11 marca 2020
Wcześniej sprawdziliśmy protokół sekwencjonowania całego genomu wirusa Usutu (USUV) opartego na amplikonie na platformie sekwencjonowania nanoporowego. W tym miejscu bardziej szczegółowo opisujemy stosowane metody i określamy poziom błędu nanoporowej celi przepływowej R10.
Używamy sekwencjonowania genetycznego wirusów, aby spróbować zrozumieć, skąd pochodzą wirusy i jak się rozprzestrzeniają. Aby korzystać z tych danych w czasie rzeczywistym, na przykład podczas epidemii, musimy dokładnie zrozumieć, jak dokładne są dane, które dostarczamy. Głównymi zaletami tych technik jest to, że są stosunkowo tanie, szybkie i umożliwiają kodowanie podstawowe w czasie rzeczywistym, które można wykorzystać do sekwencjonowania w terenie.
Metoda ta może być wykorzystana do terminowego generowania danych sekwencyjnych, które można na przykład wykorzystać do określenia pochodzenia wielu patogenów. Ta technika może być skomplikowana dla początkujących użytkowników i wymagana jest podstawowa wiedza na temat systemu Unix. Zwłaszcza w przypadku instalacji różnych pakietów oprogramowania.
Wizualizacja tej metody pomoże użytkownikom określić poziom błędów ich konkretnych protokołów sekwencjonowania. I odpowiedzieć na pytania badawcze. Przebieg sekwencji jest uruchamiany na MinION podłączonym do MinIT.
Po utworzeniu sekwencji na platformie Nanopore załaduj załadowane dane do Porechop. Aby zapobiec zanieczyszczeniu i zwiększyć dokładność, użyj flagi wymagaj podkreślenia dwóch, podkreśl kody kreskowe i wprowadź polecenie zgodnie ze wskazaniami. Po demultipleksowaniu użyj cutadapt, aby usunąć sekwencje starterów i sekwencje o długości krótszej niż 75 nukleotydów, używając polecenia, jak wskazano.
Użyj Minimap2 do mapowania odczytów sekwencji demultipleksu na panel odrębnych szczepów referencyjnych za pomocą Minimap2. I użyj Samtools, aby wygenerować sekwencję konsensusu. W przypadku wyrównań opartych na odniesieniach konieczne jest przygotowanie wybuchu i wyszukiwanie za pomocą wygenerowanej sekwencji konsensusu w celu zidentyfikowania najbliższego szczepu referencyjnego.
Następnie powtórzyć wyrównanie oparte na odniesieniu z najbliższym odkształceniem odniesienia jako odniesieniem. Aby określić wymagane pokrycie odczytem w celu skompensowania profilu błędu w sekwencjonowaniu Nanopore, wybierz mapowanie sekwencji na jeden Amplicon i użyj Minimap2 do mapowania odczytów Nanopore względem tego Amplicon. Użyj Samtools, aby wybrać tylko mapowanie odczytów do Amplicon26 i przekonwertować plik bam na fastq za pomocą poleceń, jak wskazano.
Losowo wybierz podzbiory, na przykład 200 sekwencji odczytanych tysiąc razy. Wszystkie losowo wybrane odczyty sekwencji są wyrównywane do Amplicon26. Użyj KMA do mapowania odczytów sekwencji i natychmiastowego wygenerowania sekwencji konsensusu przy użyciu zoptymalizowanych ustawień sekwencjonowania Nanopore, jak wskazuje flaga BC nano.
Aby sprawdzić wygenerowane sekwencje konsensusu, użyj poleceń, jak wskazano. Aby wyświetlić wskaźnik błędów w stats dot txt pod nagłówkiem, niezgodności współzależności błędów podstawy zmapowane, użyj polecenia, jak wskazano. Aby wyświetlić liczbę indeli wyświetlanych pod nagłówkiem indels na cykl, użyj polecenia, jak wskazano.
Korzystając z nowszej komórki przepływowej w połączeniu z przerzutnikiem koloru podstawowego, 40-krotne pokrycie odczytem daje identyczne wyniki w porównaniu z sekwencjonowaniem Illumina. Pokrycie odczytem 30 razy daje poziom błędu 0,02%, co odpowiada jednemu błędowi na każde 585 000 sekwencjonowanych nukleotydów. Podczas gdy pokrycie odczytem 20 razy powoduje jeden błąd na każde 63 529 sekwencjonowanych nukleotydów.
Pokrycie odczytem 10 razy powoduje jeden błąd na każde 3 312 sekwencjonowanych nukleotydów. Oznacza to, że ponad 3 nukleotydy na cztery genomy wirusa Usutu są nazywane niewłaściwymi. Przy odczycie powyżej 30-krotnego pokrycia nie obserwuje się żadnych indeli.
Pokrycie odczytem 20 razy powoduje wykrycie jednej pozycji indel, podczas gdy pokrycie odczytem 10 razy skutkuje indelami w 29 pozycjach. Najważniejszą rzeczą do zapamiętania jest to, że chociaż nie zawsze są one widoczne, aktualizacje oprogramowania występują często i mogą mieć wpływ na wyniki. Istnieje kilka opcji oprogramowania, z którego można korzystać.
Pokazaliśmy najczęściej używane programy. Jednak różne programy i różne wersje tych programów mogą prowadzić do różnych wyników. Pokazaliśmy przykład, w jaki sposób sprawdzamy jakość generowanych przez nas danych sekwencji.
A to ma kluczowe znaczenie dla niezawodnego wsparcia w przypadku wybuchu epidemii.
Niniejsze badanie szczegółowo opisuje zwalidowany protokół sekwencjonowania całego genomu wirusa Usutu (USUV) opartego na amplikonach z wykorzystaniem platformy sekwencjonowania nanoporowego. Metody zostały opisane szczegółowo, ze szczególnym uwzględnieniem określenia współczynnika błędów powiązanych z komórką przepływową nanoporową R10.
Precyzyjne sekwencjonowanie genomu wirusa jest niezbędne do reagowania na ogniska epidemiczne w czasie rzeczywistym oraz do prowadzenia epidemiologii genomowej. Zrozumienie wskaźników błędów specyficznych dla danej platformy umożliwia generowanie wiarygodnych danych niezbędnych do podejmowania decyzji w obszarze zdrowia publicznego. Walidacja sekwencjonowania nanoporowego w odniesieniu do uznanych platform zapewnia pewność w śledzeniu patogenów oraz analizie transmisji.
Metoda ta wpisuje się w schematy odkrywania wirusów – od wstępnej detekcji po charakterystykę genomiczną – wspierając identyfikację wiodących związków w opracowywaniu leków przeciwwirusowych dzięki precyzyjnemu śledzeniu szczepów.