14 lutego 2020
Ludzka bariera krew-mózg selektywnie zapobiega przenikaniu hydrofilowych cząsteczek i patogenów do mózgu. Kilka patologii, w tym zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych i majaczenie pooperacyjne, wiąże się ze zwiększoną przepuszczalnością bariery krew-mózg. W tym miejscu opisujemy model hodowli komórek śródbłonka w celu zbadania przepuszczalności bariery przez przenikanie drobnoustrojów.
Metoda ta umożliwia analizę ludzkiej bariery krew-mózg poprzez pomiar przenikania bakterii przy różnych zabiegach. Może pomóc w odkryciu patogenezy bakteryjnego zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych i majaczenia pooperacyjnego. Jest to prosta metoda, a efekty leczenia są bezpośrednio reprezentowane przez liczbę bakterii.
Można go zmodyfikować, aby umożliwić wysokoprzepustową analizę związków na komórkach śródbłonka. Zacznij od złożenia 12-dołkowej płytki w komorze bezpieczeństwa biologicznego. Rozpakuj płytkę i każdą wkładkę, a następnie użyj wysterylizowanych kleszczy, aby chwycić wkładki u podstawy i włożyć je do studzienek.
Pokryj porowatą błonę każdej wkładki 90 mikrolitrami po 10 mikrogramów na mikrolitr kolagenu IV i fibronektyny mieszaniny i inkubuj płytkę w inkubatorze do hodowli komórkowych w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 24 godziny. Po inkubacji umyć wkładki dwukrotnie, pipetując jeden mililitr PBS do każdej wkładki i zasysając ją za pomocą pompy próżniowej. Następnie zrównoważyć membrany, pipetując wstępnie podgrzaną pożywkę DMEM F12 w górnej i dolnej komorze i inkubować płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla.
Aby wysiać ludzkie komórki śródbłonka mikronaczyniowego, odessać pożywkę z kolby do hodowli komórkowych i przemyć komórki 10 mililitrami PBS. Przykryj komórki całkowicie pięcioma mililitrami trypsyny EDTA i inkubuj kolbę przez trzy do pięciu minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Przenieś pięć mililitrów komórek do 15-mililitrowej probówki i dodaj pięć mililitrów pożywki zawierającej FCS, aby zatrzymać reakcję enzymatyczną.
Odwirować zawiesinę przez trzy minuty w temperaturze 210 razy g, usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy w pięciu mililitrach pożywki. Dodać 10 mikrolitrów zawiesiny komórek do 10 mikrolitrów 0,4% niebieskiego barwnika trypanowego, a następnie dodać 10 mikrolitrów mieszaniny do komory liczącej. Włóż komorę zliczającą do licznika komórek i uruchom odpowiedni program, upewniając się, że licznik jest zogniskowany.
Po zliczeniu wysiewaj 200 000 komórek do każdej górnej komory na 12-dołkowej płytce i inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 14 dni, zmieniając pożywkę w górnej i dolnej komorze co dwa do trzech dni. Po 14 dniach upewnij się, że zbieżność komórek wynosi 100%, obrazując je pod mikroskopem. Na dzień przed pomiarem przepuszczalności umieść jedną kolonię szczepu E. coli GM2163 w trzech mililitrach pożywki LB.
Hodować komórki w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 24 godziny w wytrząsarce do inkubacji. Aby potraktować komórki interesującym je związkiem, rozcieńczyć go do końcowego stężenia w pożywce DMEM F12 i dodać tę mieszaninę do górnej i dolnej komory na 12-dołkowej płytce, a następnie inkubować płytkę w inkubatorze do hodowli komórkowych. Po inkubacji należy wymienić całe podłoże na podłoże wolne od antybiotyków.
Określ stężenie nocnej kultury bakteryjnej, mierząc jej gęstość optyczną na 600 nanometrach, a następnie rozcieńcz ją do OD600 0,5 w 50-mililitrowej probówce Falcona. W komorze bezpieczeństwa biologicznego dodaj 450 mikrolitrów roztworu bakteryjnego do każdej górnej komory 12-dołkowej płytki, a następnie inkubuj płytkę przez sześć godzin w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Po inkubacji wyjąć wkładkę za pomocą kleszczy i pobrać próbkę 50 mikrolitrów pożywki z każdej dolnej komory, uważając, aby nie rozlać pożywki z górnych komór do dolnych.
Ważne jest, aby ściśle oddzielić pożywkę górnej i dolnej komory, ponieważ rozlanie się bakterii z górnej komory doprowadziłoby do fałszywie dodatnich wyników. Upuść każdą próbkę na osobną płytkę agarową i rozprowadź roztwór za pomocą rozsiewacza komórek. Inkubuj płytki w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 24 godziny, a następnie policz kolonie.
Aby zbadać wpływ glikacji na przechodzenie drobnoustrojów przez barierę krew-mózg, komórki traktowano 0,5 i 0,15 milimolowym roztworem glioksalu przez jedną godzinę, przy czym nieleczone komórki służyły jako kontrola. Glikację wykryto następnie za pomocą immunoblottingu z przeciwciałami anty-AGE. Uzyskane kolonie bakteryjne policzono i przedstawiono jako bezwzględną liczbę kolonii lub względną liczbę kolonii znormalizowaną do kontroli.
Próbki poddane działaniu glioksalu wykazywały zwiększoną liczbę kolonii, co wskazuje, że leczenie ma wpływ na gęstość bariery komórkowej. Aby zbadać glikację białek indukowaną przez glukozę, THBMEC hodowano w pożywce o normalnej i wysokiej zawartości glukozy. Bezwzględna liczba kolonii i względna liczba kolonii znormalizowana do grupy kontrolnej wskazały, że glukoza nie miała znaczącego wpływu na integralność bariery krew-mózg.
Leczone komórki śródbłonka mogą być dalej analizowane za pomocą podejść proteomicznych, na przykład spektrometrii mas, w celu analizy zmian w proteomie. Ta technika pomaga w zrozumieniu ludzkiej bariery krew-mózg i przenikania bakterii. Może być wykorzystany do odkrywania aspektów starzenia się i chorób neurodegeneracyjnych, takich jak choroba Alzheimera.
Niniejsze badanie przedstawia metodę analizy ludzkiej bariery krew-mózg (BBB) poprzez pomiar przenikania bakterii przy zastosowaniu różnych form leczenia. Ma ono na celu pogłębienie wiedzy na temat takich schorzeń jak bakteryjne zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych oraz majaczenie pooperacyjne.
Ta metoda umożliwia ilościową ocenę przepuszczalności bariery krew-mózg poprzez migrację drobnoustrojów, zapewniając funkcjonalny odczyt służący do walidacji celów w procesie poszukiwania leków działających na ośrodkowy układ nerwowy. Poprzez powiązanie szczelności bariery z fenotypami istotnymi dla przebiegu choroby, takimi jak zapalenie opon mózgowo-rdzeniowych oraz majaczenie, metoda ta wspiera mechanistyczną redukcję ryzyka w weryfikacji hipotez terapeutycznych. Format testu pozwala na przesiewanie związków modulujących funkcję bariery śródbłonkowej, co dostarcza informacji niezbędnych do identyfikacji związków wiodących oraz zwiększa pewność prognostyczną w modelach przedklinicznych.
Analiza ta wpisuje się w kontinuum procesu odkrywania leków, od walidacji celu, przez identyfikację związku wiodącego, aż po ocenę przedkliniczną, szczególnie w przypadku terapii skierowanych na OUN, gdzie przenikanie przez bariery jest krytycznym parametrem.