacji wyrzuć utrwalacz i umyj jajniki trzema 15-minutowymi płukaniami w jednym mililitrze PBT na przemycie.
Po ostatnim płukaniu oznacz jajniki 150 mikrolitrami po 10 mikrogramów na mililitr DAPI przez 10-15 minut na nutatorze. Pod koniec inkubacji przemyć jajniki jeden raz przez 10 minut jednym mililitrem PBT, a następnie dwa 10-minutowe płukania w PBS. Po drugim płukaniu usuń wszystkie oprócz ostatnich 300 mikrolitrów PBS i użyj końcówki pipety o pojemności 200 mikrolitrów, aby kilkakrotnie strytekować jajniki, aby uwolnić komory jajowe.
Następnie delikatnie osadź tkankę jajnika poprzez szybkie wirowanie w mikrowirówce i usuń jak najwięcej PBS, nie naruszając osadu jajnika. Używając końcówki do pipety o pojemności 1 000 mikrolitrów, przenieś około trzech kropli roztworu montażowego do probówki i użyj końcówki do pipety o pojemności 200 mikrolitrów z około 0,33 milimetra przyciętym od końca, aby przenieść całe 120 mikrolitrów roztworu mocującego zawierającego jajnik na szklane szkiełko mikroskopowe. Delikatnie umieść szkło nakrywkowe na roztworze montażowym i uszczelnij krawędzie przezroczystym lakierem do paznokci.
Następnie użyj mikroskopu konfokalnego przy 10-krotnym powiększeniu z aperturą 0,8, aby uzyskać obrazy barwionych i zamontowanych jajników. Korzystając z portalu PRECOG, jak pokazano, można uzyskać Z-score NOTCH2, NOTCH3 i MAML1 w raku jajnika. Ujemne wartości Z-score wskazują na słabe całkowite przeżycie pacjentów z wysokim poziomem ekspresji trzech genów.
Wykorzystanie bazy danych CSIOVD do potwierdzenia tych ustaleń wskazuje ponadto, że wysoka ekspresja NOTCH2, NOTCH3 i MAML1 koreluje ze słabym ogólnym i wolnym od choroby przeżyciem. Dalsze testy permutacji sugerują, że NOTCH2, NOTCH3 i MAML1 są silnie eksprymowane w tkankach nowotworowych. Na podstawie tych trzech podstawowych genów można stworzyć sieć sygnalizacyjną, aby zapewnić 50 najczęściej zmienianych sąsiednich genów, które również znajdują się w tym samym szlaku o najwyższych wskaźnikach mutacji.
Co ciekawe, nadekspresja genu NOTCH równoważnego z Drosophila, NICD, sama w sobie nie indukuje nowotworów u Drosophila. Natomiast nadekspresja NICD i mam razem indukuje nowotwory u muszek owocowych, o czym świadczy obecność wielu warstw nabłonka i nagromadzonych komórek. Dalsza walidacja eksperymentów może utorować drogę do identyfikacji potencjalnych nowych celów terapii lekowej, biomarkerów choroby i spersonalizowanych metod leczenia.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Ten artykuł bada integrację bioinformatyki i eksperymentacji w celu zbadania sygnalizacji notch w raku jajnika. Wykorzystując bazy danych bioinformatycznych, naukowcy mogą strategicznie planować swoje eksperymenty, co prowadzi do bardziej pouczających odkryć naukowych.
Integrating bioinformatics with experimental validation enables biopharma teams to de-risk target hypotheses in ovarian cancer by leveraging large-scale datasets for target prioritization before costly wet-lab efforts. This combined approach improves predictive confidence in Notch signaling components as potential therapeutic targets or biomarkers, supporting informed go/no-go decisions in early discovery. The methodology supports translational continuity from target identification through preclinical validation by aligning computational findings with functional evidence.
The method integrates into the discovery continuum from target identification through lead optimization, where bioinformatics informs hypothesis generation and experimental validation confirms target druggability and pathway relevance in ovarian cancer.